BRONQUITIS INFECCIOSA AVIAR

BRONQUITIS INFECCIOSA AVIAR Enfermedad vírica aguda de la gallina, que produce signos respiratorios, problemas renales (broilers) y alteraciones en

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BRONQUITIS INFECCIOSA AVIAR

Enfermedad vírica aguda de la gallina, que produce signos respiratorios, problemas renales (broilers) y alteraciones en la puesta. • Disminución de la puesta de huevos • Disminución de la calidad de los huevos: huevos en fárfara, con la cáscara rugosa y deformada, clara acuosa. • Disminución de la incubabilidad (10-20%) • Presencia de “falsas ponedoras”. • Aumento del índice de transformación en broilers

ETIOLOGIA: Coronavirus • Antígeno común por ELISA • Más de 50 serotipos por SN: • Massachusetts M-41 (respiratorio, ovario), Connecticut, Arkansas • Australia T (oviducto, aparato renal), Gray y Holte (renal). • Cepas europeas (Dutch) D207; D212 (oviducto) • Cepas 4/91. • Emergencia de nuevos serotipos • Virus RNA pleomórficos, con envoltura y proyecciones glicoproteicas • Sensibles al calor y a la mayoría de desinfectantes

 Cultivo del virus: • Embrión de pollo: enanismo, embolamiento, plumas rizadas, espesamiento de la MCA. • Cultivos de células renales: sincitios y vacuolización. • Cultivo de anillos traqueales: ciliostasis.

Foto: Sylvester et al., 2004

EPIDEMIOLOGIA Sensibilidad: • Afecta únicamente a las gallinas. • La gravedad es inversamente proporcional a la edad y mayor al inicio de la puesta. • Forma renal más frecuente en razas pesadas. Transmisión: • Vía aerógena a partir de exudados nasales y traqueales o de las deyecciones. • Contagio directo o indirecto (muy contagioso). • Algunas aves quedan portadoras (infección persistente) y eliminan virus durante meses.

Otros factores predisponentes • Infecciones previas por virus con tropismo respiratorio (NC, LT, TRT) o por virus inmunosupresores (Gumboro, anemia infecciosa del pollo) • Otras infecciones respiratorias: E. coli, Avibacterium paragallinarum, Mycoplasma gallisepticum (CRD), etc. • Malas condiciones higiénicas y de manejo: frío, calendario intensivo de vacunaciones, stress...

PATOGENIA Periodo de incubación: 18-36 horas. • Vía de entrada: • •

Aerógena: multiplicación en tráquea, sacos aéreos o pulmón Digestiva: multiplicación en mucosa del proventrículo

• Viremia corta y multiplicación en: • Células epiteliales del aparato respiratorio. • Según cepa de virus y edad del ave: oviducto y riñón. • Bolsa de Fabricio, tonsilas cecales y cloaca.

• Evolución en 10-14 días. • Inmunidad de larga duración frente a serotipo. • Inmunidad pasiva las 2-4 primeras semanas de vida frente al serotipo homólogo.

Cuadro clínico: 1 día - 1 mes • Signos respiratorios: tos, estornudos, exudados nasales y oculares, estridor, disnea. • Depresión, apilamiento en busca de calor, disminución del consumo de pienso, adelgazamiento. • Morbilidad hasta el 100%, pero mortalidad baja (hasta el 30%). • Muerte por asfixia y aplastamiento.

Cuadro clínico: 5-20 semanas • Signos respiratorios moderados. • Atrofia del oviducto: aparición de falsas ponedoras (ponedoras internas). • Cepas nefropáticas (en aves 3-6 semanas): depresión, signos respiratorios, plumas erizadas, sed intensa, diarrea blanquinosa, y hasta un 30% mortalidad.

Cuadro clínico: >20 semanas • Ligeros signos respiratorios. • Caída de la puesta hasta el 50%. Recuperación lenta (46 semanas) sin volver al ritmo de producción normal. • Disminución de la calidad: • huevos en fárfara • cáscaras arrugadas • cáscaras frágiles • huevos deformados • claras acuosas.

Lesiones •

Inflamación catarral en tráquea, cavidad nasal y senos infraorbitarios.



Atrofia de oviducto



Nefritis y palidez riñones

Tapones caseosos en bronquios Fibrina en tráquea

Inflamación renal y depósito de uratos

Oviducto afectado A: infundíbulo B: magnum C: istmo

A

D: útero E: vagina

Normal

A

Alteración de folículos ováricos

Diagnóstico Clínico • Signos respiratorios en pollitos, alta morbilidad, pero baja mortalidad. • Caída de la puesta hasta del 50% y huevos de mala calidad. • Presencia de alto porcentaje de falsas ponedoras. • Mortalidad en broilers con lesiones renales.

Gráfico: Intervet http://www.bronquitis-infecciosa.com/signos-clinicos-bi.asp

Diferencial: Signos respiratorios • Influenza aviar: todas

las especies. Cuadro con edemas y hemorragias, alta mortalidad con cepas de elevada virulencia.

• Newcastle: todas las

especies. Alta mortalidad con cepas velogénicas. Signos digestivos y nerviosos.

• Laringotraqueítis:

Cuadro únicamente respiratorio. Muerte por goteo (1% diario). Evolución más lenta.

• CRD (Mycoplasma

gallisepticum) Aerosaculitis en pollos. Complicación frecuente.

• Coriza infeccioso

(Haemophilus paragallinarum): abundante secreción nasal y ocular, conjuntivitis.

• Aspergilosis (Aspergillus

fumigatus): Contaminación ambiental por esporas del hongo. Granulado amarilloverdoso sobre sacos aéreos.

Cuadro renal • Enfermedad de Gumboro: Riñones inflados y con uratos. Aumento de tamaño con hemorragias de la bolsa de Fabricio. • Deficiencias nutricionales

Alteración de la puesta • Síndrome de caída de la puesta (adenovirus EDS-76). Igual a BIA. Diferenciar por serología.

• Newcastle: caída del 100% recuperable y alteración de la calidad. Signos respiratorios, nerviosos y digestivos.

• Encefalomielitis aviar: caída puesta y temblores en pollitos

• Intoxicación por sal • Laringotraqueítis: caída (falta de agua)

transitoria. Estornudos sanguinolentos.

• Situaciones de stress: corte de picos, traslados, mal manejo, vacunaciones, etc.

Diagnóstico de laboratorio • Aislamiento vírico: •

Muestras de tráquea, pulmones, sacos aéreos y riñones.



Inoculación en embrión de pollo de 9-12 días (SPF, carente de anticuerpos)



Tras varios pases, se observa enanismo, embolamiento y retracción de extremidades.

• Inmunofluorescencia sobre cortes de tráquea. • RT-PCR seguido de secuenciación o RFLP. • Serología: SN (específico de cepa), ID y ELISA.

Tipificación del virus de la Bronquitis Infecciosa (VBI) por medio del RT-PCR y RFLP

Secuenciación del fragmento amplificado por PCR

Vacunas atenuadas • Las más empleadas derivan de la cepa Massachusetts (H). • Pueden aplicarse en masa mediante spray (gota gruesa), en el agua de bebida (menos eficaz) o por gota en el ojo. • H-120: La más atenuada y segura para pollitos. • H-52: Menos atenuada, pero más inmunógena. Sólo en aves vacunadas previamente con H120).



Cepas D (europeas).

• El virus vacunal puede diseminarse y en ambientes desfavorables pueden observarse reacciones adversas.

Vacunas inactivadas • No se produce diseminación de virus vacunal (seguridad). • Se pueden combinar varios antígenos en la misma dosis. • Son más caras de elaborar y deben aplicarse por vía parenteral (I.M. o S.C.). • Necesario administrar previamente una dosis de vacuna atenuada.

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