BIPLACA HYCHECK. Diseñadas para evaluar la contaminación Microbiológica tanto de Superficies (Paredes, techos y equipos) como de Líquidos

BIPLACA HYCHECK Diseñadas para evaluar la contaminación Microbiológica tanto de Superficies (Paredes, techos y equipos) como de Líquidos. Son estadíst

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BIPLACA HYCHECK Diseñadas para evaluar la contaminación Microbiológica tanto de Superficies (Paredes, techos y equipos) como de Líquidos. Son estadísticamente comparables a una Torunda (Hisopo) y Placa Rodac.

Descripción Su diseño permite el contacto con la superficie, en cada placa se deposita medio de cultivo para la recuperación de microorganismos, contando con un área definida, la cual se encuentra claramente dividida en siete unidades de un centímetro para permitir el recuento de microorganismos por unidad de superficie. Sirve para el monitoreo de la flora microbiana del medio ambiente, superficies, paredes, techos y líquidos siendo una herramienta para la consecución de buenas prácticas de manufactura en fábricas de alimentos, cosméticos o farmacéuticas. Fueron creadas para el seguimiento de la flora microbiana de líquidos (por ejemplo leche) y las superficies de fabricas de alimentos, estadísticamente comparable con hisopo y placas de contacto. Hycheck es una Biplaca con bisagras de plástico, con dos superficies de agar por ambos lados. La superficie del agar se extiende por encima de la pared que permite el contacto con las superficies. Hycheck consta de diferentes combinaciones para satisfacer las diversas necesidades de control de diferentes tipos de contaminación microbiana.

Componentes principales -

Digerido pancreático de caseína y otras peptonas proporcionan la fuente de carbono y nitrógeno. Extracto de levadura aporta vitaminas, cofactores, nitrógeno y carbono. Digerido papaic de harina de soya proporciona nitrógeno, vitaminas y minerales. Dextrosa (glucosa) proporciona los hidratos de carbono fermentables. Cloruro de sodio mantiene el equilibrio osmótico. Agar agente de la solidificación.

Biplaca Hycheck D / E Agar neutralizante -

Tioglicolato de sodio neutraliza compuestos mercuriales. Tiosulfato de sodio neutraliza el yodo y cloro. Bisulfito de sodio neutraliza el formaldehído y el glutaraldehído. Lecitina neutraliza compuestos de amonio cuaternario Polisorbato 80 neutraliza los compuestos fenoles, hexaclorofeno, formol y, con la lecitina, el etanol. Bromocresol púrpura indicador colorimétrico.

Biplaca Hycheck VRBG - Sales biliares y cristal violeta inhiben las bacterias Gram.-positivas. *Las colonias fermentadoras de la glucosa producen colonias rojas con halos de color rojo-púrpura en presencia de rojo neutro, un indicador de pH. Biplaca Hycheck Rosa de Bengala + Cloranfenicol -

Fosfato monopotásico proporciona equilibrio osmótico. Sulfato de magnesio proporciona los oligoelementos necesarios. Rosa de Bengala es un agente selectivo que inhibe el crecimiento bacteriano y limita el tamaño y la altura de las colonias de más rápido crecimiento en especial los mohos. El Rosa de Bengala es absorbido por la levadura y las colonias de moho, facilitando así su reconocimiento y enumeración.

-

Cloranfenicol inhibe las bacterias. TTC, (trifenil tetrazolio cloruro) indicador redox.

Formulacion D / E Agar neutralizante Digerido Pancreático de caseína. . . . . . 5,0 g Extracto de levadura. . . . . . . . . . . . . . . 2,5 g Dextrosa. . . . . . . . . . . . . . . . . . …… . . . 10,0 g Tioglicolato de sodio. . . . . . . .. . . . . . . . 1,0 g Tiosulfato de sodio. . . . . . . . . . . . .. . . . . 1,0 g Bisulfito de sodio. . . . . . . . . . . . .. . . .. . 2,5 g Lecitina. . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . .. .. . 7,0 g Polisorbato 80. . . . . . . . . . . .. . . . . . . . 5,0 g Bromocresol púrpura. . . . . . . . . . . . . . . 0,02 g Agar. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . 15,0 g Agar tripticasa de soya Digerido Pancreático de caseína. . . . . . . .15,0 g Digerido Papaic de harina de soya. . . . . . 5,0 g Cloruro de sodio. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5,0 g Agar. . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . 15,0 g Agar VRBG Extracto de levadura. . . . . . . . . . . . . . . . . . 3,0 g Peptona. . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . 7,0 g Dextrosa. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 10,0 g El cloruro de sodio. . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5,0 g Las sales biliares No. 3. . . . . . . . .. . . . . . . 1,5 g Rojo neutro. . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . 0,03 g Violeta Cristal. . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . 0,002 g Agar. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 15,0 g

Agar Plate Count Digerido Páncreatico de caseína. . . . . . . . 5,0 g Extracto de levadura. . . . . . . . . . . . . . . . . . 2,5 g Dextrosa. . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . .1.0 G Agar. . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . .. . 15,0 g Biplaca con TTC contiene. . . . . . . . . . . . . . 0,1 g / L Agar Rosa Bengala + Cloranfenicol Digerido Papaic de harina de soya. . . . . . . 5,0 g Dextrosa. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 10,0 g Fosfato monopotásico. . . . . . . . . . . . . . . . . 1,0 g sulfato de magnesio. . . . . . . . . . . . . . . . . . 0,5 g Rosa de Bengala. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 0,05 g Agar. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . 15,0 g Cloranfenicol. .. . . . . . .. . . … . . . . . . . . . . 0,05 g Precauciones: Para uso en laboratorio Almacenamiento Almacenar la Biplaca Hycheck de 2 - 8 º C, con la flecha de la etiqueta de la caja hacia arriba en posición vertical. Fecha de Vencimiento La fecha de caducidad se aplica a el producto en su envase intacto de la forma que se indica. No utilizar un producto si no cumple especificaciones de identidad y rendimiento. VARIEDAD HYCHECK La Biplaca Hycheck son productos diseñados para satisfacer las diversas necesidades de los diferentes tipos de monitoreo de contaminación microbiana. Todas las Biplacas contienen dos superficies de agar. La mayoría de productos tienen en una lado un agar para dar un recuento total y no selectivo y el otro lado está diseñado para identificar o seleccionar un grupo específico de microorganismos.

Modo de Uso 1. Destapar el recipiente y retirar la Biplaca Hycheck , teniendo cuidado de no tocar el agar que se encuentra en la superficie. 2. TOMA DE MUESTRA Para superficies. - Sostenga Biplaca Hycheck contra la superficie a evaluar. Presione hacia abajo en el mango para doblar la Biplaca. Aplique una presión firme y constante en la superficie durante unos segundos con cuidado de no frotar la Biplaca en la superficie. Vuelva a colocar la Biplaca en el contenedor y cerrar bien. ParaLíquidos - Sumergir el Hycheck en el líquido de prueba para que la superficie del agar se cubran totalmente.Si no hay suficiente líquido, se vierte el liquido sobre la superficie de la Biplaca Hycheck. Dejar escurrir. Vuelva a colocar la Biplaca en el recipiente y cerrar herméticamente

3. Identificación de la muestra. - Indicar el lugar, fecha, hora e indicar si la muestra ha sido tomada antes o después de la limpieza. 4. Incubación - Incubar en posición vertical 5. Lectura - Saque la Biplaca del recipiente y contar el número de colonias en cada superficie del agar.

MODO DE EMPLEO PARA LOS PRODUCTOS ESPECÍFICOS HYCHECK Enterobacteriaceae, Referencia 290003 Placa1. - Cubierta con Agar VRBG, color del medio claro rojo, se utiliza para el recuento de Enterobacterias. La presencia de Enterobacterias, coliformes, Salmonella, Klebsiella spp y Citrobacter en los alimentos crudos es un indicador de contaminación fecal. Su presencia después del tratamiento puede indicar un fallo en el procedimiento de fabricación. Placa 2. -

Cubierta con agar tripticasa de soya, medio incoloro, dará un recuento total de bacterias aerobias.

INCUBACIÓN. - Incubar en posición vertical a 35 - 37 º C durante 24 horas. Examinar la Biplaca de nuevo después de 24 h más incubación. LECTURA DE RESULTADOS -

-

Agar tripticasa de soya: Cuente el número total de colonias en la Biplaca después de 48 h de incubación para obtener el recuento total de bacterias. Agar VRBG las Enterobacterias que fermentan la glucosa producen en el medio acido y el descenso resultante en el pH hace que las sales biliares se precipiten mostrando asi las colonias de color rojo con un halo rojo opaco. Distintas a la colonias no fermentadoras glucosa permanecen incoloras en el medio y no muestran ningún halo de bilis. La mayoría de los organismos gram-positivos son inhibidos en el medio. Contar las colonias rojas rodeadas de un precipitado de la bilis para obtener el recuento de enterobacterias.

Crecimiento Típico de Microorganismos

Microorganismo

Agar Tripticasa de Soya (24 horas)

V.R.B.G.A. (24 horas)

Enterobacter aerogenes ATCC 13048

Buen Crecimiento

Buen Crecimiento

Escherichia coli ATCC 25922

Buen Crecimiento, Colonias de Color Crema

Colonias de Color Rojo, Rodeadas de un halo Rojo Opaco

Proteus mirabilis NCTC 11938

Buen Crecimiento

Buen Crecimiento

Buen Crecimiento

Buen Crecimiento

Salmonella typhimurium ATCC 14028

Buen Crecimiento, Colonias de Color Crema

Colonias de Color Rojo, Rodeadas de un halo Rojo Opaco

Staphylococcus aureus ATCC 25923

Buen Crecimiento, Colonias

Enterococcus faecalis ATCC 19433

Buen Crecimiento, Colonias Pequeñas de Color Blanco

Shigella sonnei ATCC 25931

de Color Amarillo

Crecimiento Inhibido

Crecimiento Inhibido

Levaduras y Mohos, Referencia 290006. Placa 1. - Cubierta con Agar Rosa de Bengala + Cloranfenicol, agar selectivo recomendado para el aislamiento de levaduras y los Mohos. El pH del medio es casi neutro para mejorar el crecimiento de cepas sensibles a los ácidos.

Placa 2. - Cubierta con Agar Tripticasa de Soya, medio incoloro se recomienda en la Farmacopea Europea y la Farmacopea de los Estados Unidos para las pruebas de límites microbianos. INCUBACIÓN - Incubar en posición vertical a 30 º C. Contar a las 48 horas las colonias que aparecen en el Agar Tripticasa de Soya y para el Agar Rosa de Bengala contar las colonias después de 120 horas de incubación. LECTURA DE RESULTADOS - Agar Tripticasa de Soya. Contar el número total de colonias en el agar para obtener la recuento total de bacterias aerobias. - Agar Rosa Bengala + Cloranfenicol: Cuente el número total de Mohos y Levaduras (colonias de levaduras aparecen de color rosa debido a la absorción de Rosa de Bengala). El crecimiento bacteriano se inhibe en este medio. Crecimiento Típico Agar Rosa de Bengala

Agar Tripticasa de Soya (48 horas)

+ Cloranfenicol ( 5 dias)

Candida albicans ATCC 2091

Buen Crecimiento, Colonias de Color Plateadas

Buen Crecimiento, Colonias de Color Rosadas Palidas

Aspergillus niger NCPF 2275

Buen Crecimiento, Colonias que aparecen de color Blanco y filamentosas,convirtiéndose en negro después de 5 días de incubación

Buen Crecimiento, Colonias que aparecen de color Blanco y filamentosas,convirtiéndose en negro después de 5 días de incubación

Saccharomyces cerevisiae NCYC 1211

Buen Crecimiento

Buen Crecimiento

Serratia marcescens ATCC 8100

Buen Crecimiento

Crecimiento Inhibido

Microorganismo

E.coli ATCC 25922

Buen Crecimiento, Colonias de Color Crema

Crecimiento Inhibido

Staphylococcus aureus ATCC 25923

Buen Crecimiento, Colonias de Color Amarillo

Crecimiento Inhibido

Streptococcus pyogenes ATCC 19615

Buen Crecimiento

Crecimiento Inhibido

Control de la desinfección, Referencia 290002 Placa 1. -

Contiene agar D / E Neutralizante, agar utilizado para la determinación de la eficiencia de los procedimientos de Limpieza y desinfección.Agar D / E neutralizante neutralizará una amplio espectro de productos químicos antisépticos y desinfectantes incluidos los compuestos de amonio cuaternario, fenólicos, yodo, cloro preparado, mercuriales, el formaldehído y el glutaraldehído. La neutralización permite el crecimiento de bacterias que se mantienen en bacteriostasis después de la desinfección pero, sin embargo, siguen siendo viables. Placa 2. - Cubierta con Agar Tripticasa de Soya, medio incoloro se recomienda en la Farmacopea Europoea y la Farmacopea de los Estados Unidos para las pruebas de límites microbianos. En este medio se da el recuento de aerobios totales. Se tomarán muestras antes de la limpieza con el Agar Tripticasa de Soya. INCUBACIÓN. - Incubar en posición vertical a 35 - 37 º C, revisar después de 24 horas de incubación y luego a las 48 horas.

LECTURA DE RESULTADOS -

Agar Tripticasa de Soya. Cuente el número de colonias para obtener una evaluación de la carga microbiana antes de la limpieza. Agar D / E neutralizante. Cuente el número de colonias en D / E Agar Neutralizante para detectar el número de organismos supervivientes después de la limpieza y desinfección.

Crecimiento Tipico

Microorganismo Aspergillus niger NCPF 2275 Bacillus subtilis ATCC 6633

Agar Tripticasa de Soya (24 horas) Buen Crecimiento Buen Crecimiento, Colonias Grandes

Agar D/E Neutralizante ( 24 horas) Buen Crecimiento Buen Crecimiento, Desbaste Color Amarillo alrededor de la Colonia

Candida albicans ATCC 2091

Buen Crecimiento

Escherichia coli ATCC 25922

Buen Crecimiento, Colonias de Color Crema

Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853

Buen Crecimiento, Buen Crecimiento, Colonias de Color Amarillo Colonias de Color Amarillo

Staphylococcus aureus ATCC 25923

Buen Crecimiento, Colonias de Color Crema

Buen Crecimiento, Colonias de Color Amarillo

Staphylococcus epidermidis ATCC 12228

Buen Crecimiento

Buen Crecimiento

Buen Crecimiento Buen Crecimiento, Colonias de Color Amarillas

Plate Count, Referencia 290005 Ambas lados de la Placa contienen Agar Plate Count, pero solamente un lado incorpora 0.01% de trifenil cloruro de tetrazolio (TTC). Esto ayuda al el reconocimiento de las colonias de microorganismos debido a la formación del colorante rojo insoluble formazán cuando el TTC es reducido.

INCUBACIÓN - Incubar en posición vertical en 35 - 37 º C, revisar a las 24 y 48 horas de incubación. LECTURA DE RESULTADOS -

Cuente el número de colonias en ambos lados. Deben ser aproximadamente igual. Un pocos microorganismos pueden crecer menos en presencia de TTC. Si el recuento de colonias no es equivalente en las dos placas, tomar como referencia el mayor conteo.

Crecimiento Tipico

Microorganismo

Agar Plate Count (24 horas)

Agar Plate Count con TTC ( 24 horas)

Enterococcus faecalis ATCC 19433

Buen Crecimiento

Buen Crecimiento

Escherichia coli ATCC 25922

Buen Crecimiento, Colonias Color Crema

Buen Crecimiento, Colonias Color Crema

Proteus vulgaris ATCC 13315

Buen Crecimiento

Salmonella typhimurium ATCC 14028

Buen Crecimiento

Buen Crecimiento

Staphylococcus aureus ATCC 25923

Buen Crecimiento, Colonias de Color Crema

Buen Crecimiento, Colonias de Color Rojo

Buen Crecimiento

LIMITACIONES No utilice la Biplaca Hycheck si está contaminado o el agar se deshidrata de manera significativa.

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