特集 リン脂質代謝と脂質メディエーター研究の最新の成果 第1部

〔生化学 第8 3巻 第6号,pp.4 8 5―4 9 4,2 0 1 1〕 !!!! 特集:リン脂質代謝と脂質メディエーター研究の最新の成果 第1部 リン脂質代謝酵素 !!!! !!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!! !!!!!!!!!!!!!!!!!!!!!
Author:  Juana Parra Vidal

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〔生化学 第8 3巻 第6号,pp.4 8 5―4 9 4,2 0 1 1〕

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特集:リン脂質代謝と脂質メディエーター研究の最新の成果 第1部 リン脂質代謝酵素

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三本鎖のリン脂質 N-アシルホスファチジルエタノールアミンの 動物組織における代謝 坪





人,宇



徹,上







N-アシル-ホスファチジルエタノールアミン(PE)は PE のアミノ基にもう1本の脂肪 酸鎖が結合した三本鎖のリン脂質であり,微量ではあるが自然界に広く分布する.アナン ダミドを初めとする種々の脂肪酸のエタノールアミド(N-アシルエタノールアミン)が多 様な生物活性を示すことからその前駆体である N-アシル PE の代謝が注目され,関与する 酵素の研究が活発に展開されている.動物組織での生合成経路はグリセロリン脂質の sn1位の脂肪酸鎖を PE に転移させる N-アシル化反応であり,N-アシルトランスフェラーゼ が触媒する.一方,N-アシル PE から N-アシルエタノールアミンを一段階で遊離させる反 応には特殊なホスホリパーゼ D 型酵素が関与する.最近の研究により複数の加水分解酵 素が関与する多段階経路の存在も明らかになった.

1. は







鎖がアミド結合でつながった「N-アシル化グリセロリン脂 1, 2) 質」である(図1) .そのうち N-アシル PE は1 9 6 5年に

ホスファチジルコリン(PC) ,ホスファチジルエタノー

小麦粉から最初に単離され3),後に種々の動物組織でも見

ルアミン(PE) ,ホスファチジルセリン(PS)など一般的

出されたが1),イヌの心筋梗塞部位で多量に蓄積すること

なグリセロリン脂質はグリセロール骨格の sn-1位と sn-2

が特に注目された4).sn-1位と sn-2位にそれぞれ脂肪酸鎖

位に各1本,計2本の脂肪酸鎖を有し,生体膜の主要構成

を有するジアシル型に加えて sn-1位にアルケニル鎖また

成分である.細菌やミトコンドリア膜に豊富なカルジオリ

はアルキル鎖を有するものも相当量存在する点は PE と同

ピンはグリセロリン脂質2分子が結合した構造をとってお

様である4).これらの分子の総称としては「N-アシルエタ

り,計4本の脂肪酸鎖を有する.一方,脂肪酸鎖を1本し

ノールアミンリン脂質」が適当であるが,本稿では便宜的

か持たないリゾリン脂質では脂質メディエーター,すなわ

に N-アシル PE と呼ぶことにする.N-アシル PS について

ち G タンパク質共役型レセプターのリガンドとして働く

もヒツジ赤血球で総リン脂質の数%を占める等,動物組織

ものが多い.ところが自然界にはこの他にも3本の脂肪酸

で検出されている5).N-アシル PE の主要代謝物である脂

鎖を有するグリセロリン脂質が微量ではあるが普遍的に存

肪酸のエタノールアミド(N-アシルエタノールアミン)に

在する.それは PE や PS のアミノ基にもう1本の脂肪酸

ついては,1 9 5 7年に N-パルミトイルエタノールアミンが 卵黄から単離されたのが最初である6).その後 Schmid ら

香川大学医学部生体分子医学講座生化学(〒7 6 1―0 7 9 3 香川県木田郡三木町大字池戸1 7 5 0―1) Metabolism of N-acylphosphatidylethanolamine, a phospholipid molecule with three acyl chains, in animal tissues Kazuhito Tsuboi, Toru Uyama, and Natsuo Ueda(Department of Biochemistry, Kagawa University School of Medicine,1 7 5 0―1Ikenobe, Miki, Kagawa7 6 1―0 7 9 3, Japan)

のグループが N-アシル PE と N-アシルエタノールアミン の代謝に関する研究を精力的に進めたが1),これらの脂質 分子が生化学の領域で広く注目を集めることはなかった. 転機となったのは1 9 9 0年代初頭のカンナビノイドレセ プター CB1の cDNA クローニングの成功7)とそれに引続く 同レセプターの内在性リガンドとしての N-アラキドノイ

4 8 6

〔生化学 第8 3巻 第6号

図1 PE,PS と N-アシル化グリセロリン脂質の構造 ジアシル型 PE(1, 2-diacyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine) ,アルケニルアシル型 PE(1-alkenyl-2acyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine) ,PS(1, 2-diacyl-sn-glycero-3-phosphoserine)とそれらの N-ア シル化誘導体であるジアシル型 N-アシル PE (1, 2-diacyl-sn-glycero-3-phospho(N-acyl) ethanolamine) , アルケニルアシル型 N-アシル PE(1-alkenyl-2-acyl-sn-glycero-3-phospho(N-acyl) ethanolamine) ,N-ア シル PS(1, 2-diacyl-sn-glycero-3-phospho(N-acyl) serine)の構造式を示す.

図2 生物作用を示す N-アシルエタノールアミン

) ルエタノールアミン(アナンダミド) の発見である8(図2 ) .

アミンには抗炎症作用や鎮痛作用が認められ13,14),N-オレ

その結果,N-アシル PE の一つである N-アラキドノイル

オイルエタノールアミンは食欲抑制作用を示すことで最近

PE もアナンダミドの前駆体として注目されるようになっ

) 注目されている15(図2 ) .これらの N-アシルエタノールア

た .またアナンダミドは,バニロイドレセプター TRPV1

ミンはペルオキシソーム増殖剤活性化レセプター PPARα

の内在性リガンドとしても報告されている .ところで生

のリガンドとして機能することが報じられているが16),N-

9)

1 0)

体内に存在する N-アシルエタノールアミンで量的に多い

オレオイルエタノールアミンについては GPR1 1 9レセプ

のはパルミチン酸,ステアリン酸,オレイン酸,リノール

ターのリガンドとしても機能する17).N-アシル PE それ自

酸のエタノールアミドであり,アナンダミドが全 N-アシ

体の生物作用については生体膜の安定化作用が以前から知

ルエタノールアミンに占める割合は5% に満たない11).ま

られていたが18),最近,食欲抑制作用19)や Rac1および Cdc

た,カンナビノイドレセプターの内在性リガンドとして

4 2の阻害によるマクロファージ貪食能低下作用20)を示すこ

は,後に見出された2-アラキドノイルグリセロール(2-

とが報告されている.本稿では N-アシル PE の主として動

AG)の方が,より重要な役割を果たしていることが明ら

物組織における代謝について,著者らの成果を交えて最新

かになっている12).その一方で N-パルミトイルエタノール

の知見を紹介したい.なお,アナンダミドを初めとする N-

4 8 7

2 0 1 1年 6月〕

アシルエタノールアミンを脂肪酸とエタノールアミンに分

鎖の分子種はアシル基供与体基質の sn-1位のアシル鎖の

解する加水分解酵素(脂肪酸アミドヒドロラーゼと N-ア

組成を反映し,結果的に N-アシルエタノールアミンの分

シルエタノールアミン水解酸性アミダーゼ)の研究も活発

子種にも影響する.アラキドン酸鎖は一般に sn-2位に多

に進められており21,22),特異的阻害剤の医薬品としての開

く sn-1位に少ないが,このことが総 N-アシルエタノール

発も期待されているが23),本稿では省かせて頂く.

アミンのうちでアナンダミドの占める割合が小さい理由で

2. N-アシル PE の生合成 (1) Ca2+依存性 N-アシルトランスフェラーゼ

あると考えられている.一方,アシル基受容体基質として は,ジアシル型,アルケニルアシル型(プラスマローゲン 型) ,アルキルアシル型の PE およびリゾ PE のいずれもが

心筋梗塞部位で N-アシル PE が著明に増加するとき PE

利用可能であった.著者らはラット脳から同酵素を部分精

が減少し,互いの分子種が似通っていることから,PE が

製し,Ca2+依存性や PC の sn-1位からの選択的脂肪酸引抜

N-アシル PE の前駆体であることが示唆された4).すなわ

きを確認している27).

ち図3に示すように PE のエタノールアミン部分のアミノ

Ca2+非依存的に同じ反応を触媒する酵素(後述)と区別

基に脂肪酸鎖が結合する N-アシル化反応が N-アシル PE

するために,本酵素は Ca2+依存性 N-アシルトランスフェ

の生合成経路であると考えられた.このようなアシル基転

ラーゼとも呼ばれる.高度な精製や cDNA クローニング

移反応におけるアシル基供与体としてはアシル CoA とグ

は達成されていない.N-アシル PE と N-アシルエタノール

リセロリン脂質が想定されるが,以下に詳述するように,

アミンは心筋梗塞部位のみならず種々の変性組織や炎症部

これまでのところ動物組織ではグリセロリン脂質を,植物

位で増加することが知られている.細胞内 Ca2+濃度の増

組織ではアシル CoA をアシル基供与体基質とする酵素反

加により本酵素は活性化されるものと考えられているが,

応が見出されている24).

単離した酵素の活性化に必要な Ca2+濃度が前述のように

1 9 8 0年以降,イヌの心臓や脳,ラットの脳や精巣など

比較的高いことから細胞内での活性化の分子機構には不明

N-アシル PE 含量の高い動物組織を用いて明らかにされて

な点が多い.ラットにおける本酵素の活性の臓器分布が調

きたことをまとめると

,これらの組織には本反応を

べられており,脳で最も高く,次いで精巣,筋肉の順で,

触媒する膜結合酵素「N-アシルトランスフェラーゼ」が発

その他の臓器では低値であった28).脳の部位別では脳幹で

2 2, 2 5, 2 6)

現している.同酵素の可溶化には Nonidet P-4 0のような界

最も高く,大脳皮質,線条体,小脳,海馬,延髄で中等

面活性剤を要する.酵素活性は0. 1―1mM 程度の Ca2+で著

度,嗅結節,視床,視床下部,嗅球で低値であった28).興

しく増加する.PC,1-アシル-リゾ PC,PE,カルジオリピ

味深いことに脳における活性は成長に伴って低下した29,30).

ンなど種々のグリセロリン脂質がアシル基供与体基質とな

植物における N-アシル PE の生合成については,「N-ア

る一方,アシル CoA や遊離脂肪酸は利用されなかった.

シル PE シンターゼ」の存在が以前から知られていたが31),

また,グリセロリン脂質の sn-1位と sn-2位の脂肪酸鎖の

最近,同酵素の cDNA がシロイヌナズナからクローニン

うち,もっぱら sn-1位の脂肪酸鎖が利用される点が特徴

グされた32).一次構造は2 8 4個のアミノ酸からなり,出芽

的であった.転移される脂肪酸鎖の分子種については明ら

酵母のリゾ PC アシルトランスフェラーゼ(Ypr1 4 0wp)や

かな特異性が認められないので,N-アシル PE の N-アシル

シロイヌナズナのリゾホスファチジン酸アシルトランス

図3 N -アシル PE の生合成経路

4 8 8

〔生化学 第8 3巻 第6号

フェラーゼ(Slc1)のようなグリセロ脂質アシルトランス

ファミリーは LRAT の活性中心を形成するアミノ酸残基

フェラーゼと相同性を示した.大腸菌で発現させた組換え

を保有していることから,N-アシルトランスフェラーゼ活

体の精製標品を用いて検討したところ,アシル基供与体基

性を示す可能性が考えられた.そこで著者らは,ラット,

質は従来言われていた遊離脂肪酸ではなく,アシル CoA

ヒト,マウスから HRASLS5 の cDNA を単離し,COS-7細

であることが明らかになった.

胞で組換え体を発現させたところ,予想通りの酵素活性が 検出された27,43).ラット脳から部分精製した Ca2+依存性 N-

(2) HRASLS ファミリー

アシルトランスフェラーゼと比較すると,mM 濃度域のジ

HRAS-like suppressor(HRASLS)ファミリーは,がん原

チオスレイトールや Nonidet P-4 0で活性化される点は共通

遺伝子 Ras の機能を負に制御する分子として単離された

していたが,活性発現に Ca2+を必要とはしない点,PC の

がん抑制遺伝子群で,ヒトでは5分子(遺伝子名 HRASLS

sn-1位のみならず sn-2位からもアシル基を引き抜く点,

1―5)が存在する (図4A).HRASLS ファミリーは様々 ながん細胞においてその発現が著しく低下,もしくは消失 しており,II 型がん抑制遺伝子として位置付けられてい る.HRASLS ファミリーの中で最初に見出された分子は H-rev1 0 7(HRASLS3)で,Hajnal らによって1 9 9 4年にク 3 5) ローニングされた .がん原遺伝子産物 H-Ras による形質 転換に感受性が高い線維芽細胞と抵抗性を示す線維芽細胞 の間で subtraction cloning を行い, H-rev1 0 7が単離された. H-Ras で形質転換された線維芽細胞に H-rev1 0 7を発現さ せると細胞の増殖やコロニー形成能が抑制されることか ら,同分子が H-Ras の機能を負に制御することが示され た36).そ の 後,一 次 構 造 の 類 似 し た 分 子 と し て TIG3 3 7) 3 8) (HRASLS4) ,A-C1(HRASLS1) ,HRASLS239)が順次見 出され,同様に H-Ras で形質転換された細胞の増殖を抑 制することが報告されている.精巣で強く発現している HRASLS5 産物に関してはそのような報告はない.最近, TIG3と HRASLS2が Ras の下流のシグナル伝達を抑制す ることで Ras の活性を制御することが報告されたが39),具 体的なメカニズムは明らかになっていない. HRASLS ファミリーの遺伝子産物は N 末端側からプロ リンに富んだ proline rich domain,H ボックス,NC ドメイ ンおよび疎水性アミノ酸がクラスターし,膜結合に関わる ) 疎水性ドメインから構成されている40(図4 A) . とりわけ, NC ド メ イ ン と H ボ ッ ク ス は 高 度 に 保 存 さ れ て い る. HRASLS ファミリーはビタミン A の体内動態を制御する レ シ チ ン・レ チ ノ ー ル・ア シ ル ト ラ ン ス フ ェ ラ ー ゼ (LRAT)とホモロジーを示し,LRAT ファミリー内のサブ ) ファミリーとして位置付けられている34(図4 B) .LRAT に おいて,NC ドメインに含まれるシステインと H ボックス のヒスチジンは活性中心を形成している41,42).proline rich domain と疎水性ドメインについては Ras の機能制御に重 要であると報告されている36). LRAT は PC の sn-1位のアシル基を all-trans-レチノール に転移してレチニルエステルを生成する酵素である41,42). Ca2+依存性 N-アシルトランスフェラーゼと LRAT は,ア シル基供与体であるグリセロリン脂質の sn-1位のアシル 基を用い る 点 で 共 通 し て い る.上 述 の よ う に HRASLS

主として可溶性画分に局在する点,脳での発現レベルが相

3 3, 3 4)

対的に低い点で,Ca2+依存性酵素とは異なっていた.これ よ り HRASLS5 産 物 を Ca2+非 依 存 性 N-ア シ ル ト ラ ン ス フェラーゼ(iNAT)と名付けた.iNAT の NC ドメインの システインと H ボックスのヒスチジンの点変異体をそれ ぞれ作製したところ不活性であった.このことと一致し て,SH ブロッカーのヨード酢酸で濃度依存的に阻害され た.また,iNAT は Ca2+非依存的にリン脂質から脂肪酸を 遊離させるホスホリパーゼ(PL) A1/2 活性を併せ持ってい た. 続いて H-rev1 0 7,TIG3,HRASLS2についても同様に検 討を行ったところ,これらの組換えタンパク質も Ca2+非 依存性 PLA1/2 活性を示した44,45).PLA1 活性の方が PLA2 活 性よりも数倍高値を示し,異なる脂肪酸鎖を有する PC や PE に対して作用した.Duncan らは H-rev1 0 7が PLA2 活性 を有することを報 告 し て い る46).ま た,PE の 存 在 下 で HRASLS2には比較的強い N-アシルトランスフェラーゼ活 性が,H-rev1 0 7と TIG3には弱い同活性が検出された.さ らにこれらのタンパク質は PC のアシル基をリゾ PC に転 移するリゾ PC O-アシル化活性も保有していた.酵素活性 の発現には iNAT の場合と同様に mM オーダーのジチオス レイトールが不可欠で,ヨード酢酸で濃度依存的に阻害さ れた.H-rev1 0 7においても NC ドメインのシステインや H ボックスのヒスチジンの変異体は不活性であった.以上の 結果から HRASLS ファミリーメンバーの触媒する反応機 構は LRAT のそれと類似していると考えられた.すなわ ち,図5に示すように,同メンバーはアシル基供与体であ るグリセロリン脂質から脂肪酸鎖を NC ドメインのシステ イン残基に転移してアシル酵素中間体を形成し,その後, 共存するアシル基受容体基質が水,PE もしくはリゾリン 脂質であるかによって PLA1/2,N-アシルトランスフェラー ゼもしくは O-アシルトランスフェラーゼとして機能し, それぞれ遊離脂肪酸,N-アシル PE,グリセロリン脂質を 生成するものと想定された.また,proline rich domain と 疎水性ドメインをそれぞれ欠失した H-rev1 0 7の変異体も 酵素活性を示さなかったことから,これらのドメインは Ras の機能制御に加えて酵素活性発現にも必要であること

4 8 9

2 0 1 1年 6月〕

図4 HRASLS ファミリーの一次構造 (A) と進化系統樹 (B) (A) proline rich domain(二重下線) ,H ボックス(下線) ,NC ドメイン(破線)および疎水性ドメイン(ボックス)を 示す.*は活性中心を形成するヒスチジンとシステインを示す.(B) ヒト HRASLS ファミリーメンバーと LRAT の系 統樹を示す.

が示唆された44).著者らは A-C1にも他のメンバーと同様

バーのすべてがグリセロリン脂質を基質とする酵素である

の脂質代謝酵素活性を検出しているので(データ未発表) ,

ことが明らかとなった.

ヒトで発現している5種類 の HRASLS フ ァ ミ リ ー メ ン

上述のように HRASLS ファミリーは複数の脂質代謝酵

4 9 0

〔生化学 第8 3巻 第6号

からホスファチジルアルコールを生成する反応)を触媒し ないことも報告された54).こうして本酵素は N-アシル PE 水解 PLD(NAPE-PLD)と呼ばれるようになったが,その 実体は長らく不明であった. 著者らは NAPE-PLD をラット心臓の膜画分からオクチ ルグルコシドを用いて可溶化した後に部分精製し,可溶化 後の本酵素が mM 濃度の Ca2+,Mg2+などの二価陽イオン やポリアミン類で2 0―3 0倍程度まで活性化されることを見 出した55,56).さらに精製を進めて酵素タンパク質の部分ア ミノ酸配列を決定し,データベースからマウス,ラット, ヒトにおける候補遺伝子を推定することができた.そして 各 cDNA を COS-7細胞に導入して組換え酵素を発現させ たところ,いずれも強い NAPE-PLD 活性を認めた57). NAPE-PLD の一次構造は推定アミノ酸数3 9 1―3 9 6から 図5 HRASLS ファミリーの推定反応機構

なり,分子量は4 5―4 6kDa である.データベースで検索す ると,ヒト,ラット,マウス以外にも,霊長類,ジャイア ントパンダ,ウマ,ウシ,ウサギにホモログが存在し,ヒ

素活性を保有していることから,生体内での N-アシル PE

ト NAPE-PLD との比較においてアミノ酸の同一性は8 9%

の生合成にどの程度関わっているかは不明であり,さらな

以上であった.一次構造より本酵素はメタロ-β-ラクタ

る検討が必要である.また,同ファミリーは Ras の機能を

マーゼファミリーに属する.本ファミリーには多種類の加

負に制御すると報告されているが,これに脂質代謝酵素活

水分解酵素が含まれており,ファミリー内のタンパク質間

性が関与するのか否かは現時点ではわかっていない.最

で高度に保存されたヒスチジン残基とアスパラギン酸残基

近,H-rev1 0 7欠損マウスが作製されたが,同マウスでは

を含むモチーフを NAPE-PLD も有している49,57).PLD1や

脂肪組織における脂肪滴の蓄積が著しく減少していた47).

PLD2等の HKD/ホスファチジルトランスフェラーゼファ

高脂肪食摂取による肥満に耐性があり,同分子は脂肪組織

ミリーの PLD 型酵素とはホモロジーを示さない.

で何らかの生理機能を発揮していると考えられる.今後,

著者らはさらに本酵素の組換え体を大腸菌で発現させて

細胞レベルや個体レベルでのこれらの分子の詳細な機能解

高度に精製した.精製酵素を用いた解析により,PC,PE

析が必要である.

等一般的なグリセロリン脂質とはほとんど反応せず N-ア

3. N-アシル PE から N-アシルエタノールアミンへの変換 (1) NAPE-PLD

シル PE に極めて特異的であること,N-アシルリゾ PE な ど N-アシル PE の代謝物との反応性も低いこと,N-アシル PE の N-アシル鎖の分子種については炭素数が4以上であ

N-ア シ ル PE の 分 解 経 路 と し て は 後 述 す る よ う に

れば大差なく反応することが明らかになった49).すなわ

PLA1/2,C,D による加水分解や,その結果生じた代謝物

ち,本酵素が生物作用の異なるアナンダミド,N-パルミト

のさらなる加水分解が報告されているが,PLD により一

イルエタノールアミン,N-オレオイルエタノールアミンを

段階で N-アシル PE から N-アシルエタノールアミンを切

区別することなく生成することが示された.この結果は生

り出す反応が N-アシルエタノールアミンの主たる生合成

体試料中の N-アシル PE と N-アシルエタノールアミンに

経路と考えられてきた(図6) .植物では PLD の β および

含まれる N-アシル鎖の分子種の存在比が類似しているこ

γ イソフォームが一般的なグリセロリン脂質に加えて N-ア

とと一致した.また,メタロ-β-ラクタマーゼファミリー

シル PE を基質とするが ,N-アシル PE に特異的に作用

の多くのタンパク質と似て,活性発現に必須の亜鉛を含有

する酵素は見つかっていない .市販されている放線菌

していた.

4 8)

3 1)

Streptomyces chromofuscus の PLD も PE と同程度に N-パル

NAPE-PLD の体内分布については発現レベルの違いは

ミトイル PE を加水分解する .一方,動物組織での解析

あっても多くの臓器に広く分布していた56,57).脳では動物

は1 9 8 1年の報告に始まり ,ラットの心臓・脳やイヌの

種に係わらず相対的に高い発現レベルが認められたが,本

脳由来の粗酵素標品等を用いた結果から N-アシル PE を特

酵素の精製に用いた心臓での発現レベルは動物種により大

異的に水解する新規 PLD が膜画分に存在することが示さ

きく異なっていた58).ラットの脳内での局在を検討したと

れ51∼54),既 知 の PLD に 特 徴 的 な ト ラ ン ス ホ ス フ ァ チ ジ

ころ,視床で最も高値を示したがその他のすべての部位で

レーション(一級アルコールの存在下でグリセロリン脂質

も発現していた59).マウス脳の組織化学的観察においても

4 9)

5 0)

4 9 1

2 0 1 1年 6月〕

図6 N-アシル PE から N-アシルエタノールアミンへの変換経路

広範な発現が確認されたが,海馬歯状回の顆粒細胞層での

LPS が NAPE-PLD 遺伝子のプロモーター領域に結合して

発現が際立っていた .また軸索での強い発現は,CB1カ

いるヒストンの脱アセチル化を促進することによって

ンナビノイドレセプターを介してシナプスの逆行性シグナ

NAPE-PLD の発現レベルを抑制することが示された63).併

6 0)

ルとして作用する2-AG がシナプス後細胞で生成するのと

せて Sp1が定常時の転写調節に関与することも示唆され

は対照的であることが注目された60).脳内の NAPE-PLD

た63).

の発現レベルは,出生直後は極めて低いが14日目を過ぎ

NAPE-PLD の 遺 伝 子 欠 損 マ ウ ス の 解 析 が Leung ら に

ると急激に上昇した59,61).前述の N-アシルトランスフェ

よって報告されたが,マウスには明らかな表現型の異常を

ラーゼの活性が出生直後に高く,その後低下するのとは対

認めなかった64).遺伝子欠損マウスにおける N-アシル PE

照的であり,実際,脳虚血モデルにおける N-アシル PE の

と N-アシルエタノールアミンの脳内レベルを N-アシル鎖

含量は出生直後のラットで著しく高値を示した30).このよ

の分子種ごとに測定して野生型マウスと比較したところ,

うな現象の生理的意義はわかっていない.

飽和脂肪酸鎖とモノエン脂肪酸鎖を有するものでは有意な

著者らは二価陽イオンや PE 等の生体膜成分が本酵素を

N-アシル PE の増加と N-アシルエタノールアミンの減少が

活性化することを報告したが ,in vivo での活性調節機構

認められ,本酵素が確かに脳内で N-アシル PE から N-ア

は不明である.発現調節については,マクロファージ細胞

シルエタノールアミンの生成を担っていることが証明され

6 1)

RAW2 6 4. 7を リ ポ 多 糖(LPS)で 処 理 す る と NAPE-PLD

た.ところがアナンダミドとその前駆体の N-アラキドノ

の mRNA レベルが低下することが知られていた62). 最近,

イル PE のようなポリエン脂肪酸鎖を有するものでは有意

4 9 2

〔生化学 第8 3巻 第6号

な変化は認められなかった.また遺伝子欠損マウスにおい

いて N-アシルリゾ PE 水解活性は脳,脊髄,精巣で高値を

て N-アシル PE から N-アシルエタノールアミンを生成す

示し,ABH4の mRNA 分布とよく一致した.このことか

る活性が残存していることも示された.以上の結果から,

ら本酵素が NAPE-PLD 非依存性経路に含まれ,N-アシル

生体内での N-アシルエタノールアミン,とりわけアナン

リゾ PE の加水分解を担う主要な酵素と考えられる.

ダミドの生成には NAPE-PLD 以外の酵素が関与する代謝

グリセロホスホ-N-アシルエタノールアミンからの N-ア シルエタノールアミンの生成を触媒する酵素について

経路の存在することが明らかになった.

は,2 0 0 8年に初めて報告がなされた67).マウスの脳におけ (2) NAPE-PLD 非依存性経路

るグリセロホスホ-N-アシルエタノールアミンの含量が N-

NAPE-PLD 非依存性経路の提唱は1 9 8 4年 に さ か の ぼ

アシルエタノールアミン含量の約1/1 0に過ぎないことか

る52).すなわち,イヌ脳のホモジネートにより N-アシル

ら,グリセロホスホ-N-アシルエタノールアミンの分解活

PE から N-アシルエタノールアミンが生成する際に,sn-1

性の高いことが示唆された.脳ホモジネートを EDTA の

位または sn-2位の脂肪酸鎖が脱離(O-脱アシル化)した

存在下でインキュベートするとグリセロホスホ-N-アシル

N-アシルリゾ PE や,その両方が脱離したグリセロホスホ-

エタノールアミンが蓄積することから,EDTA 感受性の酵

N-アシルエタノールアミンが代謝中間体として生成するこ

素の関与が示唆された.グリセロホスホジエステラーゼ

とが報告された(図6) .本報告ではこれらの代謝中間体

(GDE) 1は GDE ファミリーのメンバーの一つであり,グ

から N-アシルエタノールアミンを遊離するホスホジエス

リセロホスホイノシトールを水解する酵素として知られ

テラーゼ活性を検出しているが,関与する酵素の解析は行

る68).GDE ファミリーのうち5種類(GDE1―4, 7)の組換

われなかった.

え体を検討したところ,GDE1のみがグリセロホスホ-N-

著者らは2 0 0 4年に N-アシル PE の O-脱アシル化を触媒

アシルエタノールアミンから N-アシルエタノールアミン

するほ乳類の PLA1/2 様酵素について初めて報告した .こ

を 遊 離 す る 活 性 を 持 ち,こ の 活 性 は Mg2+で 増 強 し,

の活性はラットの種々の臓器に分布していたが,胃で最も

EDTA や Ca2+で阻害された.一連の酵素学的特徴はマウス

高い活性を示した.タンパク質精製の結果,胃の酵素は分

脳におけるグリセロホスホ-N-アシルエタノールアミン水

泌性 PLA2(sPLA2) -IB であることが判明した.さらに組換

解活性のそれとよく一致した.また,マウスにおいて本活

6 5)

え酵素を用いた検討により,IB,IIA,V 型の sPLA2 に N-

性は脳,脊髄,肝臓,腎臓,精巣で比較的高値を示し,

ア シ ル PE 水 解 活 性 を 認 め た が,X 型 sPLA2 や 細 胞 質

GDE1の mRNA 分布とよく一致した.以上の結果から本

PLA2α ではほとんど認められなかった.PLA2 によって生

酵素がグリセロホスホ-N-アシルエタノールアミンから N-

成される sn-2位の脂肪酸鎖を欠いた N-アシルリゾ PE を

アシルエタノールアミンを遊離させる責任酵素であると考

N-アシルエタノールアミンに変換する“リゾ PLD”活性

えられた.しかしながら,ABH4や GDE1は N-アシル基

は,ラットの様々な組織において認められたが,脳と精巣

の分子種を区別しないことから,この NAPE-PLD 非依存

で 最 も 高 い 活 性 を 示 し た.NAPE-PLD 自 体 も 弱 い リ ゾ

性経路はアナンダミドのようなポリエン脂肪酸を含有する

PLD 活性を示すが,本活性とは酵素学的性質が異なるこ

N-アシルエタノールアミンの生成に特異的に関与する経路

とからそれ以外の酵素の関与が想定された.しかしながら

ではなさそうであった.

酵素タンパク質の同定には至らなかった. 2 0 0 6年には前述の NAPE-PLD 欠損マウスの解析によっ

2 0 1 0年に GDE1の欠損マウスが報告された69).本マウ スの脳ホモジネートには,N-アシルリゾ PE やグリセロホ

て,N-アシル PE の sn-1位と sn-2位の脂肪酸鎖が順次脱

スホ-N-アシルエタノールアミンからの N-アシルエタノー

離することで N-アシルリゾ PE を介してグリセロホスホ-

ルアミンの生成活性がほとんど見られず,in vitro の系に

N-アシルエタノールアミンが生成し,その後 N-アシルエ

おいて本酵素が N-アシルリゾ PE からグリセロホスホ-N-

タノールアミンが遊離される経路が再び提唱された66).

アシルエタノールアミンを介して N-アシルエタノールア

sn-1位と sn-2位からの脂肪酸の脱離はメチルアラキドニ

ミンを生成する過程に貢献することが確認された.しかし

ルフルオロホスホネート(MAFP)によって阻害されるこ

ながら,脳での N-アシルエタノールアミンの含量は GDE1

とから,セリン加水分解酵素の関与が示唆された.フルオ

欠損マウスと野生型の間で変わらず,また NAPE-PLD 欠

ロホスホネート-ビオチンプローブを用いたプロテオミク

損マウスと NAPE-PLD/GDE1二重欠損マウスの間でも差

ス解析により,それまで機能が不明であった α/β ヒドロ

は見られなかった.さらに,この二重欠損マウスの脳の初

ラーゼ4(ABH4)が責任酵素として同定された.本酵素

代培養系においても放射標識 N-アシル PE からの N-アシ

の組換え体は N-アシル PE や N-アシルリゾ PE の O-脱ア

ルエタノールアミンの生成が認められたことから,GDE1

シル化を触媒したが,リゾ PE,リゾ PC,リゾ PS といっ

にも NAPE-PLD にも依存しない新たな経路の存在が示唆

た他のリゾリン脂質には活性を示さなかった.マウスにお

された.

4 9 3

2 0 1 1年 6月〕

今一つの経路として,N-アシル PE から PLC 型の反応で N-アシルエタノールアミンリン酸が遊離し,引き続いて起 こる脱リン酸化により N-アシルエタノールアミンが生成 する経路が示唆されている(図6) .この経路は主にマク ロファージ細胞 RAW2 6 4. 7で解析されているが,マウス の 脳 に も 存 在 す る と 考 え ら れ て い る.RAW2 6 4. 7で は LPS の刺激により NAPE-PLD 非依存性のアナンダミド産 生が亢進する62,70).PLC 阻害剤であるネオマイシンによっ てこの産生亢進が阻害されることから,このアナンダミド 産生に PLC 型酵素の関与が示唆されたが,それ以上の解 析はなされていない.アナンダミドリン酸の脱リン酸化反 応へのチロシンホスファターゼ PTPN2 2の関与が,RAW 2 6 4. 7での siRNA を用いた実験や,PTPN2 2欠損マウスの 脳の解析により報告されている62).加えて,イノシトール リン酸5-ホスファターゼ SHIP1も同様の脱リン酸化反応 を触媒した70).NAPE-PLD 欠損マウスの脳ホモジネートを 用いて N-アラキドノイル PE からのアナンダミドの生成経 路を検討したところ,1 0分以内の短いインキュベーショ ンでは PLC を介する経路が優位であり,6 0分程度の長い インキュベーションでは ABH4を介する経路が 優 位 で あった70). 4. お







1 9 8 0年代に Schmid らのグループが確立した N-アシル PE の代謝経路については,著者らのグループが報告した NAPE-PLD の cDNA クローニングを契機として分子生物 学的解析が急速に進んだ.その結果,当初考えられていた 以上に多種類の酵素が N-アシル PE の生成と分解に関与し ていることが明らかになりつつある.一方,動物組織にお ける主要な合成酵素と考えられる Ca2+依存性 N-アシルト ランスフェラーゼの実体が未だに不明であるなど解決すべ き重要な課題が残されていて,今後の進展が待たれる.ま た,N-アシルエタノールアミンの前駆体として注目される ことの多い N-アシル PE であるが,それ自体の生体内での 役割についての解明も急がれる. 文



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4 9 4 J. Biol. Chem.,2 8 4,1 8 7 3 4―1 8 7 4 1. 3 3)Hughes, P.J. & Stanway, G.(2 0 0 0)J. Gen. Virol., 8 1, 2 0 1― 2 0 7. 3 4)Anantharaman, V. & Aravind, L.(2 0 0 3)Genome Biol., 4, R 1 1. 3 5)Hajnal, A., Klemenz, R., & Schäfer, R.(1 9 9 4)Oncogene, 9, 4 7 9―4 9 0. 3 6)Sers, C., Emmenegger, U., Husmann, K., Bucher, K., Andres, A.C., & Schäfer, R.(1 9 9 7)J. Cell Biol.,1 3 6,9 3 5―9 4 4. 3 7)DiSepio, D., Ghosn, C., Eckert, R.L., Deucher, A., Robinson, N., Duvic, M., Chandraratna, R.A., & Nagpal, S.(1 9 9 8)Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A.,9 5,1 4 8 1 1―1 4 8 1 5. 3 8)Akiyama, H., Hiraki, Y., Noda, M., Shigeno, C., Ito, H., & Nakamura, T.(1 9 9 9)J. Biol. Chem.,2 7 4,3 2 1 9 2―3 2 1 9 7. 3 9)Shyu, R.-Y., Hsieh, Y.-C., Tsai, F.-M., Wu, C.-C., & Jiang, S.Y.(2 0 0 8)Amino Acids,3 5,1 2 9―1 3 7. 4 0)Nazarenko, I., Schäfer, R., & Sers, C.(2 0 0 7)J. Cell Sci., 1 2 0, 1 3 9 3―1 4 0 4. 4 1)Jahng, W.J., Xue, L., & Rando, R.R.(2 0 0 3)Biochemistry, 4 2, 1 2 8 0 5―1 2 8 1 2. 4 2)Xue, L. & Rando, R.R.(2 0 0 4)Biochemistry,4 3,6 1 2 0―6 1 2 6. 4 3)Jin, X.-H., Uyama, T., Wang, J., Okamoto, Y., Tonai, T., & Ueda, N.(2 0 0 9)Biochim. Biophys. Acta,1 7 9 1,3 2―3 8. 4 4)Uyama, T., Morishita, J., Jin, X.-H., Okamoto, Y., Tsuboi, K., & Ueda, N.(2 0 0 9)J. Lipid Res.,5 0,6 8 5―6 9 3. 4 5)Uyama, T., Jin, X.-H., Tsuboi, K., Tonai, T., & Ueda, N. (2 0 0 9)Biochim. Biophys. Acta,1 7 9 1,1 1 1 4―1 1 2 4. 4 6)Duncan, R.E., Sarkadi-Nagy, E., Jaworski, K., Ahmadian, M., & Sul, H.S.(2 0 0 8)J. Biol. Chem.,2 8 3,2 5 4 2 8―2 5 4 3 6. 4 7)Jaworski, K., Ahmadian, M., Duncan, R.E., Sarkadi-Nagy, E., Varady, K.A., Hellerstein, M.K., Lee, H.Y., Samuel, V.T., Shulman, G.I., Kim, K.H., de Val, S., Kang, C., & Sul, H.S. (2 0 0 9)Nat. Med.,1 5,1 5 9―1 6 8. 4 8)Pappan, K., Austin-Brown, S., Chapman, K.D., & Wang, X. (1 9 9 8)Arch. Biochem. Biophys.,3 5 3,1 3 1―1 4 0. 4 9)Wang, J., Okamoto, Y., Morishita, J., Tsuboi, K., Miyatake, A., & Ueda, N.(2 0 0 6)J. Biol. Chem.,2 8 1,1 2 3 2 5―1 2 3 3 5. 5 0)Natarajan, V., Reddy, P.V., Schmid, P.C., & Schmid, H.H.O. (1 9 8 1)Biochim. Biophys. Acta,6 6 4,4 4 5―4 4 8. 5 1)Schmid, P.C., Reddy, P.V., Natarajan, V., & Schmid, H.H.O. (1 9 8 3)J. Biol. Chem.,2 5 8,9 3 0 2―9 3 0 6. 5 2)Natarajan, V., Schmid, P.C., Reddy, P.V., & Schmid, H.H.O. (1 9 8 4)J. Neurochem.,4 2,1 6 1 3―1 6 1 9.

〔生化学 第8 3巻 第6号

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