CURRICULUM VITAE Nombres: Benoit Mathieu Apellido: DIRINGER Dirección: Tumbes-Peru Tel/Fax: (055) 965 381 633 E-mail: [email protected] Skype; diringerb Fecha de Nacimiento: 13 de Agosto de 1982 Lugar de nacimiento: Isla de la Reunión (Francia) Nacionalidad: Francesa Estado Civil: Soltero

ESTUDIOS REALIZADOS:

2004-2007: Titulo de Master M.Sc., Maestría EPHE, en la Universidad de Montpellier II, Francia. Atribuido con mención Muy Honorable. Tema: Caracterización, epidemiología y prevención del virus de la mionecrosis muscular infecciosa (IMNV) en los cultivos de Litopenaeus vannamei del Nordeste Brasilero. (FranciaBrasil). 2003-2004: Certificado de Capacidad para la Investigación, en la Escuela Práctica de Estudios Superiores EPHE. Laboratorio de Patología Comparada. Universidad de Montpellier II y La Sorbonne, Paris. 2002-2003: Diploma de Técnico Superior del Mar (DTSM) en Ingeniería Biológica y Producciones Marinas. INTECHMER (Instituto de Ciencias y Técnicas del Mar), en Cherbourg (50), Francia. Atribuido con mención Muy Honorable. Temas: - Evaluación de una termoterapia por la prevención del virus de la mancha blanca WSSV (White Spot Syndrome Virus) con diferente cepas sudamericanas de post-larvas del camarón blanco Litopenaeus vannamei. (Ecuador) - Desarrollo, y producción de protoplastos obtenidos a partir de suspensión celulares de la cianobacteria spirulina (Arthrospirum sp.). (Francia) 2000-2001: Diploma de técnico especializado en acuacultura tropical y acuariologia. CREUFOP (Centro regional universitario), Universidad de Montpellier II (34). Temas: - Desarrollo y perspectiva del cultivo de la red drum (Scianops oscellatus) en la isla de la Reunión. (Isla de la Reunión) - Optimización del cultivo de microalgas (Tetraselmis sp.) utilizadas en estadio larval. (Isla de la Reunión) - El cultivo del Tilapia (Oreochromis sp.) en la isla de la Reunión. (Isla de la Reunión) - Estudio de las larvas de peces encontradas en los mats flotantes alrededor del arrecife de Saint Gilles. (Isla de la Reunión).

2001: Diploma Federal de instructor en biología subacuática. Federación Francesa de Estudio y Deporte Submarino (FFESSM). Sète (33).

2000-2001: Bachillerato Científico con especialidad en biología, agronomía tropical y ecología. Saint Paul Isla de la Reunión (974).

1999: Diploma federal de buceo, segundo grado Internacional (CMAS **). Saint Gilles, Isla de la Reunión (974).

EXPERIENCIA PROFESIONAL: Perú 2012 hasta la fecha: Director de INCA´BIOTEC SAC, responsable de proyectos de investigación en biotecnología medical. Perú 2011-2012: Gerente general de la empresa especializada en Biotecnología, INCA’BIOTEC SAC, Tumbes Perú.

Perú 2011 hasta la fecha: Coordinador de investigación y de desarrollo del proyecto preseleccionado FIDECOM “Desarrollo de nuevos kits de diagnóstico molecular de tipo PCR (nested-PCR) para la detección de rickettsias, herpesvirus e iridovirus en los moluscos; Concha de abanico (Argopecten purpuratus), ostra del pacifico (Crassostrea gigas) y chanque (Concholepas concholepas)” , en la Universidad Nacional de Pesquería de Tumbes, Tumbes, Perú. Proyecto realizado: Diseño de sondas moleculares para detección de patologías en moluscos. Análisis de secuencias, estudio epidemiológico.

Perú 2010 hasta la fecha: Coordinador de investigación y de desarrollo del proyecto FINCyT “Desarrollo de metodologías para la reproducción y larvicultura de la Concha Negra (Anadara tuberculosa), destinada a operaciones de repoblación en el Santuario Nacional Los Manglares de Tumbes y engorde en cultivo.”, en Marinazul, Tumbes, Perú. Proyecto realizado: Desarrollo de metodologías para la reproducción y el cultivo larvario de una especie en declino, aislamiento y identificación de patógenos asociados a este especie, desarrollo de marcadores moleculares para evaluación de la diversidad genética.

Perú 2009-2011: Director de la empresa especializada en Biotecnología, INCA’BIOTEC SAC, Tumbes Perú. Perú 2007 – 2010: Coordinador de investigación y de desarrollo del proyecto FINCyT “ Domesticación de comunidades microbianas asociadas al cultivo del langostino para la reducción del alimento artificial, mejoramiento de la calidad de agua y prevención de bacteriosis”, en Marinazul, Tumbes, Perú. Proyecto realizado: Identificación, aislamiento y cultivo de cepas de bacterias, microalgas, protozoarios, nematodos y crustáceos colectados sobre los mats, mediante el uso de microscopia confocal a barrido laser (LSCM) y técnicas de biología molecular. Consultor de investigación del proyecto FINCyT “Caracterización y Domesticación de la Flora Microbiana del Tracto Digestivo del Langostino Litopenaeus vannamei para la Prevención de Enfermedades Bacterianas y el Incremento de Productividad”, en Marinazul, Tumbes, Perú. Proyecto realizado:

Identificación, aislamiento, cultivo y selección de cepas de bacterias del tracto digestivo de camaron mediante el uso de técnicas microbiológicas, bioensayos, de LSCM y técnicas de biología molecular. Consultor de investigación del proyecto FINCyT “Prevención de enfermedades y mejoramiento genético del camarón Litopenaeus vannamei”, en Marinazul, Tumbes, Perú. Proyecto realizado: Selección de reproductores, desarrollo de marcadores del sistema inmunitario por LSCM.

Vietnam 2005-2007: Coordinador del proyecto de prevención de enfermedades y mejoramiento genético de Litopenaeus vannamei, en Concepto Azul (laboratorio de diagnostico y producción de nauplios) en Duc Pho, Vietnam. Proyecto realizado:  Instalación y manejo de 2 laboratorios de diagnóstico de enfermedades de camarones (Penaeus monodon y Litopenaeus vannamei). Desarrollo de pruebas de nested-PCR y LAMP.  Capacitación del personal para las diferentes técnicas de biología molecular y bacteriología (PCR, LAMP, septicemia).  Realización y seguimiento de las diferentes etapas administrativas para crear un laboratorio de producción de camarones L. vannamei libres de enfermedades y resistentes.  Producción de nauplios de L. vannamei.

Brasil 2004-2005: Coordinador del proyecto de prevención y de mejoramiento genético de Litopenaeus vannamei, en la empresa Concepto Azul, en Maricultura Netuno, Recife, Brasil. Proyecto realizado:  Desarrollo de un kit de biología molecular para el diagnostico por RT nested-PCR del virus IMNV.  Prevención de las infecciones ocasionadas por los virus IMNV e IHHNV, y de la rickettsia intracelular NHP en el cultivo del camarón blanco Litopenaeus vannamei, en base de la certificación de los reproductores por nested-PCR.  Desarrollo de infecciones experimentales y producción de camarones Litopenaeus vannamei resistentes al virus IMNV. Francia 2003-2004: Investigación sobre la enfermedad causada por el IMNV, desarrollo de un kit de diagnostico por PCR para Concepto Azul, en la Universidad de Montpellier II y con el laboratorio de patología comparativa de los invertebrados (IFREMER, INRA, CNRS, UMPII), Francia. Proyecto realizado:  Identificación, caracterización del nuevo virus identificado como IMNV usando microscopia electrónica, y clonaje (bacterias electro competentes).  Desarrollo del diagnóstico por RT PCR para el IMNV. Ecuador 2003: Asesor científico para la implementación y el desarrollo de un programa de patología experimental de Litopenaeus vannamei, en la empresa Concepto Azul. Proyecto realizado:  Selección de animales resistentes a WSSV.  Aislamiento de una cepa de WSSV termoresistente. Isla Reunión 2000-2003: Practicas en ARDA (Asociación de la Reunión por la acuacultura), cultivo de red drum (Scianops oscellatus) y desarrollo del cultivo de Tetraselmis sp. para la larvicultura en El Port (5 meses). Practicas en ARDA sobre el cultivo del Tilapia rojo y dorado (Oreochromis sp.) en Etang Salé (2 meses). Prácticas en el Acuario de la Reunión (2 meses). Proyecto realizados:

 

Producción de lavas de red drum. Multiplicación por 3 de la producción de microalgas del laboratorio.

ACTIVIDADES DOCENTES: DIRECCIÓN DE TESIS DE GRADO : Tesis para obtención del grado de Ingeniero pesquero AUTORES

TEMAS

1 Delphine Serpin (Francia) Analyse épidémiologique des populations de Penaeus monodon et Litopenaeus vannamei en élevage au Vietnam. Erik Preciado Efecto del périfiton seleccionado sobre la calidad del agua del cultivo del Penaeus vannamei Neyra (Peru) Jhon Willington Ortiz Sandoya (Peru) Evaluación de la utilización de ciliados para mejorar el cultivo larvario del langostino.

2 Pablo 3

4 Chistian Ali Mattos (Peru) Evaluación nutricional de diatomeas sobre el cultivo de langostino Peneaus vannamei 5 Jean Edison Zárate Crecimiento y supervivencia de postlarvas de penaeus vannamei utilizando como complemento alimenticio périfiton natural y périfiton seleccionado Feijoó (Peru) 6 Juan Gerardo Quimi Utilización de bacterias asociadas al périfiton de sustratos artificiales en el sistema de Mujica (Ecuador)

7 Tyrone Patricio Vera (Ecuador)

Vera

8 Nicol Picoron (Francia)

9 Pierre Bozola (Francia) Angel Poly (brazil)

10 Moises 11

Violeta Moreno (Pérou)

12 Mélanie Sahuquet (France) Master 13 Carolina Milena Solano Chavez (Pérou) Yuliana 14 Katherine Saavedra Olivos. (Pérou)

cultivo de camarón blanco (Litopenaeus vannamei)” “utilización de microalgas (diatomeas bentónicas) asociadas al périfiton sobre sustratos artificiales en el sistema de cultivo de camarón blanco (Litopenaeus vannamei) a realizarse en la estación experimental de la camaronera marinazul – tumbes - Perú” Evaluación del « périfiton » domesticado como suplémento alimenticio para post-larvas del cultivo de Litopenaeus vannamei en Perú. Metodologías aplicadas a la prevención de enfermedades en el langostino Litopenaeus vannamei Evaluación del uso de périfiton constituido por macroalgas (ulva sp.) sobre el cultivo de camarón Litopeneaus vannamei. (en curso) Maturation et reproduction du bivalve de mangroveAnadara tuberculosa. Universidad Nacional de Chimbote Biotechnologies appliquées ä deux espèces de mollusques d’intérêt aquacoles : cephalopoda, Octopus sp et bivalvia, Anadara tuberculosa EPHE Université de Montpellier II. Implementación de protocolos de PCR y q-PCR para la detección de herpesvirus en Crassostrea gigas y Argopecten purpuratus. Universidad Nacional de Tumbes Identificación molecular por PCR y nested PCR de rickettsias en Crassostrea gigas. Universidad Nacional de Tumbes

Equateur 2011 Curso teórico practico para la Maestria de biotecnología de la Universidad Nacional de Guayaquil : Introducción a la microscopia confocal a barrido laser (LSCM). Perú 2008: Curso teórico en la Universidad nacional de Pescaría de Tumbes (Perú). “Técnicas de .biología molecular: aplicación al diagnostico de enfermedades y a la selección y mejoramiento genético aplicado a acuicultura. Utilización de la nested PCR para el diagnostico de WSSV, y IHHNV. Perú 2008: Curso Practico en la Universidad nacional de Pescaría de Tumbes (Perú). Diagnostico de enfermedades de camarones. Extracción de ADN, diagnostico de WSSV y IHHNV por nested PCR, observación y interpretación de los resultados.

CONGRESOS Y SEMINARIOS (recientes): Perú 2012: Expositor en la primera conferencia Internacional de Oncología Medica y Biotecnología Molecular organizado por la facultad de Medicina de la Universidad de Chiclayo; Biotecnología molecular y fibrosis quística. Expositor en el seminario “Impacto de la variabilidad et del cambio climático del ecosistema de los Manglares de Tumbes Perú “organizado por el Instituto Geofísico del Perú y el IRDC (International Development Research Centre) ; “Métodologias para la reproducción y la larvicultura de la concha

negra (Anadara tuberculosa) destinada a fines de repoblamiento en el Sanctuario Nacional Los Manglares de Tumbes“. Expositor en el seminario académico “Los manglares del Perú: Importancia de la utilización durable en vista a Rio +20”: Producción de semillas de Anadara tuberculosa en laboratorio. Expositor de los resultados del proyecto FINCyT C71; Desarrollo de metodologías para la reproducción y larvicultura de la Concha Negra (Anadara tuberculosa), destinada a operaciones de repoblación en el Santuario Nacional Los Manglares de Tumbes y engorde en cultivo.”, Costa del Sol., Tumbes, Perú. Ecuador 2012: Expositor para la Sociedad Latino Americana de Acuicultura (SLA) en el Congreso-Taller Acuícola 2012; ““La producción de concha negra Anadara tuberculosa entre las nuevas alternativas acuícolas con implicaciones económicas, sociales y ambientales” en Machala. Colombia 2011: Expositor en el VI seminario Nacional de producción acuícola de la Universidad de Nariño; “Domesticación de los microorganismos asociados a los cultivos del camarón Litopenaeus vannamei para su uso en acuicultura. Expositor en el VI seminario Nacional de producción acuícola de la Universidad de Nariño; “Prevención de enfermedades y mejoramiento genético del camarón Litopenaeus vannamei.” Perú 2011: Expositor en el Tercer congreso nacional de acuicultura, Universidad Nacional Agraria La Molina; “Domesticación de comunidades microbianas asociadas al cultivo del langostino para la reducción del alimento artificial, mejoramiento de la calidad de agua y prevención de bacteriosis.” Expositor en el Tercer congreso nacional de acuicultura, Universidad Nacional Agraria La Molina; “Desarrollo de metodologías para la reproducción y larvicultura de la Concha Negra (Anadara tuberculosa), destinada a operaciones de repoblación en el Santuario Nacional Los Manglares de Tumbes y engorde en cultivo.”

Ecuador 2010: Expositor en el 1er congreso de Acuicultura andina “Manchala acuícola”; “Domesticación de los microorganismos para su uso en acuicultura” en Manchala. Expositor para la Sociedad Latino Americana de Acuicultura (SLA) ; ““BioFloc Tecnology” en acuicultura, conocimientos actuales y domesticación” y “Mejoramiento del cultivo de Litopenaeus vannamei a través de la domesticación del périfiton” en Guayaquil. Expositor para la Sociedad Latino Americana de Acuicultura (SLA) ; “Mejoramiento del cultivo de Litopenaeus vannamei a través de la domesticación del périfiton” en Guayaquil. Perú 2009: Participación al curso RAPCO Camarón organizado por la “American Soybean Association” y la “United Soybean Board” en Lima, Perú. Perú 2009: Participación al I Foro Macroregional Nor Centro de Acuicultura en la Universidad Nacional del Santa, Chimbote, Perú. Ecuador 2008: Participación al II simposio anual de Nicovita, Guayaquil, Ecuador Argentina 2008: Capacitación a Microscopía confocal a barrido láser, Instituto Investigación Medica Mercedes y Martín Ferreya-CONICET, Córdova Argentina. Perú 2007:

Participación al curso de caracterización de probióticos dictado por la Sociedad Latinoamericana de Acuacultura, en las instalaciones del Imarpe. Tumbes, Perú. Francia 2005: Caracterización de virus de camarón. Laboratorio de Patología Comparativa de los invertebrados. Laboratorio INRA/CNRS/Universidad de Montpellier II. Montpellier, Francia. Francia 2004: Purificación de virus de camarón y microscopía electrónica. Laboratorio de INRA, departamento Patología Comparada de San Christol Les Alez, Francia. IDIOMAS: Francés (idioma materno), inglés, español, portugués e creole (isla de la Reunión): Fluidos Vietnamita: moderado.

DIVERSOS: Licencia: Carro, barco. Deportes: Apnea, natación, buceó, ping pong, bádminton. Tiempo libre: lectura, cinema.

PUBLICACIONES: Leclercq G., Motte E., Cedeño V., Serrano J., Montaño J., Mello C., Diringer B., Mialhe E., 2013. "Shrimp disease prevention and genetic selection programs for resistance against pathogens in south america: strategy, results and perspectives". World Aquaculture Society (WAS). Diringer B., Vasquez R., Moreno V., Pretell K., Sahuquet M., 2012. Proyecto Peruano de reproduccion de la concha prieta con enfoque en repoblacion y acuacultura social. Aquacultura; Ju-Ag No.92: 20-23. Ramirez B., Avellan R. Diringer B., Ordinola A., Peralta T.; Mendoza O., Mialhe E., Motte E., 2012. First herpesvirus detection by semi-Nested PCR in several cultivated populations of a economically-important pectinid mollusk (Argopecten purpuratus). Aquaculture (submited). Diringer B., Vasquez R., Moreno V., Pretell K., Sahuquet M., 2012. Peru Project Studies Blood Cockles For Stock Enhancement, Aquaculture. The Global Aquaculture Advocate;Ju-Aout 2012, pp.48-50. Motte E., Serpin D., Vera T., Cayra E., Valdez M., Luzardo J., Diringer B., Cornejo S., Mialhe E,. 2010. Domestication of gut microbiota for shrimp aquaculture improvement. The Global Aquaculture Advocate ;Nov-Dec 2010, pp.58-60. Diringer,B.; Vera,T.; Quimi,J.; Luzardo,J.; Motte,E.; Torres,T.; Cayra,E., 2010. Domesticación del perifitón para el mejoramiento del cultivo del camarón Litopenaeus vannamei, Sociedad Latinoamericana de Acuicultura. Diringer B. Leclercq G., Serrano X., Montaño J., Ampuño A., Luzardo J., Mello C., Pimentel R., Lima S., Gauthier L., Cedeño V., Mialhe E., Boulo V., Motte E., 2010. Evidence for vertical and horizontal transmission of Infectious Myonecrosis Virus (IMNV) in Litopenaeus vannamei from Brazil. Aquaculture, Submited. Fatcheu C., Rosales Y., Valdez M., Diringer B., Luzardo J., Tiodjio E., Cedeño V., Leclercq G., Mialhe E., Motte E., 2010. Direct nitric oxide imaging in haemocytes of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei) using confocal microscopy. Fish and Shellfish Immunology. Submited. Diringer,B.; Vera,T.; Quimi,J.; Luzardo,J.; Motte,E.; Torres,T.; Cayra,E., 2010. Periphyton domestication offers feed in shrimp culture. Global Aquaculture Advocate, 1-2, 60-62.

Leclercq G., Diringer B., Torres T., Vera T., Quimi J., Cayra E., Pesantes S., Luzardo L., Motte E., 2009. Improvement of the whiteleg shrimp Litopenaeus vannamei culture through periphyton’s domestication. World Aquaculture Society (WAS). Motte E., Serpin S., Schires G., Pinto P., Mauri Y., Santana M., Valdez M., Medina J., Vera T., Cayra E., Diringer B., Cornejo S., Mialhe E., 2009. Domestication of gut microbiota for shrimp and fish aquaculture improvement. World Aquaculture Society (WAS). Diringer B., 2008. Caracterización, epidemiología y prevención del virus de la myonecrosis infecciosa (IMNV) en los cultivos de L.vannamei del Nordeste brasileiro. Tesis de maestría EPHE. Diringer B., 2003. Evaluación de una termoterapia para la prevención del virus WSSV en las post larvas de Litopenaeus vannamei de diferentes origines geográficas (Tesis de INTECHMER).

.