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UNIVERSIDAD DE EL SALVADOR FACULTAD DE QUIMICA Y FARMACIA
DETERMINACIÓN DE LA BIOACTIVIDAD DE EXTRACTOS DE 25 ESPECIES VEGETALES MEDIANTE INTERACCION CON ADN POR CROMATOGRAFIA LIQUIDA DE ALTA RESOLUCIÓN. Trabajo de Graduación presentado por: JOSE FELIX BERNAL XENIA ELIZABETH CRUZ BARAHONA MOISES ALEJANDRO SAENZ ZELADA Para optar al Grado de: LICENCIADO EN QUIMICA Y FARMACIA Septiembre 2002 San Salvador
El Salvador
Centroamérica
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UNIVERSIDAD DE EL SALVADOR RECTOR DRA. MARIA ISABEL RODRÍGUEZ
SECRETARIO GENERAL Lic. LIDIA MARGARITA MUÑOZ VELA
FACULTAD DE QUÍMICA Y FARMACIA
DECANO Lic. MARIA ISABEL RAMOS DE RODAS
SECRETARIO Lic. ANA ARELY CACERES MAGAÑA
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ASESOR
Lic. RHINA ANTONIETA TOLEDO Lic. ROCIO RUANO DE SANDOVAL Lic. MARIA C. ODETTE RAUDA ACEVEDO
JURADO
Lic. IRMA ISABEL VAQUERANO DE POSADA Lic. MARTA ALICIA TORRES DE PORTILLO M D E S EDUARDO CORTEZ GARCIA
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ÍNDICE RESUMEN INTRODUCCION
i iii
CAPITULO I 1.0
MARCO TEORICO
6
1.2 PRINCIPIOS ACTIVOS FORMADOS EN LAS PLANTAS
6
1.3 METABOLITOS PRIMARIOS
6
1.4 METABOLITOS SECUNDARIOS
7
1.4.1 ALCALOIDES
8
1.4.2 GLICÓSIDOS CARDIOTONICOS
9
1.4.3
GLICÓSIDOS SAPONÍNICOS
9
1.4.4
FLAVONOIDES
10
1.4.5
SESQUITERPENLACTONAS
11
1.4.6
ANTRAQUINONAS
12
1.4.7
TANINOS
12
1.5 BIOENSAYOS
14
1.6 ENSAYOS IN VITRO
16
1.7 DETERMINACION DE LA BIOACTIVIDAD EN EXTRACTOS DE PLANTAS
18
5
1.8 ENSAYO Artemia salina
26
1.9 ENSAYO Aedes aegypti
26
1.10 BIOENSAYO Actividad antimicrobiana
27
1.11 ENSAYO DETERMINACIÓN DE LA INTERACCIÓN CON ADN
27
1.11.1 FUNDAMENTOS DEL MÉTODO 1.12 GENERALIDADES DEL ADN
28 29
CAPITULO II 2.0 PARTE EXPERIMENTAL
32
2.1 MATERIAL, EQUIPO Y REACTIVOS
32
2.1.1 MATERIAL (Listado de plantas utilizadas)
32
2.1.2 EQUIPO
34
2.1.3 REACTIVOS
35
2.2 METODOLOGIA
2.3
37
2.2.1 RECOLECCIÓN DE MATERIAL VEGETAL
37
2.2.2 TRATAMIENTO PREVIO A LA EXTRACCIÓN DE EXTRACTOS
39
2.2.3 OBTENCIÓN DE EXTRACTOS CRUDOS
40
ANÁLISIS FITOQUIMICO PRELIMINAR
40
6
2.3.1 ENSAYOS PARA ALCALOIDES
41
2.3.2 ENSAYO PARA ANTRAQUINONA
42
2.3.3 ENSAYOS PARA GLICÓSIDOS SAPONÍNICOS
43
2.3.4 ENSAYOS PARA GLICÓSIDOS CARDIOTÓNICOS
44
2.3.5 ENSAYOS PARA FLAVONOIDES
45
2.3.6 ENSAYOS PARA SESQUITERPENLACTONAS
46
2.3.7 ENSAYOS PARA TANINOS
47
2.4 BIOENSAYO INTERACCIÓN CON ADN
48
2.4.1 PREPARACIÓN DE SOLUCIÓN MADRE DE ADN
48
2.4.2 PREPARACIÓN DE SOLUCIÓN DE DOXORRUBICINA
48
2.4.3 PREPARACIÓN DE SOLUCIÓN MADRE DE EXTRACTO
49
2.4.4 PREPARACIÓN DE ESTANDAR DE ADN
49
2.4.5 PREPARACIÓN DE SOLUCIÓN PATRÓN DE BIOACTIVIDAD POSITIVA 49 2.4.6 PREPARACIÓN DE SOLUCIÓN MUESTRA
50
2.4.7 CONDICIONES DEL CROMATOGRAFO LIQUIDO DE ALTA RESOLUCIÓN
50
7
2.4.8 DESARROLLO DEL BIOENSAYO
51
2.4.8.1 ESTABILIZAR CROMATOGRAFO
51
2.4.8.2 ESTABILIZAR COLUMNA CON FASE MOVIL
51
2.5 CÁLCULOS
52
2.5.1 CÁLCULO DEL PORCENTAJE DE REDUCCIÓN
52
2.5.2 DESVIACIÓN ESTANDAR
52
CAPITULO III RESULTADOS Y ANÁLISIS DE RESULTADOS 3.1 DISCUSION RESULTADOS DE PRUEBAS FOTOQUÍMICAS PRELIMINARES 59 3.2 CONDICIONES DEL EQUIPO Y CROMATOGRAMA DE
3.3
FASE MOVIL
62
CROMATOGRAMAS Y CALCULOS DE DOXORRUBICINA;
65
CROMATOGRAMAS, CÁLCULOS Y ANÁLISIS DE 25 EXTRACTOS CON ADN 3.4
CROMATOGRAMAS DE Ocimun basilicum
71
3.5
CALCULO DE PORCENTAJE DE REDUCCIÓN Y ANÁLISIS
72
8
3.6 RESULTADOS OBTENIDOS DE LA INTERACCIÓN DE LOS EXTRACTOS Y LA MOLÉCULA DE ADN
128
CAPITULO IV CONCLUSIONES
130
CAPITULO V RECOMENDACIONES
133
BIBLIOGRAFÍA
136
ANEXOS
9
INDICE DE CUADROS CUADRO 1 Usos de 25 especies vegetales utilizadas en el área materno-infantil
19
CUADRO 2 Parte de la planta recolectada y lugar de recolección
37
CUADRO 3 Resultados de análisis fitoquímicos de alcaloides y sesquiterpenlactonas
54
CUADRO 4 Resultados de análisis fitoquímicos de saponinas con antraquinonas y flavonoides 55
CUADRO 5 Resultados de análisis fitoquímicos de taninos
56
CUADRO 6 Resultados de análisis fitoquímicos de glicosidos cardiotónicos
57
CUADRO 7 Cuadro resumen de componentes químicos de las especies estudiadas
58
CUADRO 8 Resultados de análisis del bioensayo interacción con ADN
127
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INDICE DE ABREVIATURAS ADN
Ácido Dexorribonucleico
ARN
Ácido Ribonucleico
HPLC
Cromatografía Líquida de Alta Resolución
cm
Centímetro
Kg
Kilogramo
M
Metro
mg
Miligramo
min.
Minuto
mL
Mililitro
mm
milímetro
msnm
Metros sobre el nivel del mar
nm
Nanómetro
ppm
Partes por millón
Sln
Solución
µ
Micron
µg
Microgramo
µL
microlitro
KB
Carcinoma epidermoide de la nasofaringe
Walker 256
Carcinoma de la rata
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AGRADECIMIENTOS
A DIOS TODO PODEROSO Por habernos iluminado y fortalecido en todo momento durante el desarrollo de nuestra carrera
A LA UNIVERSIDAD DE EL SALVADOR, en especial a la FACULTAD DE QUIMICA Y FARMACIA, por habernos forjado como nuevos profesionales.
A NUESTRAS ASESORAS, Lic. RHINA ANTONIETA TOLEDO, Lic. ROCIO RUANO DE SANDOVAL, Lic. MARIA C. ODETTE RAUDA ACEVEDO por la asesoría de esta investigación.
A LOS MIEMBROS DEL JURADO EXAMINADOR: Lic. IRMA ISABEL VAQUERANO DE POSADA, Lic. MARTA ALICIA TORRES DE PORTILLO, M D E S EDUARDO CORTEZ GARCIA, por su valioso colaboración en la elaboración de este trabajo.
A Lic. MILAGRO, Lic. ALARCÓN, Lic. RENE por su apoyo.
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AGRADECIMIENTO
A la Asociación de Promotores Comunales Salvadoreños (APROCSAL), por la colaboración al participar en el financiamiento y mostrar su interés en el desarrollo este tipo de proyecto, el cual será de beneficio para la población, ya que este tipo de trabajos nos brinda una información científica para ser anexados a las monografías de cada una de las plantas en estudio. Por lo que manifestamos nuestros más sinceros agradecimientos.
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AGRADECIMIENTO
Un agradecimiento muy especial a Laboratorios López, por permitirnos usar sus instalaciones y equipo para poder realizar el presente trabajo, así como la colaboración y asesoramiento de la Lic. Vilma de Aparicio, a nuestro compañero Roberto, a todo el personal del departamento de Desarrollo Analítico y Estabilidad así como también al Dr. Alvaro Pacheco por mostrar interés y solidaridad en realizar este tipo de investigaciones.
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DEDICATORIA
A ti Diosito por velar y permitirme culminar una de mis metas, mil gracias por hacer realidad nuestro sueño.
A mis padres Reyna Barahona y José Luis Cruz, por su sacrificio, comprensión, apoyo y amor incondicional...Gracias.
A mi hermana Leticia, por ser mi amiga y animarme en seguir adelante.
A mi abuelita mamá Menche por estar siempre conmigo y aconsejarme.
A mis primos Edith y Wence, por incentivarme en el transcurso de mi carrera y estar siempre conmigo.
A mis compañeros de trabajo por presentar entusiasmo al realizar y culminar con éxito el presente proyecto, en especial a mí amigo Felix .
A nuestros asesores, especialmente a la Lic. Rhina Toledo por toda la ayuda que nos brindó en el transcurso de la elaboración del proyecto.
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A mis amigas y compañeras de estudio: Guadalupe, Ivania, Ivette, Aura, Alba, Sandra y Luis, por estar siempre conmigo.
A mis amigos y compañeros de trabajo: Lic. Anabella de Gonzales y Ramón, por sus muestras de afecto y alentarme en cada momento. Xenia Elizabeth Cruz Barahona..
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DEDICATORIA
A mi Dios y Señor por haberme dado fortaleza en los momentos más difíciles de mi carrera y por permitirme culminar una de mis metas. ¡ Gracias Dios !
A mi Virgen María Santísima por haber intercedido para que todo me saliera bien.
A mi madre Margarita por haberme dado todo su apoyo, por sus consejos y ayuda que me brindo durante todo este tiempo ... ¡ Gracias Mamá ¡
A mi hermana Paula que me brindó su ayuda moral y económica, y que siempre estuvo dispuesta a colaborar conmigo.
A mis hermanos Carlos y Lorena que siempre me apoyaron y estuvieron en las buenas y las malas, ya que siempre me dieron su mano.
A mis compañeros de trabajo por haberme aceptado trabajar con ellos y mostrar hacia mí respeto y tolerancia para poder llevar a cabo este trabajo de investigación.
A nuestros asesores, especialmente a la Lic. Rina Toledo por toda la ayuda que nos brindaron en el desarrollo del trabajo de graduación. Moisés Alejandro Saenz Zelada.
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DEDICATORIA
A Dios por darrne entendimiento y sabiduría en todo momento de mi carrrera, hasta el logro de mi meta.
A mis padres Teodora y Francisco (Q.D.D.G) por su amor, comprensión, sacrificio y apoyo durante mi carrera universitaria, sin lo cual no hubiera podido llegar al final.
A mi hermana Doris por su apoyo, comprensión para poder lograr mi meta.
A mi sobrino Francisco, por ser alguien especial.
A mi hermano Benjamín (Q.D.D.G) por haberme ayudado y estar conmigo en todo momento.
A mi tíos Zeneyda y Quillermo, por su apoyo.
A mis compañeros de trabajo Zaenz y en especial a mi querida compañera Xenia, por terminar con éxito este trabajo de investigación.
A mis amigos Carlos (Q.D.D.G), Pati (Q.D.D.G), Ana (Q.D.D.G), Zeneyda, Monica, Mario Ernesto, Edgardo, Henry, Ronal, Walter, Yanci, Oscar, Maritza, Yesica, Carla, Agustín.
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A mis compañeros de estudio, Guadalupe, Luis, Ena, Luz, Igmar, Aura, Ivania, Angelita, Nely, Nataly, Walter.
A las familias Juárez, Amaya, Iraheta, Cabrera por haberme apoyado. A nuestros asesores, especialmente a la Lic. Rina Toledo por toda la ayuda que nos brindaron en el desarrollo del trabajo de graduación. José Félix Bernal .
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RESUMEN En la presente investigación, se determinó la bioactividad de 25 especies vegetales, mediante interacción con ADN por Cromatografía Líquida de Alta Resolución. Dichas plantas fueron seleccionadas por su uso frecuente y debido a casos de intoxicación según investigación bibliográfica, entrevistas con personas que comercian y/o cultivan este tipo de plantas, además de estudios previos realizados en la Facultad de Química y Farmacia de la Universidad de El Salvador. Se recurrió a diferentes fuentes de información con el objetivo de obtener datos relacionados con el tema, tales como: libros, revistas periódicos, entrevistas e internet. Los cuales sirvieron para la recolección del material vegetal en las diferentes zonas del país, tomando en cuenta la identificación botánica de las respectivas plantas, para luego obtener los extractos etanólicos que sirvieron de base para el estudio de los mismos. Se utilizó el método de Cromatografía Líquida de Alta Resolución haciendo uso de un cromatógrafo (Perkin – Elmer LC – 95 UV/Visible) con alta sensibilidad; dicha interacción se dió entre metabolitos activos presentes en los extractos con la molécula de ADN, obteniéndose el resultado de las especies Ocimun basilicum (obtuvo el mayor valor de porcentaje de reducción el cual fué de 27.1583 ± 4.61), Chenopodium ambrosioides, Bursera simarouba, Justicia carthaginensis, Lycopersicum esculentum, Rauwolfia tetraphyla, Ricinus communis, Eryngium foetidum,
Jatropha curcas, Lippia alba, Achillea millefolium, Yucca elephantipes, Hymenae
courbaril, Murraya paniculata, Sanseveria quineensis, Tridax procumbens, Guazuma ulmifolia,
ii
20
Solanum nigrum, en estudio mostraron una actividad menor del 30% de reducción del pico de cromatograma y Cassia grandis, Catharanthus roseus, Syzygium jambos, Paspalum notalum, Pluchea odorata, Púnica granatum, Zingiber officinale, no tuvieron efecto sobre la molécula de ADN según el método de Pezzuto. El hecho que no dieron bioactividad no quiere decir que se puede consumir libremente, se debe considerar recomendar una cantidad.
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INTRODUCCIÓN En el país el uso casero de las plantas para el tratamiento de enfermedades ha estado presente durante toda la historia y forma la base de la atención de la salud. Sin embargo poco o nada se ha hecho por estudiar si las propiedades que se les atribuyen tienen realmente base científica o sólo le son dadas
por la tradición, así como, los efectos secundarios o adversos que pudieran
presentar al ser usadas. Las plantas sometidas al estudio son utilizadas por la población para diferentes patologías, por lo cual los resultados obtenidos pueden respaldar los usos y conocimientos que forman parte de la identidad cultural, y contribuir de esta manera a que no desaparezcan. Por lo que el trabajo aquí desarrollado, representa un esfuerzo para ofrecer de forma sencilla los resultados obtenidos de la investigación de citotoxicidad a través del bioensayo de interacción con ADN. Algunas especies vegetales presentan toxicidad o citotoxicidad la cual debe ser demostrada, ya que popularmente se habla de las propiedades que la planta posee, pero no los efectos secundarios que ésta produce, por lo que todo trabajo incluye una etapa de investigación en la que se realizan ensayos fitoquímicos, así como bioensayos, que van desde los más simple a los más complejos, debido a que cada vez se hace necesario justificar científicamente la utilización de ellas.
iv22
La importancia de esta investigación radica en proporcionar información para investigaciones posteriores en posibles tratamientos contra el cáncer, además de su beneficio en la salud de los seres humanos. Estudios como estos son motivados por el auge que ha tenido la medicina popular a lo largo de la historia, y conocer a través de éstos el riesgo-beneficio de las mismas, los cuales dan a conocer si la planta es potencialmente tóxica o por el contrario representa un beneficio para la salud de la población. Esta investigación forma parte de un macroproyecto de búsqueda de bioactividad en plantas medicinales bajo la colaboración de la Asociación de Promotores Comunales Salvadoreños (APROCSAL), el Programa de Ciencia y Tecnología para el Desarrollo (CYTED) y la Facultad de Química y Farmacia de la Universidad de El Salvador a través de la Sección de Investigación Aplicada y Tesis Profesionales.
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CAPITULO I MARCO TEORICO
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1. MARCO TEÓRICO Industrialmente el reino vegetal posee muchas especies de plantas que contienen sustancias de valor medicinal que están aún por descubrir y gran número de plantas son ensayadas constantemente respecto a su posible valor farmacológico. Como resultado de los modernos procedimientos de aislamiento y de experimentación farmacológica, nuevas drogas vegetales encuentran su camino hacia la medicina en estado de sustancias purificadas más que en forma de antiguas preparaciones galénicas. En la actualidad la quimiotaxonomía vegetal, los estudios genéticos referentes a metabolitos secundarios, el cultivo artificial de tejidos vegetales, inducción de síntesis anormales en plantas y búsqueda de actividades biológicas son de las áreas de mayor importancia en la investigación de las plantas medicinales.
1.2 PRINCIPIOS ACTIVOS FORMADOS EN LAS PLANTAS La variedad de componentes o principios activos que posee la planta está comprendida dentro de los llamados Metabolitos, éstos son formados a partir de la fotosíntesis. Pueden clasificarse en Primarios y Secundarios. 1.3 METABOLITOS PRIMARIOS Están universalmente distribuidos y participan en la actividad celular de plantas, son necesarios para su reproducción y crecimiento ya que sin los Metabolitos la planta no podría desempeñar sus funciones.
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Los Metabolitos Primarios tales como: productos de cadena respiratoria, el ciclo de los ácidos tricarboxílicos, la formación de ácidos grasos y de aminoácidos esenciales por sí mismos son de escasa importancia en la fitoterapia. En ciertos casos sin embargo su acumulación y la forma de acumulación puede ser de interés, así todas las plantas verdes que se exponen a la luz producen almidón como producto de las primeras reacciones de la fotosíntesis y según la forma que tenga en cada planta será de valor taxonómico.
1.4 METABOLITOS SECUNDARIOS. Son aquellos metabolitos que no están necesariamente relacionados con el metabolismo esencial de la célula, su producción depende de los ciclos metabólicos fundamentales de los tejidos vivos a partir de la biogénesis o rutas biogenéticas: ácido shikímico, acetogeninas y ácido mevalónico, las cuales originan cada una de ellas a los diferentes metabolitos secundarios. Como características de estos metabolitos secundarios tenemos: ϑ
La planta no los necesita para su supervivencia
ϑ
Cada planta tiene sus propios metabolitos secundarios específicos razón por la cual también cada planta tiene usos medicinales diferentes.
ϑ
Poseen actividad biológica, fisiológica o farmacológica en el hombre y animales.
ϑ
Son de ayuda al taxónomo o farmacognosta para su clasificación y quimiotaxonomía.
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ϑ
Los metabolitos secundarios se reservan en diferentes órganos de la planta como ejemplos de estos tenemos: Alcaloides, taninos, glicósidos, flavonoides, sesquiterpenlactonas, etc. (5,6,12)
1.4.1 ALCALOIDES Estos constituyen un grupo muy heterogéneo de bases vegetales nitrogenados con acción fisiológica más o menos intenso sobre los animales, con escasas excepciones. Hay unos cuantos alcaloides de nitrógeno amídico que son neutros, como la colchicina, ricinina y otras, las bases púricas y pirimidínicas están excluidas del grupo de alcaloides por carecer de acción fisiológica notable y por sus relaciones bioquímicas con los ácidos nucleicos. Aunque se han encontrado unos 50 alcaloides en órganos animales, sólo 12 de éstos no se han localizado en vegetales y por definición se acostumbra excluirlos del grupo. Los alcaloides aparecen en muy diversas familias de plantas, unos 256 en los hongos, algas y otros vegetales inferiores. La mayoría de los alcaloides son sólidos incoloros, aunque algunos como la coniina y la nicotina son líquidos, otros son de color amarillo como la berberina o rojos como la queliretrina, entre las reacciones que identifican a los alcaloides tenemos: Dragendorff, Mayer, Wagner. Los derivados del opio: codeína, papaverina, morfina poseen las actividades farmacológicas siguientes:
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-Actúan sobre el sistema nervioso central produciendo analgesia , cambio en el estado de animo. -Contraen las pupilas. -Disminuyen la actividad secretoria y motilidad del tracto gastrointestinal. (5,6)
1.4.2 GLICÓSIDOS CARDIOTÓNICOS Los heterósidos o glicósidos cardiotónicos constituyen un grupo de sustancias que se caracterizan por su acción sobre el músculo cardíaco, aumentando su tono, excitabilidad y contractibilidad. Son sustancias amargas, derivadas de los esteroides que actúan sobre el corazón. La porción del azúcar denominada glicón o cadena glicosídica contiene de 3 a 5 moléculas de monosacáridos, por lo general, metilpentosas y desoxiazucares muy especiales. La glicona esteroidal, aunque tóxica, no afecta el corazón, en ella hay varios hidroxilos, uno de ellos en el carbono 14 y otro en carbono 3, usualmente en el OH del carbono 3 siempre va unida la porción de azúcar. Reacciones coloridas: Las pruebas que señalan la presencia de una aglicona esteroidal se verifica con Lieberman-Buchard.(5)
1.4.3 GLICÓSIDOS SAPONÍNICOS El nombre de saponina proviene del latín sapon: jabón y se refiere a un grupo de glucósidos que se disuelven en agua y disminuyen la tensión superficial de ésta, por lo tanto, al sacudir sus
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soluciones, se forma una espuma abundante y relativamente estable. Por hidrólisis de la saponina se obtienen carbohidratos y una aglicona llamada genéricamente sapogenina. Las saponinas son sustancias muy polares, es posible extraerlas en caliente o en frío, con agua o alcoholes de bajo peso molecular, los materiales lipoides presentes en estos extractos se separan con benceno. Al concentrar la solución alcohólica se separan las saponinas y después se cristalizan en mezclas de alcohol-agua; para obtener sapogeninas se pueden hidrolizar las saponinas con sus enzimas naturales, o con enzimas de origen microbiológico. Las saponinas y sapogeninas saturadas o con varios hidroxilos dan coloraciones con varios reactivos ácidos, de los empleados con los esteroles como el de Lieberman Buchard y Salkowski.( 5 ) Poseen actividad antiinflamatorias, antimicrobianas, y por poseer el anillo esteroidal pueden ser utilizadas en la obtención de cortisona y otros esteroides.
1.4.4 FLAVONOIDES Los flavonoides son pigmentos vegetales que poseen un esqueleto carbonado C6-C3-C6. Se conocen unos 200 flavonoides naturales; se encuentran extensamente distribuidos entre las plantas, tanto libres como glicósidos; estos últimos contribuyen a darle color a las flores, frutos y hojas. Los flavonoides son sintetizados por numerosos grupos de plantas y con excepción de algunas flavonas localizadas en las alas de mariposa, probablemente por ingestión se puede decir que no se les encuentran en animales.
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Los diferentes tipos de flavonoides se pueden identificar mediante reacciones coloridas y propiedades de solubilidad, cuando no hay interferencia de pigmentos no flavonoides, el material vegetal se puede ensayar directamente, si los pétalos blancos de una flor se ponen amarillos en presencia de vapores de amoniaco, deben contener flavonas y/o flavonoles. Los extractos acuosos de pigmentos también muestran variaciones en color cuando se les adiciona un álcali, las flavonas y los flavonoles se ponen amarillos, las chalconas a púrpura rojizo y las antocianinas a azul. Los extractos alcohólicos incoloros o ligeramente amarillos de un vegetal, se tratan con un trocito de magnesio y unas pocas gotas de ácido clorhídrico concentrado, observándose de inmediato un cambio de color dependiendo del flavonoide presente.( 5 ) Entre sus actividades farmacológicas tenemos su utilización en la fragilidad capilar.
1.4.5 SESQUITERPENLACTONAS Poseen un esqueleto fundamental con 15 átomos de carbono que teóricamente deriva de la unión de tres fragmentos de isopreno (2-metilbutadieno-1,3), cabeza, cola y algunos productos de transposición, parte del esqueleto es un anillo de metilbutenólido. Las sesquiterpenlactonas se han encontrado en diferentes órganos de las plantas y especialmente en partes aéreas de las compuestas, son sustancias amargas, se considera que su actividad citotóxica esta relacionada con el grupo exometilenbutenólido y también que este grupo modifica el crecimiento de vegetales. Entre los métodos de extracción tenemos; éter de petróleo-etanol,
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benceno, metanol y cloruro de metileno, presentando reacciones de coloración para su identificación como son: Reactivo de Baljet, Hidroximatos Férricos, Reactivo de Legal .( 5 ) Poseen actividad antimicrobiana, digestiva y antitumoral.
1.4.6 ANTRAQUINONAS Estos se conocían como un grupo natural de drogas purgantes, algunos colorantes vegetales y animales, como la rubia y la cochinilla, tuvieron gran importancia económica antes de la introducción de los colorantes sintéticos. Los derivados antraquinónicos presentes en las drogas purgantes pueden ser dihidroxifenoles, como el crisofanol; trihidroxifenoles, como la emodina; o tetrahidroxifenoles, como el ácido carmínico. Los derivados antraquinónicos suelen ser de color rojo-anaranjado, que en ocasiones puede observarse in situ, (como ocurre en los radios medulares del ruibarbo y cáscara sagrada). Por lo general son solubles en agua y alcohol diluido. El ensayo de Borntrager suele emplearse para su detección.( 6 ) Su actividad farmacológicas más conocida es la de laxantes.
1.4.7 TANINOS Los taninos están ampliamente distribuidos en el reino vegetal, encontrándose, por lo general, en mayor cantidad en células muertas o enfermas. Ejercen un efecto inhibidor sobre muchas
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enzimas, debido a la precipitación de las proteínas, contribuyendo, por lo tanto, a la función protectora de la corteza y leño. El termino “Tanino” se empleó por primera vez en 1796 para denominar ciertas sustancias presentes en extractos vegetales capaces de combinarse con proteínas de la piel animal, evitando su putrefacción y convirtiéndola en cuero. De acuerdo con esta definición, un tanino es una sustancia detectable cualitativamente mediante un ensayo de curtido (ensayo “goldbeater's skin”) y se determina cualitativamente por su absorción sobre un polvo de piel estándar. Aunque queda mucho por hacer para llegar al conocimiento completo de la química de los taninos, se suele establecer dos grandes grupos: como los taninos hidrolizables y los taninos condensados (proantocianidinas). Taninos hidrolizables: Están formados por varias moléculas de ácidos fenólicos como el gálico y el elágico, que se unen por un enlace éster a un núcleo central de glucosa. Al igual que el ácido gálico sus soluciones toman color azul con sales de hierro, estos taninos se denominaron primeramente pirogálicos debido a que por destilación da el ácido gálico. Pueden establecerse dos tipos fundamentales de taninos hidrolizables, derivados, respectivamente del ácido gálico y del elágico. Estos grupos se denominaron galitaninos y elagitaninos. Taninos condensados: éstos comprenden todos los restantes taninos. Sus moléculas son más resistentes a ruptura que las de los taninos hidrolizables y parece ser intermediarios en su biosíntesis, las catequinas y los flavan-3, 4-dioles. Están por tanto relacionados con los pigmentos flavonoides con estructura polímera flavan-3-ol. Mediante tratamiento con ácidos o
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enzimas pueden ser descompuestos en productos rojos e insolubles, llamados flabáfenos. Estos proporcionan su color rojo característico a muchas drogas, como la corteza de quina roja, que contiene estos flabataninos y sus productos de descomposición. Pseudotaninos: estos son compuestos de menor peso molecular que los taninos verdaderos y no dan positivo el ensayo de la piel. ( 6 ) Actúan como astringentes, antisépticos y cicatrizantes.
Cada planta posee sus propios metabolitos secundarios específicos a los cuales se debe su actividad terapéutica actuando sinérgicamente. Para poder determinar estos principios activos se efectúa el análisis fitoquímico preliminar, a los extractos de la planta (cuadros del N° 3 al N° 7) . Los principios activos antes mencionados pueden darle a la planta actividades biológicas o bioactividad diversas como actividad antimicrobiana, antiinflamatoria, citotóxica, repelente insecticida, anticancerígena, etc., para cuya comprobación es necesario efectuar los llamados bioensayos.
1.5 BIOENSAYO Bioensayo se define como todos aquellos procedimientos de prueba realizados en unidades moleculares o celulares sencillas y en organismos más complejos, con el objeto de reconocer e
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investigar la existencia de nuevas sustancias de origen natural capaces de ejercer efectos biológicos de tipo citotóxico, antitumoral o anticancerígeno principalmente. Los ensayos son de gran utilidad en el diseño de procedimientos de prueba en investigaciones de plantas medicinales, estos procedimientos de prueba llamados por algunos autores como “programas de screening” pueden ser desarrollados en varias etapas y constan de todos o algunos de los siguientes tipos de bioensayo: Prescreen: Es un ensayo aplicado a un largo número de muestras iniciales para determinar si tienen o no bioactividad del tipo deseado. Deben ser confiables, de bajo costo y dar rápidas respuestas; éstos no necesitan ser cuantificados. Básicamente el papel de un prescreen es el de destacar aquellas sustancias inertes y proveer de una información enriquecida para un ensayo de screen. Screen: Es un ensayo utilizado para seleccionar materiales para estudios individuales detallados (pruebas secundarias). Screening Secundarios (Pruebas Secundarias): Son pruebas de evaluación detalladas de compuestos guiados mediante los resultados de la aplicación de modelos múltiples de prueba, en los que se seleccionan candidatos para su desarrollo. ( 23 ) Como se ha mencionado anteriormente, los autores recomiendan que antes de iniciar una investigación de este tipo debe diseñarse un programa de screen.
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Algunos bioensayos son de alto costo y comprenden complejos sistemas de pruebas a corto y largo plazo; los bioensayos se han clasificado en ensayos in vitro e in vivo, atendiendo a qué tipo de unidades celulares se empleen. ( 24 ) Actualmente se ha puesto mucho más énfasis en los ensayos in vitro dado el ahorro de tiempo, recursos materiales y factores relacionados con las campañas protectoras de animales.
1.6 ENSAYOS IN VITRO Este tipo de ensayos se clasifican en dos grupos: a) Ensayos celulares: Utiliza cualquier blanco que inhiba el crecimiento celular b) Ensayos moleculares: Blanco sub-celular simple El blanco de experimentación para los ensayos moleculares son unidades sub-celulares simples como el ADN, ARN, entre otras; en tanto que para los ensayos celulares dicho blanco será cualquiera de las unidades que forman parte de la célula o línea celular que se este ensayando (mitocondrias, membrana celular, núcleo, etc.). Los ensayos in vitro, en el área del cáncer se definen como aquellas pruebas en las que los blancos de experimentación lo constituyen cultivos celulares y/o unidades moleculares. Los ensayos moleculares poseen la ventaja de ser altamente específicos, ya que al evaluar a través de un mecanismo particular, cuyo blanco de experimentación sea crítico o de importancia, puede utilizarse como tal para el descubrimiento de drogas; posiblemente se encontrará, un número de
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compuestos con esa actividad específica y otros que sencillamente no podrán siquiera ser detectados por el mecanismo evaluado. Actualmente son pocos los procedimientos existentes para el tipo de ensayos moleculares; sin embargo, por los resultados que se han logrado a través de su aplicación son calificados como altamente específicos; en cambio para los ensayos celulares hay un gran número de procedimientos, pero la mayoría son de poco interés precisamente porque sus resultados son poco específicos e implican una investigación más exhaustiva, para llegar a la conclusión de la misma (23). Otra de las ventajas de los ensayos moleculares es que su costo es relativamente bajo con relación al de los ensayos celulares. Esta investigación es un bioensayo in vitro, bajo el concepto de ensayos moleculares en donde los principios activos contenidos en los extractos son capaces de interactuar con la molécula de ADN.
1.7 DETERMINACION DE BIOACTIVIDAD EN EXTRACTOS DE PLANTAS. Actualmente se desarrolla en la Facultad de Química y Farmacia cuatro proyectos para la búsqueda de bioactividad de plantas medicinales utilizadas por la población salvadoreña. Estos proyectos cuentan con la colaboración del programa de Ciencia y Tecnología para el Desarrollo (CYTED), mediante el sub programa X de Química Fina Farmacéutica que reúne 21 países de Iberoamérica, y cuya sede es España.
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Como objetivos generales del programa está la búsqueda de bioactividad en plantas de cada país mediante la utilización de los ensayos simples de: Artemia salina, interacción con la molécula ADN, actividad antimicrobiana y actividad larvicida contra Aedes aegypti. Además de CYTED se cuenta con el financiamiento de la Asociación de Promotores Comunales Salvadoreños (APROCSAL). Uno de los cuatro proyectos antes mencionados corresponde a la “Búsqueda de Bioactividad mediante Bioensayo simple en 25 Extractos de Especies Vegetales ”. Los cuatro bioensayos anteriormente mencionados, en el macroproyecto, se le realizaron a los extractos de las 25 especies sometidas a estudio. Las 25 especies vegetales han sido diagnosticadas de utilidad en el área materno infantil mediante proyectos comunitarios realizados por APROCSAL, además de entrevistas con personas que comercian y/o cultivan estas plantas, revisiones bibliográficas, y datos de la Sección de Investigación Aplicada y Tesis Profesional de la Facultad de Química y Farmacia. Estas plantas son utilizadas por mujeres en estado de embarazo, post parto, lactancia y niños pequeños, para diferentes patologías, muchas de estas informaciones son populares y otras se encuentran científicamente comprobadas. Los usos sugeridos para cada especie se encuentran detalladas en el siguiente cuadro:
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CUADRO N° 1 25 ESPECIES VEGETALES UTILIZADAS EN EL ÁREA MATERNO-INFANTIL Especie vegetal Usos sugeridos
Ocimum basilicum Albahaca
Dolor de oído: Se aplica una masita con hoja machacada, en el oído de los bebés y niños menores de 11 años, debido cualidades antiinflamatoria y analgésica. ( 7 ) Vómitos: La hoja en infusión, se da a tomar a niños y mujeres embarazadas por vía oral, se ha comprobado que la hoja y flor tiene cualidades antiespasmódicas sobre el ileon aislado de cobayo. ( 8 ) Dos principios carcinogénicos han sido reportados en muestras de aceite esencial: safrol y eugenol.
Chenopodium ambrosioides
Epazote
Ricinos communis Higüerillo
Achillea milefolium Alhucema
Por lo que es importante evitar los empleos de estas preparaciones por largo tiempo y en todo tipo de paciente, en especial no utilizar en niños y mujeres embarazadas debido a sus efectos adversos. La decocción de hoja y en general de las partes aéreas se utiliza por el alto grado de parasitismo infantil en la región es usado contra parásitos intestinales; lombrices, especialmente áscaris, oxiuros y antraquilostoma. La planta contiene un compuesto llamado mirceno, el cual no es recomendado en mujeres que desean concebir por ser un anticonceptivo. Toxicidad: no usar en niños menores de 2 años y además en mujeres embarazadas por ser abortiva. ( 10 ) El aceite de semilla de higüerillo contiene recinina es una proteina toxica, y se le considera uno de los tóxicos mas potentes. Se han dado intoxicaciones en niños por la ingesta de semillas por lo atractivo de ella, en mujeres embarazadas por usarlo en afecciones gastrointestinales (diarrea, colera). (4) La infusión de hojas, flores y frutos se usa por vía oral en niños para tratar flatulencia y es utilizado en forma de cocimiento después del parto para limpiar el organismo. (4) Ver anexo N° 1
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25 ESPECIES VEGETALES UTILIZADAS EN EL ÁREA MATERNO-INFANTIL
Especie vegetal Pluchea odorata Siguapate
Cassia grandis Carao
Rauwolfia tetraphyla Amatillo
Jatropha curcas Tempate
Yuca elephantipes Izote
Usos sugeridos Sihuapate en náhuatl significa “Enfermedades de la mujer” En estudios farmacológicos experimentales se encontró actividad antiinflamatoria, actividad analgésica de ahí su uso para dolor menstrual, dolor de vientre; para apurar el parto y disminuir dolores, debido a que tiene efecto sobre la fibra uterina. Además se usa como Antihelmíntico, cólico estomacal en niños. (4) La decocción, fruto se usa por vía oral para tratar anemia. La pulpa del fruto se dice que es abortiva. El fruto tambien tiene actividad antifúngica y catártica, lo cual se debe, en parte a su contenido de aloe-emodina, la cual es una antraquinona acídica, con actividad contra líneas celulares tumorales. (4) Ver anexo N° 1 La infusión de hojas se usa para tratar disentería y malaria. El fruto es tóxico en niños. Estudios antibacterianos demuestran que los extractos acuoso y etanólico de la planta completa son inactivos contra la Escherichia coli y Staphyloccus aureus(4). El extracto etanólico de la planta produce ligero efecto sedante en peces (40 ppm ) y toxicidad (500 ppm). (4) Las hojas y corteza se utiliza en niños por sus propiedades catárticas, desinflamantes, odontálgicas. A las hojas se les atribuye propiedad abortiva. Existen datos en el Hospital Benjamín Bloom sobre diferentes niños intoxicados por ingestión de las semillas. Estudios de la actividad antibacteriana in vitro demuestran que la maceración hidroalcohólica de las hojas no tiene actividad contra cinco enterobacterias causales de la diarrea. Estudios farmacológicos del extracto clorofórmico y etanólico de las hojas y ramas han demostrado actividad contra leucemia linfocítica en dosis de 12.5 mg/kg; el extracto etanólico potencializa la acción de los barbitúricos y muestra actividad diurética. (10) Las partes tiernas son utilizadas en cocimiento para la tos. Los extractos acuosos y etanólicos de hojas, corteza y raíz no tuvieron actividad inhibitoria para Escherichia coli y S. aureus. Los extractos acuosos y etanólicos de hojas y raíz en concentraciones de 10 – 40 y 500 ppm., fueron extremadamente tóxicos para los peces. (15)
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25 ESPECIES VEGETALES UTILIZADAS EN EL ÁREA MATERNO-INFANTIL
Especie vegetal Hymeneae courbaril Copinol Guazuma ulmifola Caulote
Punica granatum Granado
Lippia alba Salvia Santa
Usos sugeridos La ingestión de grandes cantidades de las diferentes partes de la planta puede provocar nauseas vómitos y diarrea. Un informe preliminar indica una actividad significativa contra el virus del Herpes, pero no la de la polio. (10) Ver anexo N° 1 El cocimiento del fruto es utilizado como antidiarreico para fiebres y en diarreas. El extracto hidroetanólico (1:1) de la hoja inhibe la síntesis de prostaglandinas in vitro, en concentraciones de 750 µg/mL. Trabajos TRAMIL, el extracto etanólico de hoja posee una actividad antimicrobiana, in vitro, contra Shigella disentería, Staphylococcus aureus y Bacilus subtilis. (4) Ver anexo N° 1 La decocción de la corteza del tronco o raíz se usan para expulsar tenia. Estudios clínicos demuestran que el tanato de pelletierina es mas efectivo in vitro, ya que es menos soluble y menos absorbible en el intestino del huésped, por lo que se mantiene una concentración más en el lumen intestinal, donde ocurre la muerte de los parásitos. Las dosis toxicas producen rápidamente midriasis, ceguera parcial, fuerte dolor de cabeza, vómito, diarrea y convulsiones. Topicamente se usa en lavados vaginales para leucorrea. (4) Usado en la Hidropesia, tos crónica. Estudios antibacterianos demuestran que la tintura de hojas es activa contra Staphylococcus aureus, Staphylococcus pneumoniae, S. pyogenes, S. typhi. Estudios farmacológicos demuestran que la infusión acuosa de hojas no presenta actividad sedante o hipnótica en el ratón, el extracto etanólico de hojas es inactivo contra células CA-9KB en dosis de 20 µg/mL, pero presenta actividad hipotensora en perros en dosis de 50 mg/kg. (7)
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25 ESPECIES VEGETALES UTILIZADAS EN EL ÁREA MATERNO-INFANTIL
Especie vegetal Bursera simarouba Jiote
Solanum nigrun Hierba mora
Tridax procumbens Hierba del toro
Usos sugeridos El cocimiento y jugos de las hojas y corteza son utilizados para afecciones de la piel, jiote y hongos en personas y animales. El extracto etanólico al 95 % de las partes aéreas presentó actividad estimulante del músculo liso (in vitro, duodeno de conejo) y actividades espasmolítica y vasodilatadora in vitro. Las hojas y tallo poseen actividad relajadora de músculos lisos, actividad espasmolítica y vasodilatadora. Un triterpeno presente en el árbol ha demostrado alguna actividad antitumoral en carcinoma de Walker 256 en ratas. El extracto acuoso se le realizo toxicidad aguda en ratón encontrándose para el mismo una dosis tóxica mínima de 0.5 mL/animal. (10) Se acostumbra comer la hoja en caldo para la convalecencia y recuperación de diversas enfermedades en niños como tambien a mujeres embarazadas. Por su contenido en hierro es sustituto de complementos vitamínicos que llevan hierro ya que este da efectos de estreñimiento. Estudios antibacterianos demuestran que la decocción de la hojas tiene actividad antibiótica contra Pseudomona aeruginosa, Staphylococcus aureus y Staphylococcus pyogenes, además tiene actividad antifúngica, insecticida y antiiflamatoria. Estudios de citotoxicidad demuestran que el extracto presenta actividad hemolítica aun en altas diluciones(1: 1,000). El análisis proximal indica que contiene riboflavina, tiamina, ácido ascórbico, ácido málico y sales minerales. (4) Ver anexo N° 1 La planta fresca o seca, en infusión o decocción es usada en niños por vía oral para tratar alergia, anemia, afecciones gastrointestinales (diarreas, disentería, dolor de estomago, estreñimiento, flatulencia, parásitos intestinales) y respiratorias. Estudios antibacterianos demuestran que la tintura de hojas es inactiva contra enterobacterias (Staphylococcus coli, Salmonella typhy, Staphylococcus dysenteriae) y bacterias gram-positivo (Staphylococcus aureus, Streptococcus pneumoniae). El extracto etanólico ha demostrado actividad antihepatotóxica en ratas albinas utilizando modelos crónicos y agudos de daño hepático. (4) Ver anexo N° 1
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25 ESPECIES VEGETALES UTILIZADAS EN EL ÁREA MATERNO-INFANTIL
Especie vegetal Zingiber officinale Jengibre
Usos sugeridos Es utilizada comúnmente en niños y adultos para las vías respiratorias, tos gripe, ronquera ya que el aceite esencial contenido en el rizoma le da la actividad farmacológica. Además las mujeres embarazadas lo utilizan para vómitos y nauseas, como es sabido no es aconsejable utilizar ningún medicamento El extracto alcohólico del rizoma es activo in vitro a la dosis de 500µg/disco, frente a Bacillus subtilis, Escherichia coli, Salmonella typhi, Staphylococcus aureus. La actividad analgésica fue comprobada en ratas, administrándoles por vía oral en dosis de 1000 mg/kg produciendo una actividad analgésica del 10 % comparable con el ácido acetilsalicílico (ASA) administrado a la misma dosis. (7)
Syzygium jambos Manzano Rosa
Se utiliza las hojas para la tos, tónicos, expectorantes. El fruto se come para estimular la digestión, ya que tiene propiedades carminativas y ligeramente catárticas. ( 2 ) El extracto etanólico de la corteza y las hojas secas demuestra efecto embriotóxico e inhibidor de la ovulación.(16) Los extractos etanólicos de corteza y raíz, tuvieron actividad contra Escherichia coli. Los extractos acuosos y etanólicos de hojas, corteza y raíz fueron muy tóxicos para los peces. (15) Ver anexo N° 1 La raíz en infusión es utilizada para las vías urinarias. Actividad antimicrobiana y toxicidad: los extractos acuosos y etanólicos de la planta completa no manifestaron actividad inhibitoria en los cultivos de Staphylococcus aureus y Escherichia coli. Los extractos acuosos y etanólicos de la planta completa, sobre todo los de concentración 500 ppm. fueron tóxicos para los peces. Esta toxicidad estuvo acentuada en los extractos acuosos. ( 9 ) A los niños se les da para el dolor de muelas, haciendo enjuagatorios de las hojas cocidas. Actividad antimicrobiana y toxicidad: los extractos etanólicos de hojas, y tallos, no tuvieron actividad inhibitoria contra Escherichia coli y Staphylococcus aureus. Los extractos etanólicos de hojas y tallo, son tóxicas para los peces, no así los acuosos. ( 9 ) En dosis altas y por vía oral es tóxica.
Paspalum notatum Grama
Muralla paniculata Mirto
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25 ESPECIES VEGETALES UTILIZADAS EN EL ÁREA MATERNO-INFANTIL
Especie vegetal Catharantus roseus Chula
Usos sugeridos Se emplean en enjuagatorios para las infecciones de garganta y amígdalas, infecciones de los ojos. A partir de Catharantus roseus se han aislado hasta la fecha 90 alcaloides siendo los más importantes dos de ellos: vinca-leucoblastina (vinblastina) y leurocristina (vincristina), para el tratamiento del cáncer. La vinblastina es útil principalmente en el tratamiento de la enfermedad de Hodgkin, cáncer que afecta a los ganglios linfáticos, bazo e hígado. La vincristina es clínicamente más importante que la vinblastina, sobre todo en el tratamiento de leucemia infantil, pero es también el principal componente de diversos tratamientos combinados de alta eficacia. Tambien ha sido modificada estructuralmente la vinblastina, para dar vindesina, introducida recientemente como fármaco para el tratamiento de la leucemia linfoide aguda en niños. ( 6)
Sanseveria guineensis Curarina
El extracto etanólico y acuoso de hojas y tallo, presenta toxicidad a los peces a una concentración de 40 ppm en periodo de 12 horas. En pruebas de susceptibilidad microbiana, los extractos etanólicos y acuosos de tallo y raíz presentan actividad antimicrobiana con las cepas de Escheichia coli y Staphylococcus aureus. La presencia de saponinas en la planta contribuye a la toxicidad que presenta ante los peces. ( 15 ) Niños: anemia, paludismo, se utiliza como diurética, diarreas, carminativa, heridas, llagas y como nutriente de peces. Las partes aéreas son ricas en calcio, hierro, riboflavina y caroteno. El extracto acuoso ejerce una actividad antimalárica in vitro, sobre Plasmodium gallinaceum y Plasmodium falciparum, a la concentración de 100 µg/mL, pero no inhibió el crecimiento de Escherichia coli, Salmonella typhi ni Shigella flexneri. La eventual actividad antipirética se estudió siguiendo el método de Gujral et al., en ratas albinas, pirexia por inyección subcutánea de levadura de cerveza al 15%; el extracto acuoso de hoja de la planta (1:1), se administró por la misma vía. Los estudios toxicológicos de un extracto de la planta, en el ratón muestran que la LC50 por vía intravenosa es superior a 50 mg/kg y por vía oral a 1 g/kg. Es un condimento de uso culinario relativamente frecuente. (10)
Eryngium foetidum Acapate
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25 ESPECIES VEGETALES UTILIZADAS EN EL ÁREA MATERNO-INFANTIL
Especie vegetal Usos sugeridos Lycopersicon esculentum Es utilizada en quemaduras, estomatitis y enfermedades de los ojos Tomate específicamente conjuntivitis y como refrescante. El fruto muy utilizado en la culinaria por lo tanto altamente consumido por mujeres embarazadas y niños. Contiene una importante cantidad de vitamina C. es un nutriente excelente por su contenido en minerales como: calcio 131 mg, fósforo 27 mg , hierro 0.5 mg, sodio 3 mg, potasio 244 mg, caroteno 162 µg, tiamina 0.06 mg, riboflavina 0.04 mg, niacina 0.5 mg ácido ascórbico 20 mg.(7) además contiene proteínas, vitamina E y vitamina A El extracto de la semilla seca in vitro, produjo inhibición de la síntesis de proteínas, a dosis de 32.0 µ/ml. El extracto acuoso del fruto tiene actividad antimutagénica. El fruto verde puede presentar una toxicidad semejante a la patata cruda por su alto contenido de gluco-alcaloides. (7) Justicia cartaginensis Hierba del Susto
Ansiedad y tensión psíquica nerviosa, (con el nombre genérico de “Susto”, se conocen los síntomas anteriores. De allí el nombre vulgar de la especie) Se hacen siete baños uno cada dia para los niños que padecen los sustos. Los extractos etanólicos de planta completa no presentaron actividad contra Staphylococcus aureus y Escherichia coli. ( 9 )
Al reunir todos los resultados de los bioensayos se espera contribuir, de una forma científica a aportar información de estas plantas para que puedan ser utilizadas con la precaución necesaria sobre todo en aquellos casos que los resultados muestran toxicidad. A continuación se presenta una breve información sobre el desarrollo y utilidad de cada bioensayo:
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1.8 Artemia salina Determina la citoxicidad de extracto de especies vegetales a diferentes concentraciones. El bioensayo consiste en reproducir los huevos de Artemia salina y llevarlos a su ciclo de vida de Nauplios , cuando son mantenidos en soluciones de sal de mar, simulando el agua de mar. En un microplato con 96 pozos se agregan las disoluciones a diferentes concentraciones de los extractos llevando en cada ensayo un control positivo y un blanco, y luego en cada pozo son colocados 15 nauplios de Artemia salina y se espera el resultado durante 30 minutos y 24 horas tomándose los datos de los nauplios muertos y vivos de cada uno de los pozos. Luego estos resultados son introducidos a un programa de computadora para encontrar la LC50. Este bioensayo nos determina la toxicidad o citotoxicidad de los extractos a las concentraciones ensayadas. (18) Para completar la información de citotoxicidad debe efectuarse luego el bioensayo de interacción con la molécula de ADN.
1.9 Aedes aegypti Los huevecillos de Aedes aegypti son mantenidos en agua reposada por 72 horas hasta que oclusionan. Son utilizadas las larvas en su 2° estadio, siendo colocados en N° de 15 larvas dentro de un microplato con 96 pozos, en la cual tambien es agregada los extractos a diferentes concentraciones. Las placas son observadas a los 30 minutos y 24 horas. Durante el bioensayo se lleva un control positivo y un blanco. La LC100 es encontrada cuando las larvas mueren en un 100 % es decir la menor concentración aquella a la que la población total de larvas fallece.
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Con este bioensayo se busca, qué extractos presentan actividad larvicida contra Aedes aegypti. ( 20 )
1.10 ACTIVIDAD ANTIMICROBIANA El ensayo se realiza por método de MITSCHER , en donde los microorganismos de prueba son cinco bacterias patógenas (2 gram – y 2 gram +) y una levadura. El extracto de la planta se disuelve en un disolvente apropiado. Hasta obtener diferentes concentraciones para conocer la concentración inhibitoria mínima del extracto. Para la prueba se utilizan los siguientes medios de cultivo (Agar Tripticasa Soya (TSA) , Caldo Caseína Soya (TSB) y Solución Salina 0.9%), se siembran las bacterias en los medios de cultivo, luego se colocan los extractos de las plantas, se incuba, posteriormente se examinan. La prueba lleva en cuenta dos controles: Un control negativo y un positivo con Sulfato de Estreptomicina. En este bioensayo se determina el potencial de inhibición que tienen los extractos sobre los microorganismos de prueba. ( 23 )
1.11 DETERMINACION DE LA INTERACCIÓN DIRECTA CON ADN Empleando el procedimiento con Cromatografía Líquida de Alta Resolución usando una columna C18, M. Suffness y J. M Pezzuto establecieron un sistema que serviría como un prescreen o monitor para sustancias capaces de interactuar con ADN. (Método de Pezzuto) ( 23
)
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1.11.1 FUNDAMENTO DEL METODO Se fundamenta en la interacción de ligandos de bajo peso molecular y/o ligandos macromoleculares (aún en proceso de investigación) con la estructura del ADN; verificándose la bioactividad del extracto vegetal sobre tal estructura en el cromatograma mediante la reducción en más de un 30%, del pico de ADN. ( 23 ) Para ello se aplica Cromatografía Líquida de Alta Resolución de fase estacionaria no polar, con frecuencia se trata de un hidrocarburo, y la fase móvil es relativamente polar (agua-metanol). Así la fase estacionaria la constituye una columna analítica de octadecil cilano (C18), por la que se hace pasar una mezcla de solución de ADN con solución del extracto (1:1, v/v), con fase móvil de agua:metanol (80:20); en donde el ADN eluye como pico no retenido y los componentes del extracto ensayado, son retenidos por la resina. La bioactividad de los extractos puros frente al ADN, traducida como una disminución considerable del pico de ADN, se compara basándose en sustancias que interaccionan o intercalan fuertemente con el ADN (patrón positivo), como es el caso de la doxorrubicina, la cual disminuye el pico de ADN. El mecanismo de acción de actividad antineoplásica es desconocida, pero podría involucrar su enlace al (ADN) por intercalación de su estructura, inhibiendo así la síntesis de ADN y ARN (Ácido Ribonucleico). Es importante mencionar que los resultados de estos ensayos son dependientes de la concentración de los metabolitos presentes en el extracto vegetal, así es probable que el sistema
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no detecte aquel metabolito capaz de mostrar bioactividad por estar presente en menor concentración en relación con los otros o podría darse el caso de obtener resultados de mínima respuesta, así como la disminución del pico de ADN sea menor al 30%. ( 24 ) El 30% de reducción del pico de AND, nos indica el resultado que el extracto a disminuido la concentración de ADN, considerándose activo dicho extracto. Cuando el valor es igual o mayor al 30%, hay una elevada actividad citotóxica. Por lo tanto si se obtiene un valor menor del 30% no se deben descartar estos datos, ya que se ha dado una posible intoxicación con la molécula. ( 19 )
1.12 GENERALIDADES DEL ADN El descubrimiento de la información genética está codificada a lo largo de una molécula polimérica compuesta por sólo cuatro tipos de unidades monoméricas, es uno de los logros científicos más importantes de este siglo. Esta molécula polimérica, el DNA, es la base química de la herencia y está organizada en genes, unidades fundamentales de la información genética. Los genes controlan la síntesis de varios tipos de RNA, que en su mayor parte están involucrados en la síntesis de proteínas. Los genes no funcionan de manera autónoma; su actividad y replicación son controladas de manera todavía vagamente comprendida por circuitos de retroacción en que los mismos productos genéticos desempeñan una función crítica. El conocimiento de la estructura y función de los ácidos nucleicos, es esencial para comprender la genética y proporciona la base para la investigación futura.
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La base química de la herencia y de las enfermedades genéticas se encuentran en la estructura del AND, por tal razón se toma como base para dicho estudio. Se ha dilucidado la vía de información básica (esto es, el DNA dirige la síntesis del RNA, que a su vez regula la síntesis de proteínas). Este conocimiento se está usando para definir la fisiología celular normal y la fisiopatología de la enfermedad a nivel molecular. ( 14)
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CAPITULO II PARTE EXPERIMENTAL
50
2.0
PARTE EXPERIMENTAL
2.1
MATERIAL, EQUIPO Y REACTIVOS
2.1.1 MATERIALES (Listado de plantas Utilizadas) Nombre Científico
Nombre Común
Jatropha curcas
Tempate
Parte de la Planta Recolectada Hojas y Tallos
Chenopodium ambrosioides
Epazote
Hojas Tallos y Corteza
Catharanthus roseus
Chula
Hojas Tallos y Flores
Sanseveria quineensis
Curarína
Hojas y Tallos
Rauwolfia tetraphyla
Amatillo
Hojas Tallos y Corteza
Solanum nigrum
Hierba mora
Hojas y Tallo
Murraya paniculata
Mirto
Hojas y Tallos
Bursera simarouba
Jiote
Hojas
Zyzygium jambos
Manzana rosa
Hojas Tallos y Corteza
Tridax procumbens
Hierba del toro
Hojas y Tallos
Lycopersicum esculentum
Tomate
Ricinus communis
Higuerillo
Hojas Tallos y Corteza
Ocimun basilicum
Albahaca
Hojas y Tallos
Zingiber officinale
Jengibre
Rizoma
Fruto
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Nombre Científico
Nombre Común
Parte de la Planta Recolectada Hojas y Tallo
Lippia alba
Salvia santa
Eryngium foetidum
Alcapate
Hojas y Tallo
Achilea milefolium
Alhucema
Hojas
Cassia grandis
Carao
Fruto
Yucca elephantipes
Izote
Hojas y Tallo
Justicia carthaginensis
Hierba del susto
Hojas Tallos y Corteza
Pluchea odorata
Siguapate
Hojas Tallos y Corteza
Paspalum notalum
Grama
Hojas Tallos y Corteza
Púnica granatum
Granado
Hojas Tallos y Corteza
Hymenae courbaril
Copinol
Fruto
Guazuma ulmifolia
Caulote
Hojas y Tallos
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2.1.2 EQUIPO AGITADOR MAGNETICO/HOT PLATE; Marca:CORNING; Modelo:PC – 420; Serie: 300 59-8119660.
BALANZA GRANATARIA; Marca: Ohaus; Modelo: 32901; Serie: 700
BALANZA ANALÍTICA; Marca: Mettler; Modelo: AE – 160
CROMATOGRAFO LÍQUIDO DE ALTA RESOLUCIÓN; Marca: Perkin – Elmer, Modelo: LC – 95 UV/visible Spectrophotometer detector Water 515 HPLC pump
EQUIPO DE REFLUJO
REFRIGERADOR; Marca: LAB / PHARMACY;
Serie: 03005356, Modelo: ST 80RG
ROTAVAPOR, Marca: LABCONCO; Modelo: 50 – 60 CY Serie: NR-89510915 Nº 241 – 1658 AC: 115 V Tº : 100 ºC
ULTRASONIDO; Marca: Fhisher Scientific; Modelo: FS 20
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2.1.3 REACTIVOS Acetato de etilo Ácido Clorhídrico concentrado Ácido Clorhídrico 1 N Ácido Sulfúrico concentrado Agua Destilada Anhídrido Acético Benceno Cloroformo Cloruro de Férrico 1% en KOH Etanol 90% Láminas de Magnesio Reactivo de Baljet (ácido pícrico, etanol, hidróxido de sodio, agua) Reactivo de Bormtrager (benceno, amoniaco) Reactivo de Dragendorff (BiNO3, HNO3 30%, KI ) Reactivo de Kedde (alcohol, NaOH, ácido dinitrobenzoico en alcohol 2%) Reactivo de Keller – Killiani ( ácido acético glacial, tricloruro de hierro, ácido sulfúrico concentrado, sulfato ferroso) Reactivo de Legal (Piridina, nitroprusiato de sodio 5%, oxido de sodio 2N) Reactivo de Mayer (HgCL2(s), KI)
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Reactivo de Wagner (yodo sublimado, KI) Solución de Clorhidrato de Quinina Solución de Cloruro de Hidroxilamina Solución de Dicromato de Potasio 5% Solución de Gelatina 5% Sub – Acetato de Plomo 5% Solventes para cromatógrafo líquido Metanol HPLC Agua HPLC Estandares de Referencia Acido Desoxirribonucleico (ADN), Tipo XIV. Sal Sódica (Sigma) (Esperma de Hering) Apariencia: Hebras blancas Solubilidad: Soluble en agua, en solución es ligeramente opalescente, incolora. Contenido de Humedad: 5.6 % Contenido de sodio
: 6.5 %
Contenido de Fósforo : 8.6 %
Doxorrubicina (10 mg/vial de 5 mL)
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2.2 METODOLOGIA 2.2.1 RECOLECCIÓN DE MATERIAL VEGETAL Se procedió a la recolección de 25 plantas de la Flora salvadoreña en diferentes zonas del país, tomando en consideración la identificación botánica de las respectivas plantas; que se encuentren sanas, es decir, sin daño evidente provocado por insectos o contaminantes. Luego se colocó en bolsas de plástico negras para evitar el maltrato, durante el transporte. CUADRO N° 2 NOMBRE CIENTIFICO Y NOMBRE COMÚN 1. Jatropha curcas (Tempate) 2. Chenopodium ambrosioides (Epazote) 3. Catharantus roseus (Chula) 4. Sanseveria quineensis (Curarina) 5. Rauwalfia tetraphila (Amatillo)
PARTE DE LA PLANTA RECOLECTADA Hojas y Tallo Hojas, Tallo y Corteza Hojas, Tallo y Flores Hojas y Tallo
6. Solanum nigrum (Hierba mora)
Hojas, Tallo y Corteza Hojas y Tallo
7. Muralla paniculata (Mirto)
Hojas y Tallo
8. Bursera simarouba (Jiote)
Hojas
9. Zyzygium jambos (Mazana rosa) 10.Tridax procumbens (Hierba del toro)
Hojas, Tallo y Corteza Hojas y Tallo
LUGAR DE RECOLECCION Los Naranjos (Sonsonate) Los Planes de Renderos (San Salvador) Campus Universitario (UES) Los Naranjos (Sonsonate) Carretera al Puerto de la Libertad Campus Universitario (UES) Campus Universitario (UES) Playa La Zunganera (La Libertad) San Rafael Cedros (Cuscatlan) Campus Universitario (UES)
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NOMBRE CIENTÍFICO Y NOMBRE COMÚN 11. Lycopersicum esculentum (Tomate) 12. Ricinus communis (Higuerillo) 13. Ocimun micranthum (Albahaca) 14. Zingiber officinale (Jengibre)
PARTE DE LA PLANTA RECOLECTADA Fruto Hojas, Tallo y Corteza Hojas y Tallo Raíz
15. Lippia alba (Salvia santa)
Hojas y Tallo
16. Eryngium foetidium (Acapate)
Hojas y Tallo
17. Achillea millefolium (Alhucema)
Hojas y Flores
18. Cassia grandis (Carao)
Fruto
19. Yuca elephantipes ( Izote)
Hojas y Tallo
20. Justicia carthaginesis (Hierba Del susto) 21. Pluchea odorata (Siguapate)
24. Hymanae courbaril (Copinol)
Hojas, Tallo y Corteza Hojas, Tallo y Corteza Hojas, Tallo y Corteza Hojas, Tallo y Corteza Fruto
25. Guazuma ulmifolia (Caulote)
Hojas y Tallo
22. Paspalum notatum (Grama) 23. Punica granatum (Granado)
LUGAR DE RECOLECCION Los Planes de renderos (San Salvador) Carretera San Salvador – Santa Ana Los Planes de renderos (San Salvador) Los Planes de renderos (San Salvador) Los Planes de renderos (San Salvador) Los Planes de Renderos (San Salvador) Mercado Central (San Salvador) San Rafael Cedros (Cuscatlan) Los Naranjos (Sonsonate) Moncagua (San Miguel) Los Planes de Renderos (San Salvador) Campus Universitario (UES) Soyapango (San Salvador) San Rafael Cedros (Cuscatlan) Santiago Texacuangos (San Salvador)
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2.2.2 TRATAMIENTO DE LA PLANTA PREVIO A LA OBTENCIÓN DE LOS EXTRACTOS Se realiza este proceso a la planta posterior a la recolección, para asegurar que la planta mantenga sus componentes. Involucra los siguientes pasos: • Manipular con guantes para evitar transferirle contaminantes; • Limpiar de aquellos residuos de tierra o partículas presentes, utilizar agua de chorro y luego agua desmineralizada; • Secar a la sombra o al sol, según el caso, y airearlas para eliminar el agua de lavado previo a la extracción. • Almacenar en bolsas plásticas oscuras para protegerlas de la luz, y evitar así cualquier riesgo de alteración en su composición química; cada especie se identifica de acuerdo al modelo de etiqueta que se describe a continuación: NOMBRE CIENTIFICO NOMBRE COMUN PARTE DE LA PLANTA RECOLECTADA LUGAR DE RECOLECCIÓN FECHA DE RECOLECCIÓN HORA DE RECOLECCIÓN RECOLECTOR
• Fraccionar, una vez seco, según el órgano recolectado; por ejemplo, cuando son hojas se pican con las tijeras, o con las manos, si son semillas triturar y para el caso de raíces y tallos son pulverizados en un molino; guardar en recipientes cerrados cuando están secas.
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2.2.3 OBTENCIÓN DE EXTRACTOS CRUDOS (Extracto Hidroalcohólico). Proceso para la obtención de los componentes químicos de las plantas, proceso de extracción que se realiza por reflujo en un medio hidroalcohólico. Reflujar por 8 horas un mínimo de 200.0 gramos material vegetal, utilizar como solvente de extracción etanol de 70º. Luego de transcurrido el tiempo filtrar en caliente y envasar en frascos de vidrio color ámbar, debidamente identificados. Concentrar extractos etanólicos en un rotavapor, envasar la masa resinosa en frascos bien cerrados, protegidos de la luz y la humedad.
2.3 ANÁLISIS FITOQUIMICO PRELIMINAR Se realiza un análisis fitoquímico preliminar para conocer los metabolitos secundarios presentes. Luego de obtener el extracto hidroalcohólico, proceder a la identificación de los metabolitos secundarios:
taninos,
alcaloides,
antraquinonas,
flavonoides,
saponinas,
cardiotónicos,
sesquiterpenlactonas. El análisis fitoquímico preliminar nos indica los metabolitos secundarios presentes en cada planta, debido a que la actividad de ellos podría interactuar con la molécula del ADN.
59
2.3.1 Ensayos para determinar alcaloides ( 5, 6,12)
Extracto Vegetal
Concentrar el extracto vegetal a 20 mL Adicionar 20 mL de cloroformo y acidificar con HCL 1N a pH 1 – 2 Separar capa ácida Dividir solución ácida en 3 porciones
Dragendorff Sln. Ácida + Reactivo de Dragendorff Precipitado anaranjado
Mayer Sln. Ácida + Reactivo de Meyer Precipitado blanco amarillento
Wagner Sln. Ácida + Reactivo de Warner Precipitado café o marrón
60
2.3.2 Ensayos para determinar antraquinonas
Extracto Vegetal Prueba de Borntrager Evaporar 5 ml del extracto a sequedad Disolver el residuo con 30 mL de HCL 1N Filtrar, adicionar al filtrado 10 mL de benceno Adicionar a la capa bencénica 5 mL de amoníaco La capa alcalina se colorea de rosado intenso a rojo
61
2.3.3 Ensayos para determinar glicósidos saponínicos
Extracto Vegetal
Índice de Espuma
Lieberman – Buchard
Prueba de Salkowski
A 5 mL de extracto + 10 mL de agua destilada. agitar, dejar reposar por 5 minutos
Seguir procedimiento descrito en glicósidos cardiotónicos
10 mL de extracto + 5 gotas de H2SO4 [ ] adicionar 1 mL de anhídro
Se produce una espuma mayor de 3.0 cm arriba de la superficie del líquido
Anillo de color azul violeta, rojo
Anillo de color rojo
62
2.3.4 Ensayos para determinar glicósidos cardiotónicos
Extracto Vegetal Precipitar las sustancias interferentes del extracto con un volumen de solución. de sub – acetato de plomo TS (AcO)3Pb ≤ al volumen del extracto Dejar reposar por 30 minutos y filtrar Extraer con 2 porciones de acetato de etilo y Concentrar hasta ≅ 20 mL Dividirla en 3 porciones Lieberman – Buchard Evaporar a sequedad Adicionar 1 mL de anhídrido acético + 3 gotas de H2SO4 ó más (Baño de Hielo). dejar reposar por 30 minutos Anillo de color azul violeta, rojo
Kedde Evaporar a sequedad Adicionar 2 mL de alcohol + 1 mL de reactivo de Kedde
Anillo azul violeta
Keller - Killiani Evaporar a sequedad Disolver el residuo con 2 mL de reactivo de Keller + gotas de reactivo de Killiani Anillo o color rojo
63
2.3.5. Ensayos para determinar flavonoides
Extracto Vegetal Prueba de Shinoda A 5 mL de extracto adicionar una lámina de magnesio + 2 mL de HCL [ ] dejar reposar por 10 minutos Se produce tonos rojos
64
2.3.6. Ensayos para determinar sesquiterpenlactonas
Extracto Vegetal
Precipitar la clorofila del extracto con cantidad suficiente de sln. de sub – acetato de plomo TS (AcO)2Pb dejar reposar por 30 minutos y filtrar Extraer con 2 porciones de 20 mL de cloroformo Eliminar el exceso de (AcO)2Pb, con lavados de agua destilada Dividir el extracto clorofórmico en tres fracciones evaporar a sequedad en baño maría cada una de las fracciones, separadamente
Hidroximatos Férricos Fracción 1 + sln. de clorhidrato de hidroxilamina + cloruro férrico al 1 % en KOH Color violeta
Reactivo de Baljet
Reactivo de Legal
Fracción 2 + reactivo de Baljet
Fracción 3 + reactivo de Legal
Color anaranjado a rojo oscuro
Color rojo intenso
65
2.3.7 Ensayos para determinar taninos Prueba con sln. (AcO)2Pb TS 2 mL de extracto + 1 mL de solución. de (AcO)2Pb TS Precipitado Amarillo Prueba con sln. FeCL3
Extracto Vegetal
2 mL de extracto + 3 gotas de sln. de FeCL3 Color azul oscuro – verde – gris oscuro Prueba con sln. de Gelatina 2 mL de sln. de gelatina al 5 % precipitado color blanco Prueba con sln. de Clorhidrato de Quinina 2 mL de extracto + 2 mL de solución de Clorhidrato quinina Precipitado blanco – amarillento
66
2.4 BIOENSAYO INTERACCIÓN CON ADN. ( 22,23,24 ) 2.4.1 Preparación de solución madre de ADN. Pesar 10.0 mg de ADN (esperma de herring) en balanza Analítica,
disolver con 20 mL de agua grado HPLC
Transferir a un matraz volumétrico de 100 mL Adicionar 50 mL de agua grado HPLC y agitar por 15 minutos Llevar a volumen con el mismo solvente, homogenizar la solución
(concentración final 0.1 mg/ mL) 2.4.2 Preparación de solución de doxorrubicina Reconstituir un vial de 10 mg de doxorrubicina
(*)
Con 5 ml de agua bidestilada
(concentración final de 2 mg/ml)
(*)
Precaución: Utilizar guantes y manipular con sumo cuidado esta sustancia, es
potencialmente tóxica.
67
2.4.3 Preparación de solución madre de extracto. (Se ocupa la masa resinosa obtenida de la evaporación de el solvente en el rotavapor) Pesar 25.0 mg de extracto crudo vegetal en balanza analítica Disolver el extracto crudo con 20 mL metanol grado HPLC Transferir a un matraz volumétrico de 100 mL Adicionar 50 mL de metanol HPLC y agitar por 15 minutos Llevar a volumen con el mismo solvente, homogenizar la Solución, (concentración final 0.25 mg/ mL) 2.4.4 Preparación de solución estándar de ADN ( 1:1, v/v) Pipetear 100 µL de la solución madre de ADN y 100 µL de agua grado HPLC mezclar ambas alícuotas y homogeneizar (concentración final 0.05 mg/mL) 2.4.5 Preparación de solución patrón de bioactividad positiva (la interacción de Doxorrubicina con la molécula de ADN nos indica una interacción positiva con dicha molécula) pipetear 100 µL de solución madre de ADN y 5 µL de solución de Doxorrubicina
68
Mezclar ambas alícuotas y homogeneizar (1:1, AND/Doxorrubicina ) 2.4.6 Preparación de solución de muestra. (Previo a la inyección en el equipo de Cromatografía Líquida de Alta Resolución se procede a mezclar la solución de ADN con la solución de Extracto de cada planta a estudiar) Pipetear 100 µL de la solución madre de ADN y 100 µL de la Solución madre del extracto crudo Mezclar ambas alícuotas y homogenizar
2.4.7 Condiciones Experimentales del Cromatografo Líquido de Alta Resolución. Columna: C18 Columna de fase inversa (Columna de alta pureza de sílica con octadecil Silano, con un tamaño de partícula de 5µ, 250 x 4.6 mm de longitud por DI) Pre – Columna: C18 Fase móvil: Agua – Metanol (80:20) grado HPLC Flujo: 0.5 mL / min. Detector: 515_LC-95
69
2.4.8 Desarrollo del Bioensayo. 2.4.8.1
Estabilizar el Cromatógrafo Líquido de Alta Resolución a las condiciones descritas anteriormente Ambientar la columna con dos inyecciones de solución stándard de ADN Inyectar 20 µL de solución estándar de ADN Correr el Cromatógrama
Lavar la columna con metanol (100 %) grado HPLC, durante 10 – 15 minutos
2.4.8.2
Estabilizar nuevamente la columna con la fase móvil durante 10 – 15 minutos realizar un mínimo de dos inyecciones de 20 µL de la solución de muestra Correr el Cromatograma Lavar la columna con metanol (100%) grado HPLC Realizar un mínimo de cuatro inyecciones de cada extracto.
Nota: Estabilizar nuevamente la columna con la fase móvil durante 10 – 15 minutos.
70
2.5
Cálculos.
2.5.1 Cálculo del porcentaje de reducción A1 – A2 Porcentaje de reducción =
X 100 A1
Donde: A1 : Área del pico de la solución estándar de ADN A2 : Área del pico de la solución de muestra Se realizaron cuatro inyecciones de la solución estándar de ADN y de solución de ADN con cada uno de los 25 extractos. 2.5.2 Desviación estándar de las determinaciones de soluciones ensayadas S=
∑ ( Xi – X )2 n-1
Donde: S : Desviación estándar ∑: Sumatoria Xi : Valor del porcentaje de reducción muestra X: Media aritmética de los porcentajes de reducción n : Número de determinaciones (4 por muestra y 2 de doxorrubicina ) Los valores se expresan como el promedio de las determinaciones realizadas ± la desviación estándar.
71
CAPITULO III ANÁLISIS DE RESULTADOS
72
CUADRO Nº 3. RESULTADOS DE ANÁLISIS FITOQUIMICO DE ALCALOIDES Y SESQUITERPENLACTONAS. PRUEBAS
ESPECIES VEGETALES NOMBRE CIENTIFICO Jatroha curcas Chenopodium ambrosoides Catharantus roseus Sanseviria quinensis Rauwolfia tetraphylla Solamun nigrum Murraya paniculata Bursera simarouba Zyzygium jambos Tridax procumbens Lycopersicum esculentum Ricinus communis Ocimun basilicum Zingiber officinalis Lippia alba Eryngium foetidum Achillea millefolium Cassia grandis Yucca elephantipes Justicia carthaginensis Plunchea odorata Paspalum notatum Punica granatum Hymenaea courbaril Guazuma ulmifolia
ALCALOIDES
SESQUITERPENLACTONAS
Dragendorff
Wagner
Mayer
Resultados
Legal
Balget
Hidroxilamina
Resultados
+ + + + + + + + + + + + + + + + + + + -
+ + + + + + + + + + + + + + + + + + + -
+ + + + + + + + + + + + + + + + + + + -
Positivo Positivo Positivo Negativo Positivo Positivo Positivo Positivo Positivo Negativo Positivo Positivo Negativo Positivo Positivo Negativo Positivo Positivo Positivo Positivo Positivo Positivo Positivo Negativo Negativo
+ + + + + + + + + + + -
+ + + + + + + + + + + -
+ + + + + + + + + + + -
Positivo Positivo Positivo
NOMBRE COMUN
Tempate Epazote Chula Curarina Amatillo Hierba mora Mirto Jiote Manzana rosa Hierba del toro Tomate Higuerillo Albahaca Jengibre Salvia santa Alcapate Alhucema Carao Izote Hierba del susto Siguapate Grama Granado Copinol Caulote
Negativo Positivo
Negativo Positivo Positivo
Negativo Negativo Positivo
Negativo Positivo
Negativo Negativo Positivo
Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Positivo Positivo
Negativo
73
CUADRO Nº 4. RESULTADOS DE ANÁLISIS FITOQUIMICO DE SAPONINAS, ANTRAQUINONAS Y FLAVONOIDES PRUEBAS ESPECIES VEGETALES
SAPONINAS
NOMBRE CIENTIFICO
NOMBRE COMÚN
Jatroha curcas Chenopodium ambrosoides Catharantus roseus Sanseviria quinensis Rauwolfia tetraphylla Solamun nigrum Murraya paniculata Bursera simarouba Zyzygium jambos Tridax procumbens Lycopersicum esculentum Ricinus communis Ocimun basilicum Zingiber officinalis Lippia alba Eryngium foetidum Achillea millefolium Cassia grandis Yucca elephantipes Justicia carthaginensis Plunchea odorata Paspalum notatum Punica granatum Hymenaea courbaril Guazuma ulmifolia
Tempate Epazote Chula Curarina Amatillo Hierba mora Mirto Jiote Manzana rosa Hierba del toro Tomate Higuerillo Albahaca Jengibre Salvia santa Alcapate Alhucema Carao Izote Hierba del susto Siguapate Grama Granado Copinol Caulote
ANTRAQUINONA FLAVONOIDES
Espuma
Salkowski
Lieberman buchar
Resultados
borntrager
Resultado
Shinoda
Resultados
+ + + + + + +
+ + + + + + +
+ + + + + + +
Positivo Negativo Negativo Positivo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Positivo Positivo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Positivo Negativo Negativo Negativo Negativo Positivo Positivo
+ + -
Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Positivo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Positivo Negativo
+ + + + + + + + + + + +
Positivo Negativo Negativo Negativo Positivo Negativo Negativo Positivo Positivo Positivo Negativo Negativo Positivo Positivo Negativo Negativo Positivo Positivo Negativo Negativo Positivo Negativo Negativo Positivo Positivo
74
CUADRO Nº 5. RESULTADOS DE ANÁLISIS FITOQUIMICO DE TANINOS ESPECIES VEGETALES NOMBRE CIENTIFICO
NOMBRE COMÚN
Jatroha curcas Chenopodium ambrosoides Catharantus roseus Sanseviria quinensis Rauwolfia tetraphylla Solamun nigrum Murraya paniculata Bursera simarouba Zyzygium jambos Tridax procumbens Lycopersicum esculentum Ricinus communis Ocimun basilicum Zingiber officinalis Lippia alba Eryngium foetidum Achillea millefolium Cassia grandis Yucca elephantipes Justicia carthaginensis Plunchea odorata Paspalum notatum Punica granatum Hymenaea courbaril Guazuma ulmifolia
Tempate Epazote Chula Curarina Amatillo Hierba mora Mirto Jiote Manzana rosa Hierba del toro Tomate Higuerillo Albahaca Jengibre Salvia santa Alcapate Alhucema Carao Izote Hierba del susto Siguapate Grama Granado Copinol Caulote
FeCl3
Solución de gelatina
Clorhidrato de Quinina
Subacetato de plomo
Resultado
+ + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + +
+ + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + +
+ + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + +
+ + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + +
Positivo Positivo Positivo Positivo Positivo Positivo Positivo Positivo Positivo Positivo Positivo Positivo Negativo Positivo Positivo Negativo Negativo Positivo Positivo Positivo Positivo Positivo Positivo Positivo Positivo
75
CUADRO Nº 6. RESULTADOS DE ANÁLISIS FITOQUIMICO DE GLICOSIDOS CARDIOTONICOS PRUEBAS ESPECIES VEGETALES NOMBRE CIENTÍFICO Jatroha curcas Chenopodium ambrosoides Catharantus roseus Sanseviria quinensis Rauwolfia tetraphylla Solamun nigrum Murraya paniculata Bursera simarouba Zyzygium jambos Tridax procumbens Lycopersicum esculentum Ricinus communis Ocimun basilicum Zingiber officinalis Lippia alba Eryngium foetidum Achillea millefolium Cassia grandis Yucca elephantipes Justicia carthaginensis Plunchea odorata Paspalum notatum Punica granatum Hymenaea courbaril Guazuma ulmifolia
GLICOSIDOS CARDIOTÓNICOS Kedde
Keller-Killiani
Legal
Lieberman Buchard
Resultados
+ + + + -
+ + + + -
+ + + + -
+ + + + -
Negativo Negativo Positivo Negativo Positivo Negativo Positivo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Positivo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo Negativo
NOMBRE COMUN
Tempate Epazote Chula Curarina Amatillo Hierba mora Mirto Jiote Manzana rosa Hierba del toro Tomate Higuerillo Albahaca Jengibre Salvia santa Alcapate Alhucema Carao Izote Hierba del susto Siguapate Grama Granado Copinol Caulote
76
CUADRO Nº 7. CUADRO RESUMEN DE COMPONENTES QUIMICOS DE LAS ESPECIES ESTUDIADAS ESPECIE VEGETAL NOMBRE CIENTÍFICO Jatroha curcas Chenopodium ambrosoides Catharantus roseus Sanseviria quinensis Rauwolfia tetraphylla Solamun nigrum Murraya paniculata Bursera simarouba Eugenia jambos Tridax procumbens Lycopersicum esculentum Ricinus communis Ocimun basilicum Zingiber officinalis Lippia alba Eryngium foetidum Achillea millefolium Cassia grandis Yucca elephantipes Justicia carthaginensis Plunchea odorata Paspalum notatum Punica granatum Hymenaea courbaril Guazuma ulmifolia
METABOLITOS SECUNDARIOS ALCALOIDES
ANTRAQUINONA
GLICOSIDOS CARDIOTONICOS
FLAVONOIDES
TANINOS
SAPONINAS
SESQUITERPENLACTONAS
+ + + + + + + + + + + + + + + + + + + -
+ + -
+ + + + -
+ + + + + + + + + + + + +
+
+
+
+ + + + + + + + + + + + + + + + + + + + +
+ + + + + +
+ + + + + + + + + + + -
77
3.1 DISCUSIÓN DE RESULTADOS OBTENIDOS DEL ANÁLISIS DE LAS PRUEBAS FITOQUIMICAS PRELIMINARES Los datos obtenidos en la investigación de metabolitos en las plantas en estudio, nos presentan un amplio espectro de las posibles sustancias que puedan interactuar con la molécula de ADN. Después de una serie de ensayos con los extractos hidroalcohólicos, se determinan hallazgos de metabolitos en forma cualitativa, no indagando en la identificación estructural-molecular de cada uno de ellos. Como se observa en los cuadros las plantas poseen varios metabolitos secundarios, los cuales actúan sinergicamente para mostrar sus propiedades terapéuticas, propiedades físico-químicas así como la actividad biológica que cada una de las muestras posee, lo cual se expresa en la monografía. Como se observa en los cuadros los metabolitos que menos se encontraron en las plantas en estudio fueron glicósidos, antraquinonas y cardiotónicos, ya que estos no son tan frecuentes en las plantas. La mayoría mostraron positivo el resultado de presencia de taninos, ya que estos contribuyen al desarrollo de la planta misma sobre todo en la formación de ciertos ácidos en los frutos y protección a la misma planta. Algunas que contenían alcaloides lo cual demuestra la diversidad de actividades farmacológicas que presentan las plantas medicinales debido a su presencia; tal como el caso de la chula que
78
corrobora el resultado obtenido ya que en la información bibliográfica la chula posee vincristina y vinblastina los cuales son alcaloides usados actualmente para el tratamiento contra el cáncer.
De todas las plantas, la que obtuvo una incidencia mayor fue el extracto de Ocimun bacilicum. CUADROS DE FITOQUIMICIOS PRELIMINARE
79
CONDICIONES DEL EQUIPO Y CROMATOGRAMA DE FASE MOVIL
80
3.2 CONDICIONES DEL EQUIPO Y CROMATÓGRAMA DE FASE MOVIL
81
82
CROMATOGRAMA Y CALCULO DE DOXORRUBICINA
83
3.3 GROMATOGRAMA Y CALCULOS DE DOXORRUBICINA
Área de Estándar de ADN 4 de Mayo 1751.5633 1810.4258 1814.6271 1800.6227
Área de ADN + DOXORRUBICINA 434.2971 265.7850
84
Cálculo del porcentaje de reducción, AND /Solución de Doxorrubicina ( 1 : 1 ) A1 – A2 Porcentaje de reducción =
x 100 A1
1a Determinación de Doxorrubicina A1 : 1751.5633 A2 : 434.2971 1751.5633 – 434.2971 Porcentaje de reducción = 1751.5633 = 75.2051 % 2a Determinación de Doxorrubicina A1 : 1751.5633 A2 : 265.7850 1751.5633 – 265.7850 Porcentaje de reducción = 1751.5633 = 84.8258 % 3a Determinación de Doxorrubicina A1 : 1810.4258 A2 : 434.2971 1810.4258 – 434.2971 Porcentaje de reducción = 1810.4258 = 76.0113 % 4a Determinación de Doxorrubicina A1 : 1810.4258 A2 : 265.7850 1810.4258 – 265.7850 Porcentaje de reducción = 1810.4258 = 85.3176 %
x 100
x 100
x 100
x 100
85
5a Determinación de Doxorrubicina A1 : 1814.6271 A2 : 434.2971 1814.6271 – 434.2971 Porcentaje de reducción = 1814.6271 = 76.0668 % 6a Determinación de Doxorrubicina A1 : 1814.6271 A2 : 265.7850 1814.6271 – 265.7850 Porcentaje de reducción = 1814.6271 = 85.3532 % 7a Determinación de Doxorrubicina A1 : 1800.6227 A2 : 434.2971 1800.6227 – 434.2971 Porcentaje de reducción = 1800.6227 = 75.8807 % a 8 Determinación de Doxorrubicina A1 : 1800.6227 A2 : 265.7850 1800.6227 – 265.7850 Porcentaje de reducción = 1800.6227 = 85.2393 % Cálculo de “ X ” (75.2051 + 84.8258) X1 =
= 80.0154 (1ª y 2ª) 2
X 2 = 80.6645 (3ª y 4ª) X3 = 80.7100 (5ª y 6ª)
x 100
x 100
x 100
x 100
86
X4 = 80.5600 (7ª y 8ª) X = (80.0154 +80.6645 + 80.7100 + 80.5600) / 4 = 80.4875 Desviación estándar de las determinaciones de soluciones ensayadas ∑ ( Xi – X )2 S= n-1 1a Determinación ( Xi – X1 )2 = (75.2051 – 80.0154)2 = 23.1389 2a Determinación ( Xi – X1 )2 = (84.8258 – 80.0154)2 = 23.1399 3a Determinación ( Xi – X2 )2 =
(76.0113 – 80.6645)2 = 21.6522
4a Determinación ( Xi – X2 )2 = (85.3176 – 80.6645)2 = 21.6513 5a Determinación ( Xi – X3 )2 = (76.0668 – 80.7100)2 = 21.5593 6a Determinación ( Xi – X3 )2 = (85.3532 – 80.7100)2 = 21.5583 7a Determinación ( Xi – X4 )2 = (75.8807– 80.5600)2 = 21.8958 8a Determinación ( Xi – X4 )2 = (852392– 80.5600 )2 = 21.8949
87
23.1389+123.1399 S1 =
= 6.8028 (1ª y 2ª) 2–1
S2 =
21.6522 + 21.6513
= 6.8053
(3ª y 4ª)
= 6.5663
(5ª y 6ª)
= 6.6174
(7ª y 8ª)
2–1
21.5593 + 21.5583 S3 = 2–1 21.8958 + 21.89449 S4 = 2–1 S = (6.8028 + 6.8028 + 6.5663 + 6.6174) / 4 = 6.6979 S = 6.6979 El resultado se expresan como el promedio de las determinaciones realizadas ± La desviación estándar: 80.4875 % ± 6.6979
88
ANÁLISIS, CÁLCULOS Y CROMATOGRAMA DE 25 EXTRACTOS CON ADN
89
3.4 CROMATÓCRAMA DE Ocimun basilicum
Área Estándar de ADN 23 de Abril 1780.3594 1778.9739 1809.0397 1800.4843
Área ADN + Extracto de Albahaca 1231.5967 1236.1909 1370.0902 1383.7626
90
3.5 Cálculo del porcentaje de reducción y análisis de AND / Extracto de Ocimun basilicum ( Albahaca ) ( 1 : 2.5) A1 – A2 Porcentaje de reducción =
x 100
A1 Determinación de Ocimun basilicum A1 : 1780.3594 A2 : 1231.5967 1780.3594 – 1231.5967 Porcentaje de reducción = x 100 1780.3594 = 30.82314 % 1a
2a Determinación de Ocimun basilicum A1 : 1780.3594 A2 : 1236.1909 1780.3594 – 1236.1909 Porcentaje de reducción = x 100 1780.3594 = 30.56509 % 3a Determinación de Ocimun basilicum A1 : 1780.3594 A2 : 1370.0902 1780.3594 – 1370.0902 Porcentaje de reducción =
1780.3594 = 23.04417 %
4a Determinación de Ocimun basilicum A1 : 1780.3594 A2 : 1383.7626 1780.3594 – 1383.7626 Porcentaje de reducción = 1780.3594 = 22.27622 %
x 100
x 100
91
5a Determinación de Ocimun basilicum A1 : 1778.9739 A2 : 1231.5967 1778.9739 – 1231.5967 Porcentaje de reducción = x 100 1778.9739 = 30.76926 % 6a Determinación de Ocimun basilicum A1 : 1778.9739 A2 : 1236.1909 1778.9739 – 1236.1909 Porcentaje de reducción = x 100 1778.9739 = 30.51101 % 7a Determinación de Ocimun basilicum A1 : 1778.9739 A2 : 1370.0902 Porcentaje de reducción =
1778.9739 – 1370.0902
x 100
1778.9739 = 22.98424 % 8a Determinación de Ocimun basilicum A1 : 1778.9739 A2 : 1383.7626 1778.9739 – 1383.7626 Porcentaje de reducción = 1778.9739 = 22.21568 %
x 100
9a Determinación de Ocimun basilicum A1 : 1809.0397 A2 : 1231.5967 1809.0397 – 1231.5967 Porcentaje de reducción = x 100 1809.0397 = 31.91986 %
92
10a Determinación de Ocimun basilicum A1 : 1809.0397 A2 : 1236.1909 1809.0397 – 1236.1909 Porcentaje de reducción = x 100 1809.0397 = 31.66590 % 11a Determinación de Ocimun basilicum A1 : 1809.0397 A2 : 1370.0902 1809.0397 – 1370.0902 Porcentaje de reducción =
1809.0397 = 24.26422 %
12a Determinación de Ocimun basilicum A1 : 1809.0397 A2 : 1383.7626 1809.0397 – 1383.7626 Porcentaje de reducción = 1809.0397 = 23.50844 %
x 100
x 100
13a Determinación de Ocimun basilicum A1 : 1800.4843 A2 : 1231.5967 1800.4843 – 1231.5967 Porcentaje de reducción = x 100 1800.4843 = 31.59636% 14a Determinación de Ocimun basilicum A1 : 1800.4843 A2 : 1236.1909 1800.4843 – 1236.1909 Porcentaje de reducción = x 100 1800.4843 = 31.6659 %
93
15a Determinación de Ocimun basilicum A1 : 1800.4843 A2 : 1370.0902 1800.4843 – 1370.0902 Porcentaje de reducción = 1800.4843 = 23.90435 % 16a Determinación de Ocimun basilicum A1 : 1800.4843 A2 : 1383.7626 1800.4843 – 1383.7626 Porcentaje de reducción = 1800.4843 = 23.14497 %
x 100
x 100
X1 = (30.82314 + 30.56509 + 23.04417 + 22.2762) / 4 = 26.6771 X2 = (30.76926 + 30.51101 + 22.98424 + 22.21568) / 4 = 26.6200 X3 = (31.91986 + 31.66590 + 24.26422 + 23.50844) / 4 = 27.8396 X4 = (31.59636 + 31.6659 + 23.90435 + 23.14497) / 4 = 27.4967
Cálculo de “ X ” ( 26.6771 + 26.6200 + 27.8396 + 27.4967 ) % X=
= 27.1583 % 4
Desviación estándar de las determinaciones de soluciones ensayadas ∑ ( Xi – X )2 S= n-1
94
1a Determinación de Ocimun basilicum ( Xi – X1 )2 = (30.8231 – 26.6771 )2 = 17.1884 2a Determinación de Ocimun basilicum ( Xi – X1 )2 = (30.5651 – 26.6771 )2 = 15.1157 3a Determinación de Ocimun basilicum ( Xi – X1 )2 = (23.044 – 26.6771 )2 = 13.1979 4a Determinación de Ocimun basilicum ( Xi – X1 )2 = (22.2762 – 26.6771 )2 = 18.8689 5a Determinación de Ocimun basilicum ( Xi – X2 )2 = (30.7692 – 26.6200 )2 = 17.2159 6a Determinación de Ocimun basilicum ( Xi – X2 )2 = (30.5110 – 26.6200 )2 = 15.1157 7a Determinación de Ocimun basilicum ( Xi – X2 )2 = (22.9842 – 26.6200 )2 = 13.9323 8a Determinación de Ocimun basilicum ( Xi – X2 )2 = (22.2156 – 26.6200 )2 = 19.3984 9a Determinación de Ocimun basilicum ( Xi – X3 )2 = (31.9198 – 27.8396 )2 = 16.6484 10a Determinación de Ocimun basilicum ( Xi – X3 )2 = (31.6659 – 27.8396 )2 = 14.6405 11a Determinación de Ocimun basilicum ( Xi – X3 )2 = (24.2642 – 27.8396)2 = 12.7833 12a Determinación de Ocimun basilicum ( Xi – X3 )2 = (23.5084 – 27.8396)2 = 18.7589 13a Determinación de Ocimun basilicum ( Xi – X4 )2 = (31.5963 – 27.4967 )2 = 16.8070 14a Determinación de Ocimun basilicum ( Xi – X4 )2 = (31.3412 – 27.4967 )2 = 14.7799 15a Determinación de Ocimun basilicum ( Xi – X4 )2 = (23.9043 – 27.44967 )2 = 12.9051
95
16a Determinación de Ocimun basilicum ( Xi – X4 )2 = (23.1449 – 27.4967 )2 = 18.9351
( 17.1884 + 15.1157 + 13.1979 + 18.8689) S1 =
= 4.6321 (1a y 4a) 4–1
( 17.2159 + 15.1396 + 13.9323 + 19.3984) S2 =
4–1
= 4.6791 (5a y 8a)
( 16.6484 + 14.6405 + 12.7833 + 18.7589 ) S3 =
= 4.5764 (9a y 12a) 4–1
( 16.8070 + 14.7799 + 12.7833 + 18.7589 ) S4 = 4–1
= 4.5822 (13a y 16a)
S = (4.6321 + 4.6791 + 4.5764 + 4.5822) / 4 = 4.6174 El resultado se expresan como el promedio de las determinaciones realizadas ± La desviación estándar:
27.1583 % ± 4.6174
Nota. Como este ejemplo se obtienen los cálculos de los demás
96
ANÁLISIS Ocimun basilicum (Albahaca) El resultado del análisis obtenido del extracto hidroalcohólico de Ocimun basilicum por el método de Cromatografía Líquida de Alta Resolución fue de 27.1583 ± 4.61, el cuál demuestra tener un grado considerable de interacción de los componentes en el extracto con la molécula de ADN Las hojas y tallos contienen flavonoides, taninos y sesquiterpenlactona. La bibliografía reporta que se ha encontrado algunos compuestos como safrol y estragol que pueden ser cancerigénicos, debido a los cuales se pueda deber su actividad citotóxica. Debido al uso en la alimentación y medicina debe utilizarse con gran precaución por la población.
97
Área Estándar de ADN 23 de Abril 1780.3594 1778.9739 1809.0397 1800.4843
Área de ADN + Extracto de Epazote 1383.7095 1412.6607 1436.3297 1425.4463
98
ANÁLISIS Chenopodium ambrosioides (Epazote) Se usa en niños, para el tratamiento contra parásitos intestinales y lombrices, muy especialmente áscaris, oxiuros y anquilostomas, según el resultado obtenido del extracto hidroalcohólico de hojas, tallo y corteza de Chenopodium ambrosioides (Epazote), frente a la molécula del ADN, debe de usarse con precaución ya que redujo el pico de este en un 21.0691 ± 1.26%, indicando que el extracto presenta citotóxicidad que aunque este abajo del 30%, no debe de dejarse de lado por lo que se recomienda usarse en pequeñas cantidades, según la bibliografía se recomienda una dosis por kilo de peso y por día en el niño, durante no más de 3 días. La planta contiene: alcaloides, sesquiterpenlactonas y taninos.
99
Área Estándar de ADN 2 de Mayo 1832.5781 1854.7057 1882.1232 1838.3114
Área de ADN + Extracto de Jiote 1537.9859 1536.6428 1583.5919 1606.1774
100
ANALISIS Bursea simarouba (Jiote) Este extracto hidroalcohólico de Hojas de Bursea simarouba al interaccionar con la molécula de ADN reduce el pico en un 15.4818% ± 2.60, valor que se tiene que tener en cuenta, por tanto esta planta debe emplearse con precaución ya que su principal uso es terapéutico contra diarreas, carminativo, contra cefaleas, para sarna, así como en cataplasmas, en caso de gangrena, enfermedades del hígado, tiroides y obesidad. Según revisión bibliografía (ver cuadro N° 1 Marco Teórico), esta planta ha demostrado alguna actividad antitumoral en carcinoma de Walker 256 en ratas. Las hojas contienen alcaloides, flavonoides, taninos, sesquiterpenlactonas.
101
Área Estándar de ADN 23 de abril 1780.3594 1778.9739 1809.0397 1800.4843
Área de ADN + Extracto de Hierba del Susto 1633.5373 1558.5241 1588.8331 1604.4054
102
ANALISIS Justicia carthaginesis (Hierba del Susto) El resultado obtenido del extracto hidroalcohólico de hojas, tallo y corteza de Justicia carthaginesis (Hierba del Susto) frente a la molécula del ADN, redujo el pico de este en un 10.9253 ± 2.07, indicando que el extracto tiene una pequeña actividad, la cual no debe ser descartada. De acuerdo a este dato debe recomendarse con precaución, para los usos que se le atribuyen como es espasmos, ansiedad y tensión psíquica nerviosa (con el nombre genérico de “susto”, se conocen los síntomas anteriores, de allí el nombre vulgar de la especie). Las hojas y tallos contienen alcaloides y taninos.
103
Área Estándar de ADN 23 de abril 1780.3594 1778.9739 1809.0397 1800.4843
Área de ADN + Extracto de Tomate 1592.2753 1636.5383 1619.7786 1576.0951
104
ANÁLISIS Lycopersicum esculentum (Tomate) El resultado del análisis obtenido al extracto de Lycopersicum esculentum (tomate) frente a la molécula del ADN, fue de 10.3759 % ± 1.48, indicando que el extracto tiene una actividad , entre los usos están: Para el tratamiento de hepatitis, conjuntivitis, antiséptico, vulnerario, acción antifúngica y como alimento pero no hay que descartar este dato. Además nos confirma la probabilidad de la no toxicidad de la planta. Por lo tanto Lycopersicum esculentum (Tomate) no representa ningún a las concentraciones ensayadas. El fruto contiene alcaloides, taninos y saponinas.
105
Área Estándar de ADN 23 de abril 1780.3594 1778.9739 1809.0397 1800.4843
Área de ADN + Extracto de Amatillo 1571.8635 1613.7747 1624.0971 1620.7529
106
ANALISIS Rauwolfia tetraphyla (Amatillo) Para el bioensayo se utilizó el extracto hidroalcohólico de toda la planta de Rauwolfia tetraphyla (Amatillo), reduciendo el pico del cromatógrama en un 10.2950 ± 1.35 % un valor que indica que tiene actividad, a pesar que la planta es utilizada para disentería, malaria y tos la revisión bibliografía reporta toxicidad a 500 ppm (4) la cual posiblemente se deba a otros mecanismos de acción y no por interacción con ADN. Las hojas, tallo y corteza contienen alcaloides, glicósidos cardíacos y taninos.
107
Área Estándar de ADN 23 de Abril 1780.3594 1778.9739 1809.0397 1800.4843
Área de ADN + Extracto de Higuerillo 1513.87.92 1610.2290 1628.9163 1692.3807
108
ANALISIS Ricinus communis (Higuerillo) El extracto hidroalcohólico de Hojas, Tallo y Corteza de Ricinus communis interacciona con la molécula de ADN reduciendo el pico en un 10.0869% ± 4.12 y no se considera citotóxica teniendo en cuenta el parámetro del 30%. Algunos de sus usos contra asma, estreñimiento, cefalea, dolor de muela, quemaduras, reumatismo, se debe tener en consideración que todos los usos internos deben tener restricciones ya que al ser administrada por vía oral en seres humanos, puede provocar toxicidad general. El extracto de hojas tallo y corteza contienen alcaloides, taninos y sesquiterpenlactonas.
109
Área Estándar de ADN 2 de Mayo 1832.5781 1854.7057 1882.1232 1838.3114
Área de ADN + Extracto de Acapate 1638.4258 1651.3468 1687.1994 1683.2130
110
ANÁLISIS Erygium foetidum (Acapate) El extracto hidroalcohólico de hojas y tallo de Erygium foetidum (Acapate) frente a la molécula del ADN, redujo el pico en un 10.1419 ± 1.27, lo que indica que aunque no llega al 30%, no se puede descartar el dato. Esta planta es utilizada en enfermedades del hígado, tiroides y obesidad, contra enfermedades venéreas y úlceras, antifúngica y antibacteriano, sin embargo no debe de abusarse de ella. El extracto de hojas y tallo contiene sesquiterpenlactonas.
.
111
Área Estándar de ADN 2 de mayo 1832.5781 1854.7057 1882.1232 1838.3114
Área de ADN + Extracto de Tempate 1660.2738 1669.6028 1665.5728 1694.8571
112
ANALISIS Jatropha curcas (Tempate) El
resultado obtenido del extracto hidroalcohólico de hojas y tallo de Jatropha curcas
(Tempate), frente a la molécula del ADN, redujo el pico de este en un 9.7355 ± 0.89%, indicando que el extracto tiene actividad pero, por muy pequeño que sea el porcentaje obtenido no se puede descartar el dato. Es muy usada oralmente para diarreas, dolor de estómago, estreñimiento, enfermedades venéreas, dolor de muelas, gota, lepra, reumatismo, quemaduras de sol, se recomienda usarse con precaución. El extracto de tallos y hojas contienen alcaloides, flavonoides, taninos, sesquiterpenlactonas y saponinas.
113
Área Estándar de ADN 2 de mayo 1832.5781 1859.7057 1882.1232 1838.3114
Área de ADN + Extracto de Salvia Santa 1577.1032 1692.7479 1715.1225 1727.4253
114
ANALISIS Lippia alba (Salvia Santa) El extracto hidroalcohólico del tallo y hojas de Lippia alba redujo el pico del ADN en 9.4375% ± 3.77, por lo que se considera que tiene actividad contra la molécula de ADN. Debido a su uso masivo en varios países (Panamá, Guatemala, Colombia, Costa Rica) y en especial El Salvador, para tratar distintas afecciones como asma, catarro, trastornos digestivos; como antiespasmódico, sudorífico y emenagogo; es necesario alertar o dar a conocer a la población los posibles efectos que esta planta puede causar en el organismo al aumentar su dosificación. El dato obtenido nos indica que la planta no mostró citotóxicidad considerable, pero y por muy pequeño que sea, algo nos está indicando; la población debe tener cierta precaución al momento de utilizar la planta para fines terapéuticos. El extracto de hojas y tallos contienen taninos, alcaloides y flavonoides.
115
Área Estándar de ADN de 23 de Abril 1780.3594 1778.9739 1809.0397 1800.4843
Área de ADN + Extracto de Alhucema 1615.2242 1636.7953 1699.4100 1617.5232
116
ANÁLISIS Achillea millefolium (Alhucema) El extracto hidroalcohólico de las semillas de esta planta redujo el pico del ADN 8.3634% ± 2.19, no hay que obviar el resultado obtenido, ya que nos indica una interacción con la molécula de ADN. Ese algo es una posible citotóxicidad que pueda poseer la planta si se aumenta en dosificación; Se debe tomar en cuenta el uso que le dan las personas en especial las mujeres que están en períodos de lactancia, ya que las utilizan por las propiedades que presentan como digestivas, depurativa, emenagoga y antiespasmódica. Aunque el resultado de interacción de ADN de Achillea millefolium no mostró actividad se debe considerar utilizarlo con mucha precaución. Las hojas contienen alcaloides, flavonoides y sesquiterpenlactonas
117
Área Estándar de ADN de 23 de Abril 1780.3594 1778.9739 1809.0397 1800.4843
Área de ADN + Extracto de Izote 1702.6173 1608.1223 1619.8779 1639.9026
118
ANÁLISIS Yucca elephantipes (Izote) Según la bibliografía esta planta contiene sustancias precursoras de la cortisona y sustancias estrogénicas, además pruebas de laboratorio confirman la presencia de saponinas, taninos, alcaloides, glicósidos cardiotónicos, triterpenos que están presente en las partes de la planta utilizada como lo son hojas y tallo. Entonces debido a esta variedad de metabolitos que contiene, y por ser una planta muy utilizada como antitusivo y expectorante sobre todo en la población infantil se hace necesario utilizar esta planta con precaución. Esto se debe al resultado obtenido del análisis del bioensayo interacción con ADN cuyo resultado es de 8.3415% ± 2.35 de reducción del pico de ADN, el resultado obtenido muestra que la planta posee cierto grado de toxicidad, por lo cual debe ser utilizada con mucha precaución. El extracto de hojas y tallos contienen taninos, alcaloides y saponinas.
119
Área Estándar de ADN de 23 de Abril 1780.3594 1778.9739 1809.0397 1800.4843
Área de ADN + Extracto de Copinol 1686.7349 1608.9396 1686.4636 1627.2564
120
ANÁLISIS Hymenea courbaril (Copinol) El extracto hidroalcohólico de fruto de Hymenea courbaril demostró actividad al reducir a 7.7992% ± 2.24 el pico de ADN, por lo que no se debe de abusar de esta planta, ya que los usos más comunes que se le da es como antidiarreico afección que se presenta continuamente en la población, sobre todo infantil. Se puede decir que a esta concentración ensayada, el fruto no presenta ningún riesgo de toxicidad y puede recomendarse en niños para controlar la diarrea. El fruto contiene sesquiterpenlactonas, saponinas, flavonoides y antraquinonas.
121
Área Estándar de ADN 2 de mayo 1832.5781 1854.7057 1882.1232 1838.3114
Área de ADN + Extracto de Mirto 1694.7377 1730.8352 1741.7393 1715.3319
122
ANALISIS Murraya paniculata (Mirto) Este extracto hidroalcohólico de Hojas y Tallo de Murraya paniculata no interacciona fuertemente con el ADN ya que redujo el pico en un 7.01403% ± 1.01, por tanto esta planta debe emplearse de todas maneras con precaución ya que su principal uso es en odontología (para dolor de muelas), como enjuague. El extracto etanólico de hojas y tallos contienen alcaloides, sesquiterpenlactonas, glicósidos cardiotónicos y taninos.
123
Área Estándar de ADN 20 de Marzo 1797.1593 1750.1520 1731.0305 1740.2909
Área de ADN + Extracto de Curarina 1592.1204 1657.2039 1680.3764 1659.0109
124
ANALISIS Sanseveria quinensis (Curarina) Aunque su uso en nuestro país generalmente se ve reducido para el tratamiento de mordeduras de serpiente y otro tipo de animales ponzoñosos, no hay que olvidar el resultado obtenido del extracto hidroalcohólico frente a la molécula del ADN, que redujo el pico de este en un 6.1059% ± 2.17, indicando que el extracto una interacción pero, por muy pequeño que sea el porcentaje obtenido no se puede descartar el dato. El extracto de hojas y tallos contienen taninos, saponinas y sesquiterpenlactonas.
125
Área Estándar de ADN 26 de Marzo 1756.8707 1778.9335 1838.3114 1848.8212
Área de ADN + Extracto de Hierba del Toro 1698.5006 1754.5602 1760.4761 1623.5480
126
ANÁLISIS Tridax procumbens (Hierba del toro) El extracto hidroalcohólico de las hojas y tallo de Tridax procumbens redujo el pico del ADN en un 5.2982% ± 3.56 este dato nos indica que el extracto tiene una actividad, por muy pequeña que sea se debe tener en cuenta, por ello y a la variedad de usos que tiene esta planta como en afecciones respiratorias y afecciones gastrointestinales se hace necesario que la población haga uso de esta planta pero en concentraciones no elevados. Esta planta también es utilizada como diurética, siempre y cuando no se eleve la cantidad utilizada para tal fin, se puede recomendar su utilización. El extracto etanólico de hojas y tallo contiene flavonoides, taninos y saponinas.
127
Área Estándar de ADN 2 de mayo 1832.5781 1854.7057 1882.1232 1838.3114
Área de ADN + Extracto de Caulote 1757.7949 1749.6357 1779.7098 1815.9163
128
ANÁLISIS Guazuma ulmifolia (Caulote) Para el bioensayo se utilizó el extracto hidroalcohólico de las hojas y tallo de Guazuma ulmifolia, reduciendo el pico de ADN a un 4.1668 ± 1.687%, valor que indica una actividad, pero este dato no puede ser despreciado, porque en un momento determinado y en concentraciones mayores puede producir efectos citotóxicos severos, sobre todo porque es una planta que es utilizada para tratar diversas afecciones ya sea del hígado, riñones, asma, bronquitis, fiebre, gonorrea, disentería y diarreas en niños. El extracto etanólico de hojas y tallos contiene flavonoides, taninos y saponinas.
129
Área Estándar de ADN 26 de Marzo 1848.8212 1756.8707 1778.9335 1838.3114
Área de ADN + Extracto de Hierba Mora 1753.9675 1788.7104 1755.2859 1798.4259
130
ANÁLISIS Solanum nigrum (Hierba mora) Para el bioensayo se utilizó el extracto hidroalcohólico de hojas y tallo de Solanum nigrum (Hierba mora), mostró una baja actividad frente a la molécula de ADN, reduciendo el pico del cromatograma en un 1.7065 ± 1.26 % un valor que es muy bajo, pero tampoco puede descartarse la posibilidad que en un momento determinado, si se usan dosis mayores de las normales podría ascender el valor antes mencionado. Entre los usos de la planta (Hojas) se ha demostrado tener propiedades antimicrobianas, antimicóticas, también contienen minerales entre estos: Potasio, Calcio, Riboflavina, Tiamina, Ácido Ascórbico y hierro . Las madres en estado de preñes tienden a consumir la hoja de la planta como alimento. Por lo que en este período se recomienda sus uso en concentraciones menores. Las hojas y tallos contienen alcaloides, taninos y sesquiterpenlactonas.
131
Área Estándar de ADN 26 de Marzo 1848.8212 1756.8707 1778.9335 1838.3114
Área de ADN + Extracto de Carao 1943.3050 1963.1953 1929.8718 1912.4978
132
ANÁLISIS Cassia grandis (Carao) El extracto hidroalcohólico del fruto de Cassia grandis no redujo el pico del ADN, cuyo resultado no tiene efecto citotóxico sobre la molécula de ADN. Debido a la variedad de usos que tienen para diferentes patologías como antidiarreico, antiparasitario, astringente, expectorante y para la anemia es importante decir que la población puede hacer uso de esta planta sin que se llegue a tener efectos citotóxicos, toda vez y cuando no se abuse en la cantidad utilizada. El fruto contiene alcaloides, antraquinonas, glicósidos cardiotónicos, flavonoides y taninos.
133
Área Estándar de ADN 26 de Marzo 1848.8212 1756.8707 1778.9335 1838.3114
Área de ADN + Extracto de Chula 1950.6873 2018.8715 2076.7463 2090.3790
134
ANALISIS Catharantus roseus (Chula) La bibliografía que a partir de Catharantus roseus se han aislado 90 alcaloides, entre los cuales se tiene la vinblastina y la vincristina, las cuales son de mucha importancia debido a que presentan actividad antileucémica, sin embargo estos dos componentes se encuentran en pequeñas cantidades en la planta. La vinblastina se utiliza, sobre todo en el tratamiento de leucemia infantil. El extracto hidroalcohólico de hojas y tallo mostró inactividad frente a la molécula de ADN, la planta deberá utilizarse con precaución, solamente en gárgaras, no para uso interno. El extracto etanólico de hojas tallos y flores contiene alcaloides, glicósidos cardiotónicos, taninos y sesquiterpenlactonas.
135
Área Estándar de ADN 20 de Marzo 1797.1593 1750.1520 1731.0305 1740.2909
Área de ADN + Extracto de Manzano Rosa 2216.8036 2128.0949 2277.8654 1996.4383
136
ANÁLISIS Syzygium jambos (Manzano rosa) La bibliografía reporta diversos usos que la población le otorga a la planta, tal como la corteza utilizada como emetocatártico, las hojas usadas principalmente como tónica, expectorante y diurético, por tanto las pruebas de laboratorio confirman la no toxicidad de esta planta, donde el extracto hidroalcohólico de Hojas, Tallo y corteza no redujeron el pico del cromatograma de ADN. Por lo tanto puede ser utilizada por la población en sus diferentes formas de aplicación y administración. El extracto etanólico de hoja, tallo y corteza contiene alcaloides, flavonoides, taninos y sesquiterpenlactonas.
137
Área Estándar de ADN de 23 de Abril 1780.3594 1778.9739 1809.0397 1800.4843
Área de ADN + Extracto de Grama 1793.4463 1823.8769 1826.6060 1841.9411
138
ANALISIS Paspalum notatum (Grama) El extracto hidroalcohólico de hojas, tallo y raíz de Paspalum notatum (Grama) no redujo el pico del ADN, cuyo resultado no presenta efecto citotóxico sobre la molécula de ADN. Debido a la variedad de usos que tiene para curar o prevenir diferentes patologías tales como diurético y cálculos renales, la población puede hacer uso de esta planta sin que se llegue a tener efectos citotóxicos, toda vez y cuando no se abuse de la dosis establecida. El extracto etanólico de la planta contiene alcaloides y taninos.
139
Área Estándar de ADN 26 de Marzo 1848.8212 1756.8707 1778.9335 1838.3114
Área de ADN + Extracto de Sihuapate 1751.6136 1808.6542 1901.9625 1959.4949
140
ANALISIS Pluchea odorata (Siguapate) El extracto hidroalcohólico de Pluchea odorata (Siguapate) de Hojas Tallo y Corteza de esta planta no redujo el pico del ADN, valor que nos indica que no es tóxico, lo que la población puede continuar su uso, sin ningún peligro, por supuesto siempre y cuando no aumente la dosis normalmente usada. La bibliografía reporta los siguientes usos de las partes antes mencionadas: contra espasmos, ansiedad, además “cuando los niños los han asustado se les prepara un cocimiento de hojas de la planta se les da a beber y luego baños”. Se debe tomar en cuenta el uso que le dan las personas en especial las mujeres que están en períodos de lactancia. Aunque el resultado de interacción de ADN no es tóxico se debe utilizar
con mucha
precaución, además la población suele a veces mezclar diferentes plantas para tratar sus enfermedades. El extracto etanólico de hoja, tallo y corteza contiene alcaloides, flavonoides y taninos
141
Área Estándar de ADN de 23 de Abril 1780.3594 1778.9739 1809.0397 1800.4843
Área de ADN + Extracto de Granado 1865.0060 1961.2138 2049.1599 2054.4356
142
ANALISIS Punica granatum (Granado) El extracto hidroalcohólico del hojas, tallo y corteza de Punica granatum (Granado) no redujo el pico del ADN, por lo que se considera inactivo, nos indica que la planta tampoco mostró citotóxicidad, su empleo como antidiarreico, antiparasitario, propiedades que se le ameritan a la decocción de tallos y hojas de dicha planta, utilizada principalmente en menores de edad, nos indica que se puede hacer uso de ésta planta sin ningún peligro, tal como lo ha seguido haciendo, siempre y cuando se mantenga la dosis o concentración usada. El extracto etanólico de hojas, tallo y corteza contiene alcaloides, taninos y sesquiterpenlactonas
143
+
Área Estándar de ADN 26 de Marzo 1848.8212 1756.8707 1778.9335 1838.3114
Área de ADN + Extracto de Gengibre 1904.9859 1893.1253 1874.7576 1879.9653
144
ANALISIS Zingiber oficinale (Gengibre) Para el bioensayo se utilizó el extracto hidroalcohólico de rizoma de Zingiber oficinale, quien no mostró reducción del pico del cromatograma, valor que indica ser inactivo, y que no puede producir efectos citotóxicos, sobre todo porque es una planta que es utilizada para tratar diversas afecciones como antipirético, antiinflamatorio, analgésico. Por lo tanto aunque nos dice que no es citotóxico, la población debe utilizar esta planta con precaución. El extracto etanólico de la raíz contiene alcaloides, flavonoides, taninos y sesquiterpenlactonas.
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CUADRO Nº 8 CUADRO RESUMEN DE RESULTADOS DE ANALISIS DEL BIOENSAYO INTERACCION CON AND EXTRACTOS VEGETALES QUE REDUJERON EL PICO DE AND Especie Vegetal
Porcentaje de Reducción De AND ( X % ± S ) Ocimun basilicum (Albahaca) 27.1583 ± 4.61 Chenopodium ambrosioides (Epazote) 21.0691 ± 1.26 Bursera simarouba (Jiote) 15.4818 ± 2.60 Justicia carthaginensis (Hierba del susto) 10.9253 ± 2.07 Lycopersicum esculentum (Tomate) 10.3759 ± 1.48 Rauwolfia tetraphyla (Amatillo) 10.2950 ± 1.35 Ricinus communis (Higuerillo) 10.0869 ± 4.12 Eryngium foetidum (Acapate) 10.1419 ± 1.27 Jatropha curcas (Tempate) 9.7355 ± 0.89 Lippia alba (Salvia santa) 9.4375 ± 3.77 Achillea millefolium (Alhucema) 8.3634 ± 2.19 Yucca elephantipes (Izote) 8.3415 ± 2.35 Hymenae courbaril (Copinol) 7.7992 ± 2.24 Murraya paniculata (Mirto) 7.01403 ± 1.01 Sanseveria quineensis (Curarina) 6.1059 ± 2.17 Tridax procubens (Hierba del toro) 5.2982 ± 3.56 Guazuma ulmifolia (Caulote) 4.1668 ± 1.68 Solanum nugrum (Hierba mora) 1.7065 ± 1.26 EXTRACTOS VEGETALES QUE NO REDUJERON EL PICO DE ADN Cassia grandis (Carao) No tienen efecto Catharanthus roseus (Chula) No tienen efecto Syzygium jambos (Manzana rosa) No tienen efecto Paspalum notalum (Grama) No tienen efecto Pluchea odorata (Siguapate) No tienen efecto Punica granatum (Granado) No tienen efecto Zingiber officinale (Jengibre) No tienen efecto Doxorrubicina (*) ADN /Doxorrubicina (1 : 1) 80.4875 ± 6.6979 (*) Sustancia patrón de bioactividad positiva
146
3.5 RESULTADOS OBTENIDOS DE LA INTERACCIÓN DE LOS EXTRACTOS Y LA MOLÉCULA DEL ADN. La investigación de nuevos métodos instrumentales de análisis, ha hecho posible llevar a cabo este tipo de investigación, obteniéndose datos confiables en la interacción de los extractos con la molécula de ADN. de las 25 plantas, 18 (el 72%) redujeron el pico en el cromatograma y el resto no tuvo efecto alguno. Cabe mencionar que ninguno de los extractos redujeron el pico más del 30%, el extracto que más cerca lo redujo fue el de 27.1583 ± 4.61% y correspondió a la albahaca. Por lo tanto ningún extracto es considerado citotóxico, ya que se considera así cuando el pico de ADN es reducido por más del 30%, aunque los valores obtenidos son menores del 30%, se debe seguir observando, debido a que influye la concentración de los metabolitos presentes en las partes de las plantas recolectadas diferentes lugares del país.
147
CAPITULO IV CONCLUSIONES
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CONCLUSIONES Ningún extracto es considerado citotóxico propiamente dicho, ya que se considera así cuando el pico de ADN es reducido por más del 30%, pero sin embargo se debe tener en cuenta las especies que redujeron el área del pico del cromatograma de ADN, ya que hay que tomar en cuenta para ello: parte de la planta tratada (pueden ser: hojas, flores, frutos, tallo, corteza y/o raíz), ubicación geográfica y tipo de suelo; que influye en la concentración de los metabolitos presentes en la planta, por lo que se debe seguir su estudio, debido a que poseen cierta actividad aunque sea en menor grado, por lo tanto, no hay que descártalos.
La bioactividad que presentaron los extractos de las plantas con la molécula de ADN, pudo deberse al sinergismo de los principios activos como taninos, glicósidos cardíacos, saponinas, flavonoides, tal es el caso de extracto de Ocimun basillicum (albahaca), que reporta como carcinógeno dos compuestos de el aceite esencial: safrol y estragol; sí se aumentara su dosificación puede llevar a un daño para la persona que la consume.
Los extractos vegetales que no mostraron citotoxicidad hacia la molécula de ADN (por el método de Pezzuto) no presentan ningún riesgo sobre la salud de las personas, no quiere decir que la población haga un abuso de su administración y/o dosificación al utilizarlos medicinalmente, esto no significa que puedan poseer toxicidad bajo otros mecanismos de reacción.
149
Los resultados obtenidos de este trabajo son importantes como información científica, para orientar posteriores estudios que ayuden a establecer las bases científicas sobre la toxicidad de las plantas, para ser agregados a la monografía de cada una de ellas y fomentar el adecuado uso de estas. Este estudio se a desarrollado en la Facultad de Química y Farmacia de la Universidad de El Salvador, ya que en muchas de las especies en estudio no existe información sobre toxicidad.
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CAPITULO V RECOMENDACIONES
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RECOMENDACIONES
Al hacer uso de los siguientes plantas; Albahaca, Epazote y Jiote, se recomienda no usarlas en concentraciones altas, independientemente de la vía de administración que utilice, en especial, la especie de Ocinum basilucum (Albahaca) ya que es muy utilizada en el arte culinario y medicinalmente. La población tiene que utilizar adecuadamente las plantas que tuvieron un valor menor del 30% de reducción del área del pico de ADN, hasta que se realicen estudios posteriores, como el fraccionamiento de extractos y aislamiento de los principios activos ó metabolitos secundarios, que confirmen cual de ellos incide en la disminución de pico de ADN.
Es necesario realizar estudios mas profundos de Ocimum bacilucum (Albahaca), que incluyan fraccionamiento y posible aislamiento de moléculas activas que fueron las responsables de interacción con la molécula de ADN reduciendo considerablemente el área del pico de ADN, así como tambien los demás extractos que redujeron el pico del ADN y profundizar, sobre el análisis fitoquímico cualitativo y cuantitativo de los metabolitos que las plantas contienen.
Se recomienda realizar otros estudios como el de Resonancia Magnética Nuclear para identificar los principios activos del fraccionamiento de los extractos, así determinar las posibles estructuras, además realizar otros bioensayos que determinan actividad antitumoral y llevar un
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estudio clínico de los extractos que presentaron mayor reducción del pico del área del cromatograma
Educar a la población sobre el uso empírico de las plantas medicinales en los hospitales, clínicas y al público en general, sobre el uso de estas plantas por medio de libros, revistas, boletines y charlas.
Continuar los estudios con el método de Pezzuto de interacción con ADN por Cromatografía Líquida de Alta Resolución, el cual es un método de análisis confiable y preciso, ya que posee alta sensibilidad y permite un criterio de detección sobre la influencia del extracto en la molécula de ADN, y que da rápidos resultados. Por lo anterior es necesario promover las investigaciones de todas aquellas plantas que la población les adjudica una actividad antitumoral o para el cáncer.
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BIBLIOGRAFIA
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BIBLIOGRAFÍA Libros 1. BELLANTI J.A, Imnunologia, Nueva Edición Interamericana, S.A. de C.V., 3ª Edición, 1986. 2. B.CHARLES, C. THOMAS . “Medicinal Plants of Middle América”. Pulishe, Springfied. Illinois, United State of America. 1996 3. BERKOW, ROBERT, BEERS, MARK H; FLETCHER, ANDREW, “Manual Merk de la Información Médica para el Hogar”, Editorial Grupo Océano, S.A. 1999 4. CACERES, ARMANDO. “Plantas de uso medicinal en Guatemala”. 1era. Edición, Vol. 1, Editorial Universitaria, dirección general de extensión, Guatemala, C.A. 1996. 5. DOMINGUEZ, Xorge A. Métodos de Investigación Fitoquímica.¨1ª Edición, Editorial Limusa, México D.F.,1973. 6. EVANS, Willians Charles “FARMACOGNOSIA”.Editorial Interamericana,S.A. de C.V. México, D.F. 3ª Edición 7. FARMACOPEA VEGETAL CARIBEÑA. Tramil (programa) 1era. Edición, Ediciones Emile Désormeaur-lionel-Gemosen-Robineau, Santo Domingo, 1997. 8. FUNDACIÓN CENTRO NACIONAL DE LA MEDICINA POPULAR TRADICIONAL, Manual de Plantas Medicinales para El Promotor de Medicina Preventiva y Salud Comunitaria. Estelí, Nicaragua, Junio de 1998.
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9. GUERRERO DE MENA, María Gladys,“Obtención y Aprovechamiento de Extractos Vegetales de la Flora Salvadoreña”2da. Edición, Editorial Universitaria, Universidad de El Salvador, San Salvador, EL Salvador, 1994. 10. GUPTA, MAHABIR P. “270 Plantas Medicinales Iberoamericanas”. 1era. Edición, Impreso en Colombia en los talleres de Editorial Presencia Lta., Santa Fe, Bogotá, 1995 CYTED (Centro y Tecnología para el desarrollo). 11. LAGOS, J. A. ¨Compendio de Botánica Sistemática¨, 2ª edición, Dirección de Publicaciones del Ministerio de Educación, San Salvador, El Salvador, 1983. 12. LOCK DE UGAZ, Olga. ¨Investigación Fitoquímica¨ , 2ª edición, Pontíficia Universidad Católica del Perú, Fondo Editorial, Lima Perú, 1994. 13. “Methods in Plant biochemistry Assays for Bioactivity”, Institute of Pharmacognosy and Phytochemistry, 1ªt Edition, Vol. 6, University of Lausanne, Switzerland, 1991. 14. MURRAY, ROBERT K; GRANNER, DARYL K, “Bioquímica de Harper”, Editorial Manual moderno, 12º edición. 15. PLANTER. ¨Obtención y Aprovechamiento de Extractos Vegetales de la Flora Salvadoreña”, 1a edición. Volumen 1, Universidad de El Salvador, El Salvador: Editorial Universitaria, 1989. 16. PLANTAS MEDICINALES COMUNES DE HONDURAS, UNAH, 1985 17. STITES, D., TERR, I., “Inmunologia Básica y Clínica” Editorial El Manual Moderno, S.A. de C.V., 7ª Edición, 1993.
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Tesis 18. CEA LEMUS RENÉ OSWALDO,“Determinación de la Actividad Citotóxica de Extractos de 25 Especies Vegetales de Uso Materno Infantil Mediante Ensayo Simple con Artemia salina”, Facultad de Química y Farmacia, Universidad de El Salvador, El Salvador, 2002. 19. GALLEGOS GONZALEZ CLAUDIA IVETTE, “Determinación de la Bioactividad de 26 Especies de la Flora Salvadoreña Mediante el Bioensayo Interacción con ADN por Cromatografía Líquida de Alta Resolución”. El Salvador: Facultad de Química y Farmacia, Universidad de El Salvador, El Salvador 2000. 20. PABLO CEA ANA GUADALUPE, “Determinación de la Actividad Larvicida de los Aceites Esenciales de 15 Especies Vegetales Contra Aedes aegypti. El Salvador: Facultad de Química y Farmacia, Universidad de El Salvador, El Salvador, 2001. 21. SALGADO SANTOS, RENÉ MAURICIO “Estudio Etnobotánico y Farmacognósico de 15 Plantas Medicinales en El Municipio de Santo Tomas”. Universidad de El Salvador, 1994.
Revistas 22. GUPTA, M. P.¨Screening of Panamian Medicinal Plants for Brine Shrimp Toxicity, Crown Gall Tumor Inhibition, Citotoxicity an DNA Intercalation¨, International Journal of Pharmacognosy, Vol. 34, No 1, 1996.
157
23. PEZZUTO, J.M. ¨DNA as Affinity Probe Useful in the Detection an Isolation of Biologically Active Natural Products¨. Journal of Natural Products. Vol. 54, Nº 6. 1991.
24. SOLIS, PABLO. ¨Monitoreo de las Plantas Medicinales Panameñas para la Inhibición Tumoral de Vesícula Biliar, Citotoxicidad e Interacción con ADN¨. Panamá.1996.
Internet 25. http://www.tapir.org/weeds/big/4.gif 26. http://www.botany.hawaii.edu/faculty/carr/tri_pro.htm 27. http://www.coepark.parks.ca.gov/wildflowers/white/solanum-nigrum.html 28. http://translate.google.com/translate?hl=es&sl=en&u=http://www.huis.hiroshimau.ac.jp/~nomura/I/inuhoz.html&prev=/search%3Fq%3Dsolanum%2Bnigrum%26hl%3Des
29. http://fets3.freetranslation.com:5081/?Sequence=core&Language=English%2FSpanish&Url =www.rain-tree.com/mutamba.htm 30. http://www.rain-tree.com/Plant-Images/Guazuma-ulmifolia6.jpg
LA PRENSA GRAFICA. REVISTA DOMINICAL. LAS PLANTAS TOXICAS DE EL SALVADOR. Domingo 10 de marzo de 2002, San Salvador, El Salvador, C.A. Año LXXXVI No 2143 No de Páginas 6/25.
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ANEXOS
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ANEXO 1 MONOGRAFIA DE SIETE ESPECIES VEGETALES
Achillea millefolium Nombre común: Alhucema, Cola de ardilla, Milhojas, Plumajillo. Familia: Compuestas (4)
SINONIMOS Achillea lanulosa Nutt., A. pecten-veneris Pollard HABITAT Planta nativa del norte de Europa y Asia, adaptada a climas templados del mundo. En el continente americano se encuentra naturalizada en climas templados del norte entre 1,800 2,500 msnm. En Guatemala se cultiva en jardines de Chimaltenango, Guatemala, Huehuetenango, Jalapa, Quetzaltenango, Sacatepéquez, San Marcos, Sololá y Totonicapán.( 4 ) DESCRIPCION BOTANICA Grupo complejo de subespecies e individuos de alto polimorfismo. Hierba perenne de 20-80 cm de alto, rizomas ramificadas rastreros, roseta basal de hojas y tallos. Hojas alternas, bipinnadas, plumosas, finamente disecadas, 4-10 cm de largo, aromáticas y amargas.
160
Capítulos en umbelas planas, flores blancas o rosadas pequeñas, en cabezas de 4-6 mm de ancho en pequeños racimos densos de flores amarillas.
HISTORIA Antiguamente el héroe griego Aquiles conoció sus propiedades del centauro Quirón, por lo que en la guerra de Troya (1,200 A.C.) la usaba para contener las hemorragias y curar a sus soldados heridos en batalla e incluso al rey Telefos, de donde deriva su nombre; otros indican que la leyenda dice que Aquiles fue sanado por su madre Tetis con las hojas de la planta. La forma tradicional de predecir el futuro mediante el libro chino sagrado I Ching, era interpretando la posición en que quedaban 50 tallos secos de la planta. Dioscórides indica que “es muy útil esta hierba contra las efusiones de sangre, contra las llagas recientes, antiguas y enfistoladas”; por su propiedad hemostática y vulneraria ganó una sólida reputación para tratar heridos de guerra, por lo que se le dió el nombre de “Herba militaris”. se menciona en varios antidotarios desde el S. IX. En los países nórdicos reemplazaba al lúpulo en la fabricación de cerveza; en el S. XVI las semillas se usaban para conservar los vinos. Es probable que Xímenez se refiera a ella como Tlanquequetzal. La United State Pharmacopeia la incluye desde 1836.( 4)
COMPOSICION QUIMICA Las hojas y flores contienen aceite esencial y graso, glúcosidos, alcaloides, aldehídos, carbohidratos (alditoles, ciclitoles, sacáridos), minerales, poliaminas, esteroles, triterpenos,
161
amargos y taninos. El aceite esencial contiene al menos 42 compuestos entre alcaloides y flavonoides, contiene además
allo-ocimeno, apigenol, azuleno, borneol, acetato de bornilo,
ácido butírico, ∆-cadineno, canfeno, alcanfor, cariofileno, camazuleno, 1,8-cineol, copaeno, aldehído cumúnico, p-cimeno, eugenol, farneseno, furfural, humuleno, luteol, isoartemisia cetona, limoneno, mentol, mirceno, α y β-pineno, salineno, sequiterpenlactonas, α-terpineno; ácidos salicílico, linoléico, oléico, cerótico, mirístico y palmítico; aminoácidos (alanina, ácido glutámico, histidina, leucina y lisina). Se han aislado más de 120 compuestos. El análisis proximal de 100 g de la planta completa contiene: proteínas (14.4 g), grasa (1.8 g), carbohidratos totales (71.3 g), fibra (20.1 g) y ceniza (12.5 g); 100 g de semilla secas contiene proteína (33.8 g) y grasa (25.4 g) Las hojas frescas contienen 0.058 % de ácido ascórbico y las hojas secas 0.31 %.(4)
USOS MEDICINALES La infusión de hojas y flores se usa por vía oral para calmar los nervios, depurar la sangre, dolor de muelas, afecciones digestivas (anorexia, cólico, diarrea, disentería, gastritis, inapetencia, indigestión, flatulencia, hemorragia interna) y respiratorias (catarro, fiebre, influenza, pleuresía, pneumonía, resfrío, sarampión, tos, tuberculosis); epilepsia, hipertensión, histeria, reumatismo e incontinencia urinaria. Tópicamente se usa la infusión en compresas o lavados para tratar heridas, hemorroides, exantema, fístulas, golpes, llagas, quemaduras, raspones, úlceras, leucorrea, vaginitis y ojos
162
inflamados; la infusión o el jugo en cataplasma, ungüento y linimento se usa para tratar condiloma, dermatitis, cáncer, induraciones, verrugas y tumores; el aceite o decocción se usan para evitar la caída del cabello. Se le atribuye propiedad analgésica, antihelmíntica, antipirética, antiséptica, aromática, astringente, carminativa, catártica, diaforética, desinflamante, digestiva, diurética, emenagoga, espasmolítica, estimulante, estomáquica, expectorante, febrífuga, hipotensora, laxante, sudorífica, tónica, vulneraria, antiescabiótica, antiséptica, antitusígena y hemostática. Por su acción antipirética, antiséptica, colagoga diaforética, diurética, espasmolítica e hipotensora está indicada por vía oral para tratar fiebre, catarro, dismenorrea, disentería, espasmos digestivos, hipertensión e insuficiencia hepática. Se recomienda en dosis de 250-500 cc/día de infusión de 36%; 3-9 ml/día de extracto fluido 1 : 1 en alcohol 25%; y 60-90 gotas/día de tintura 1 : 5 en alcohol al 45%. Por su acción antiséptica, astringente y desinflamante está indicada en llagas, úlceras, quemaduras, hemorroides; en dosis de 15-30 g/l de infusión en compresas 2-3 g/día del extracto fluido, jugo de la planta fresca o ungüentos de la planta fresca.( 4 ) ACTIVIDAD BIOLOGICA Estudios antimicrobianos demuestran que la tintura de hojas es inactiva contra Candida albicans, Escherichia coli, Pseudomona aeruginosa y Staphylococcus aureus. El extracto diclorometámico se activo contra Bacillus subtilis, pero inactivo contra Candida albicans, Klostridium pneumoniae y Staphylococcus aureus. Los extractos inhiben la germinación de semillas, son antibacterianos y
163
larvicidas de mosquitos. El extracto y aceite esencial son utilizados como insecticidas en Dermacentor marginatus, Haemaphysalis punctata, Ixodes redikorzevi, Musca domestica, Rhipicephalus rossicus; el aceite contiene sustancias que simulan la respuesta inducida por feromonas de cucaracha macho, aunque este hallazgo no ha tenido aplicación. Estudios farmacológicos demuestran que el extracto acuoso induce un ligero aumento de la diuresis en la rata. El extracto etanólico de la planta seca tiene actividad sobre el Sistema Nervioso Central (SNC) y cardiovascular; el extracto de la planta fresca no tiene actividad analgésica en ratón, por la prueba de la contorsión por peróxido de benzoilo. El extracto acuoso tiene actividad hemostática y antiinflamatoria.( 4 )
TOXICIDAD El polen de las flores, puede ser peligroso para personas alérgicas, el uso prolongado puede causar dermatitis y fotodermatitis; por pruebas de parche dérmico se ha demostrado reacción cruzada con otros pólenes de la familia Asteraceae; es tóxico en terneros. Es considerado generalmente como no tóxico, la Administración de Drogas y Alimentos de los EEUU (FDA) aprueba su uso únicamente en bebidas alcohólicas. En dosis elevadas o por tiempo prolongado puede ser un estimulante uterino, por lo que está contraindicado su uso durante el embarazo. La LC50 intraperitoneal en ratón es mayor a 1,000 mg/kg.( 4)
del extracto etanólico por vía
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Cassia grandis Nombre común: Carao, Bucut, Caragüe, Carago, Santal,Caragua. Familia: Leguminosae ( 9 )
SINONIMOS Bactynlodium grande (Linneo f.) Homeman. Bactunlodium molle (Vahl.) Schrader. Cassia brasilina Lamarck.
HABITAT Nativo de Centro América, Caribe y Norte de Suramérica en terrenos abiertos, bordes de caminos y pastizales hasta 900 msnm.( 4) .En El Salvador crece en la zona central del país 2. En Guatemala en Alta Verapaz. Escuintla. Jutiapa. Petén. Retalhuleu. Santa Rosa y Suchitepéquez.( 4 )
DESCRIPCION BOTANICA Árbol grande, hasta 30 m de alto, ramas extensas, pilosas, corona redondeada o esparcida, tronco de 1 m de diámetro; corteza escamosa, fibrosa, café, estipulas muy pequeñas, lineares, deciduas. Hojas pinnadas, pecíolo corto; Folíolos oblongos, 8-20 pares, redondos en los
165
extremos, 3-5 cm de largo, brillantes, puberulentos o glabros. Flores rosadas o blancas, racimosas, sépalos, anchos, 6-8 mm de largo. Redondos en el ápice, pétalos glabros, 1 cm de largo, estambres 10, anteras de los estambres bajos más largas. Fruto en vaina cilíndrica negruzco, leñoso, indehiscente, 30-80 cm de largo, septado, pulpa azucarada. Semillas numerosas, transversas, aplanadas, comprimidas, negras o cafés.( 12 )
HISTORIA Fray Francisco Ximénez en su libro Historia Natural del Reino de Guatemala menciona la abundancia de estos árboles en tierras calientes y húmedas; en la región de Petén se observa el árbol en las orillas de las aguas y ruinas de antiguas ciudades mayas. Se ha introducido en otras regiones tropicales del Viejo Mundo como árbol ornamental por lo vistoso de sus flores.( 12)
COMPOSICION QUIMICA La hoja contiene: Alcaloides, flavonoides, glicósidos cardiotónicos, sesquiterpenlactonas, taninos y triterpenos. La corteza contiene: Triterpenos. La raíz contiene: Saponinas, sesquiterpenlactonas, triterpenos.( 15 )
166
USOS MEDICINALES La decocción de hojas, fruto y corteza es utilizada por vía oral para el tratamiento de anemia, hemorragia nasal, enfermedades del hígado, infección urinaria, histeria, resfrío y tos; por vía tópica se prepara un ungüento de la hojas para el tratamiento de afecciones de la piel y mucosas (herpes, llagas, tiña y vitiligo). De las raíces se extrae un líquido antiséptico que se utiliza para la curación de heridas. A las hojas y frutos se les atribuyen propiedades antianémicas, antimicóticas, antisépticas, astringentes, depurativas, diuréticas, estimulantes, expectorantes, febrífugas, galactogogas, mineralizantes, pectorales, purgantes, secantes. La pulpa del fruto maduro tiene un olor fuerte, es comestible o se prepara un refresco que es astringente, depurativo, laxante, pectoral y tónico. La ceniza de la madera se usa para fabricar jabón. Se acostumbra sembrar para sombra de café. Con el jugo de las hojas estrujadas y manteca se prepara un tratamiento veterinario para la sarna de los perros. ( 12 ) La infusión de hojas sirve para el jiote, aumenta el nivel de hierro de la sangre, para curar granos. ( 10)
ACTIVIDAD BIOLOGICA Estudios de la actividad antimicótica in vitro demuestran que la decocción de las hojas tiene actividad
contra
Epidermophyton
floccosum,
Microsporum
gypseum,
Trichophyton
mentagrophytes variedad algodonosa, Trichophyton mentagro Phytes varariedad granulare y
167
Trichophyton rubrum en concentración mínima inhibitoria es de 300-500 mg; presenta tanto actividad fungicida como fungistática.( 12 ) El extracto acuoso de hojas inhibió los cultivos de Escherichia coli. Los extractos etanólicos de corteza y raíz tuvieron actividad contra Staphylococcus aureus.( 11 )
La actividad antifúngica se debe, en parte, a su contenido de aloe-emodina, una antraquinona ácida, peso molecular 270 g/mol, cristal anaranjado que ha demostrado actividad contra líneas celulares tumorales. TOXICIDAD Los extractos acuosos y etanólicos de raíz, fueron tóxicos para los peces.( 11 )
168
abortiva.( 1 ) jambos Syzygium
Nombre común:
Manzana rosa Familia: Myrtaceae ( 4 )
SINONIMOS Eugenia jambos
HABITAD Y DISTRIBUCIÓN Nativa de India y Malaya, donde es comúnmente cultivada, el árbol fué introducido en Jamaica en 1762 y ha sido plantado por lo largo de la Bahamas, las Indias del Oeste, en el territorio sur de México, Centro América y Sur América, en muchas áreas se ha esparcido salvajemente. También ocasionalmente ha crecido en el Sur de la Florida, las Bermudas, el Sur de California y Hawaii. (4) DESCRIPCION BOTANICA Árbol frutal muy conocido de 8-10 m. de alto, de origen asiático. Hojas opuestas, coriáceas, odoríferas. Las flores tienen los estambres numerosos en forma de borla, de color blanco amarillenta pulposa aromática, el fruto comestible con una semilla dicotiledónea.( 16 )
169
COMPOSICION QUIMICA Las hojas contienen: Aceites esenciales, alcaloides, flavonoides, sesquiterpenlactonas, taninos, triterpenos. La corteza y la raíz: Aceites esenciales, alcaloides, glicósidos cardiotónicos y saponínicos, sesquiterpenlactonas, taninos, triterpenos. (15)
USOS MEDICINALES La corteza del árbol es emetocatártico. Las hojas se usan como tónicos, expectorantes y diuréticos. Se recomienda contra el reumatismo. Las semillas se dice que son venenosas, pero tostadas y molidas, se usan en infusión contra la diabetes. El fruto se come para estimular la digestión, ya que tiene propiedades carminativas y ligeramente catárticas. ( 2 ) En Guatemala el extracto de la hoja se toma como un tónico diurético y expectorante. La piel del tallo es usada como purgante, induce vómito. Los Cubanos consideran la raíz como un remedio para la epilepsia. Los venezolanos hacen aderezos de frutas trituradas. Una infusión de frutas es tomada como un diurético. En Haití, las semillas son empleadas por sus efectos astringentes y soporíferos. En Nicaragua una infusión del polvo de las semillas tostadas se cree que es remedio para el diabético. ( 2)
170
ACTIVIDAD BIOLOGICA Carminativo y laxante, contra la diabetes, expectorante y diurético. ( 2 )
TOXICIDAD Los extractos acuosos y etanólicos de hojas, corteza y raíz fueron muy tóxicos para los peces.(15)
171
Guazuma ulmifolia Nombre común: Caulote, Guácima, Pixoy, Chicharrón, Contamal Familia: Sterculiaceae ( 4 )
SINONIMOS Theobroma guazuma L; Guazuma polybotrya Cav.; Guazuma tomentosa HBK., G. guazuma (L) Cockerell .( 4 ) HABITAT Nativo de México hasta Sur América y Caribe, en pastos y bosques secundarios hasta 1,200 msnm; introducida en los trópicos de Asia y Africa. ( 4)
DESCRIPCION BOTANICA Arbusto o árbol de 12 – 20 m, hojas oblongas a anchamente aovadas, de 3 – 15 cm, agudas a acuminadas, aserradas, estrellado-tomentosas; flores amarillentas, fragantes, en cimas axilares pequeñas; cáliz estrellado-tomentoso, pétalos de 3 mm, fruto leñoso, globoso u oval, de 2 – 4 cm, con tubérculos duros.(12)
172
HISTORIA La información que hay sobre la historia de su uso es muy escasa, aparentemente ha tenido uso medicinal, alimenticio, artesanal y cosmético en la región desde tiempos precolombinos, particularmente la liga que se obtiene de su corteza. ( 4)
COMPOSICION QUIMICA La hoja contiene cafeína, en concentración del 2.17%. El fruto contiene un néctar rico en una fina miel. La corteza contiene betulina, β-sitosterol, friedelina, ésteres insaturados, cardenólidos, bufadienólidos, flavonoides y antocianinas. La flor contiene flavonoides como kaenferol, kampferitrina y quercetina. ( 8) Análisis fitoquimico preliminar (hoja): alcaloides, quinonas, flavonoides, esteroides, terpenoides, saponósidos, componentes fenólicos, taninos.( 7 ) El análisis proximal de 100g del fruto contiene: 429 calorías, agua (10.0 g), protéina (6.5 g), extracto etéreo
(3.0 g), ceniza (3.7 g), fibra (28.0 g), carbohidartos (48.6 g), calcio (548 mg),
fósforo (156 mg); contiene aminoácidos como ácido aspártico (0.64 g), treonina (0.12 g), ácido glutámico (0.86 g) lisina (0.34 g) y otros. ( 4 )
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USOS MEDICINALES. El cocimiento de frutos se usa para tratar diarrea, resfrío y problemas renales; la infusión y cocimiento de corteza se usa para tratar malaria, sífilis, calvicie, gonorrea, fracturas, elefantiasis y afecciones respiratorias (gripe, tos, sarampión); las hojas se usan para tratar afecciones del hígado y riñones, asma bronquitis, fiebre y gonorrea. La corteza de raíz se usa contra hemorroides y disentería. El cocimiento de corteza se usa tópicamente para tratar afecciones dermatomucosas (estomatitis, lepra, piodermia, quemaduras), fracturas e inflamaciones. Se le atribuye propiedad antiinflamatoria, aperitiva, depurativa, digestiva, diurética, febrífuga, lipolítica, sudorípara, tónica y vulneraria. Basados en el uso popular y falta de toxicidad, se utiliza para tratar afecciones digestivas y respiratorias. Se recomienda administrar tres veces al día en dosis de 1-3 g/taza en infusión.( 4 ) ACTIVIDAD BIOLOGICA Estudios antimicrobianos demuestran que la tintura de hojas es poco activa contra Escherichia coli, Streptococcus pneumoniae y Staphyloccus aureus, es inactiva contra Pseudomona aeruginosa, Candida albicans, Aspergillus niger y Neisseria crassa; no se confirmó la actividad contra enterobacterias en ningún extracto con diferentes disolventes. El extracto etanólico es inactivo contra Entamoeba histolytica. La hoja es activa contra herpes virus, pero no contra polio. El extracto etanólico de raíz y tallo no tiene actividad citotóxica contra células KB, el extracto de hojas es potente inhibidor (97.3%).
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Estudios farmacológicos demuestran que la decocción de hojas no tiene actividad diurética, ni hipotensora en ratas. ( 4) Se ha registrado un efecto estimulante del útero y actividad citotóxica. Un reporte preliminar indica una actividad significativa contra el virus del herpes, pero no sobre el virus de la polio y una enérgica actividad citotóxica del extracto alcohólico al 95% de hoja seca, in vitro, al inhibir en un 95% el crecimiento celular en el modelo experimental CA-9KB. El extracto hidroetanólico de prostaglandinas in vitro, en concentraciones de 750 µg/ml. El extracto etanólico de hoja posee una actividad antimicrobiana, in vitro, contra Shigella dysenteria. Staphylococcus aureus y Bacillus subtilis. En cambio, el extracto acuoso de hoja marchita no muestra ninguna actividad antibacteriana.( 8 ) En el curso de estudios de toxicidad subcrónica, se administraron al ratón 18.75 g/kg de extracto acuoso de hoja, cada 12 horas, durante 28 días, sin que se produjera muerte o signos de toxicidad atribuibles a la administración del extracto.
TOXICIDAD La ingestión de grandes cantidades de las diferentes partes de la planta es susceptible de provocar náuseas y vómitos. La dosis máxima de extracto acuoso de hoja posible de administrar a un ratón por la vía oral no mostró capacidad de producir toxicidad, o sea la LC50 se encuentra por encima de 25 g/kg. En el mismo animal la LC50 intraperitoneal es de 5.975 ± 0.193 g/kg. ( 8)
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La ingestión de grandes cantidades de las diferentes partes de la planta puede provocar náuseas, vómitos y diarrea.( 2 )
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Hymenaea courbaril Nombre común: Copinol, Guapinol, Palco, Algarrobo, Copal. Familia:Leguminosae (Caesalpiniaceae) ( 6 )
SINONIMOS Hymenaea animifera Stokes. Hymenaea candolleana H.B.K. Hymenaea resinifera Salisb. Hymenaea retusa Willd. Ex Hayne. HABITAT Arbol de los bosques secos del sur del país, los valles del interior y también de los bosques húmedos de la costa norte y la Mosquitia. Está distribuido desde México a través de América Central, y el noreste de América del Sur.( 4 )
DESCRIPCION BOTANICA Arboles perennes de 30 m de alto, con corteza lisa, tronco hasta 2 m de diámetro,
glabras,
estípulas caducas, 2 folíolos oblongos elíptico-lanceolados, 4-10 cm de longitud, 2-5cm de ancho, oblicuamente asimétricos, inflorescencia articulada, con varias flores blancuzcas, pétalos elípticos
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hasta 2 cm de longitud, anteras versátiles. Legumbre oblonga,5-15 cm de longitud, pocas semillas. Está distribuido desde México a través de América Central, y el noreste de América del Sur.( 12 )
HISTORIA El Copinol, es un árbol nativo de nuestras tierras que se extiende de México hasta Brasil, buscando siempre las regiones bajas y medianas. Mucho antes de haber llegado los conquistadores españoles a nuestras tierras, el Copinol ya era conocido y usado por nuestros indígenas como medicina. El nombre de Copinol ó Guapinol se deriva del Nahuatl “Cuahuitl” = árbol, y “pinolli” = pinol. Su propiedad curativa fue descrita por el cronista de Indias, Oviedo y Valdez: “la goma del árbol se pone en brasas y el humo se aspira para curar el asma”. ( 4 ) COMPOSICION QUIMICA Se han reportado flavonoides, terpenoides y esteroides en diferentes partes de Hymenaea courbaril. Ellos son: astilbina, β-bourboneno, δ cadineno,γ-cadineno, cariofilina, isoenantiometil éster del ácido comúnico, copacanfeno, α-copaeno, β-copaeno, α-cubebeno, ciclosativeno. Hymenae courbaril diterpeno, β-gurjeneno, α-himachaleno, humuleno, α- y γ-muuroleno, ácido 1,2,3-naftaleno-5-carboxilico, α- y β-selineno, β-sitosterol, un repelente de insectos-hedichineno. Las semillas contienen 9% del aceite fijo (índice de saponificación 208. Índice de yodo 93, y valor de Resonancia Magnética Nuclear 1.0). ( 10 )
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USOS MEDICINALES Antidiarreico, Antiparasitario intestinal, Contra infecciones renales, Para curar granos, y úlceras.(15 ) Actúa como vermífugo (cocimiento de hojas), para aliviar el asma y como antihistérico (resina del árbol), alivia la gota y el reumatismo, contra la diabetes (infusión de hojas), en decocción alivia el dolor de estómago y es antidiarreico (hoja y corteza), febrífugo (decocción de envoltura leñosa del fruto), tiene acción purgante (la cáscara del fruto que es resinosa, reducida a polvo, por vía oral), laxante (la pulpa dulce y polvosa de frutos maduros), se le atribuye actividad citotóxica y antibacteriana.(4 )
ACTIVIDAD BIOLOGICA Extracto
etanólico
demostró
actividad
antimicótica
contra
un
patógeno
vegetal
Pestalotiosubculturalis, en una concentración de 3.0 mg/ml. La decocción de la corteza seca en dosis de 1.0 g/kg en ratas, tiene efecto diurético. El extracto etanólico y la resina han demostrado actividad antimicrobiana contra Bacilus subtilis, Escherichia coli, Pseudomona aeruginosa, Staphylococcus aureus y Aspergillus niger y Candida albicans.( 12 )
TOXICIDAD Las pruebas de toxicidad de los extractos etanólicos y acuosos, demostraron mucha toxicidad para los peces pues la mayoría murió en un lapso de 12 horas.( 15)
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Efectos indeseables: Posee toxicidad que puede ser debido a la presencia de soponinas en la planta; por lo que hay que tener cuidado en su uso y no exceder la dosis, ni prolongar el tratamiento .( 12 )
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Solanum nigrum Nombre común: Hierba mora, Morella, Tomatillos del diablo Familia: Solanáceas ( 4 )
SINÓNIMOS Macuy, Quilete HABITAT Es nativa de Centroamérica, crece en todo el trópico americano.( 26 )
DESCRIPCION BOTANICA Hierba de 0.5-1cm de alto; tallo piloso, hojas en pares o solitarias de diferentes tamaños pero similares en su forma enteras o dentadas, lanceoladas, 3-18 cm de largo, ápice acuminado, base atenuada. Pecìolo5-35mm de largo; inflorescencia internodal, racemiforme; pedùnculos1-3 cm de largo; càliz1-1.5mm, lobulado: corola blanca o lila, mancha oscura en la base, filamentos ciliados. Anterias 3-4mm de largo; ovario glabro. Fruto globoso de 4-7mm de diámetro, semillas 1-1.5 mm de largo. (
7 )
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HISTORIA Algunos de los usos medicinales referidos en obras del siglo XIX son: cataplasmas de las hojas para las inflamaciones, decocción de la planta para lavatorios en enfermedades de los ojos y la piel. Se hace referencia en algunas de estas obras a que en las Antillas, México y América Central las. (12) algunos de estos países (Grosourdy, 1864;Gómez de la Maza, 1889). La hierba mora estaba en relación de especies utilizadas como medicinales por el Cuerpo de Sanidad Militar del Ejercito Libertador durante la Guerra de Independencia, (siglo XIX), en Cuba (Picaza, 1948). Fuentes y Guzmán en la Recordación Florida la menciona como “...útil el remedio de muchas enfermedades, en especial a la de la erisipela...” (Figueroa Marroquín, 1983). (12)
COMPOSICION QUIMICA Se reportan en la planta solanina, rutina, asparagina y solamargina (Chopra, 1986 a, b; de Padua, 1981). También contiene solasodina (0.1 %), que es la materia prima para la producción de hormonas esteroidales, taninos, cardenólidos, ácido málico, riboflavina, tiamina, ácido ascórbico y sales minerales. (15)
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USOS MEDICINALES TRADICIONALES El cocimiento de hojas y semillas tiene amplio uso medicinal, por vía oral se administra en el tratamiento de afecciones gastrointestinales (cólico, diarrea, estreñimiento, gastritis, úlcera gástrica) y respiratorias (asma, amigdalitis, tos ferina), anemia, cirrosis, dolor de muelas, escorbuto, hinchazón, meningitis, nerviosismo, paludismo, presión alta, retención urinaria, reumatismo. La decocción de hojas se usa por vía tópica para el tratamiento de afecciones dermatomucosas (acné, abscesos, dermatitis, eczema, erisipela, exantema, heridas, leucorrea, llagas, mezquinos, pústulas, tiña, úlceras y vaginitis); la cataplasma de hojas frescas se usa para tratar verrugas y madurar abscesos. Se le atribuye propiedad aperitiva, calmante, depurativa, diurética, desinflamatoria, emoliente, febrífuga, mineralizante, reconstituyente, sedante y vulneraria.(4)
ACTIVIDAD BIOLÓGICA La decocción de hoja de Solanum nigrum mostró actividad antimicrobiana in vitro, frente a Pseudomonas aeruginosa, Staphylococus aureus y Streptococcus pyogenes, pero no contra Vibrio cholerae. El mejor disolvente para la extracción de principios con actividad antimicrobiana es el etanol. Esta misma preparación y la maceración hidroalcohólica mostraron actividad antimicótico in vitro contra Candida albicans, específicamente la decocción mostró actividad fungicida frente a Epidermo floccosum, Microsporum canis, Microsporum gypseum,
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Trichophyton mentagrophytes, Trychophyton rubrum, con concentración mínima inhibitoria (CIM) de 100-300 mg. El extracto es activo in vitro frente a cryptococcus neoformans y mostró actividad antimicótico frente a nuevas cepas de Candida albicans provenientes de diferentes lesiones de piel y mucosas. El extracto etanólico de hoja mostró poderosa actividad candidostática y micostática y moderada actividad candidocida,
siendo inactivo frente a
Aspergillus spp. En un nuevo ensayo clínico en 50 pacientes con candiosis vaginal se constató que el grupo experimental tratado con óvulos de Solanum nigrescens siguió un comportamiento clínico evolutivo estadísticamente similar al del grupo tratado con óvulo de NISTATINA. La decocción de hojas induce probablemente actividad inmunomoduladoras en ratones, expresadas en un aumento en la población de linfocitos y en los títulos de anticuerpos séricos. (
7 )
TOXICIDAD A la dosis de 5g(de hoja seca)/kg, en ratones, en infusión por vía oral, Solanum nigrum no presentó toxicidad aguda. ( 7 )
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Tridax procumbens Nombre común: Bakenbox, Cadillo, Chisaaca, Hierba de Toro, Hierba de San juan Familia: Asteraceae/Compositae.( 4 )
SINONIMOS Balbisia elongata Willd; Tridax procumbens var. ovatifolia Robins & Greenm. HABITAT Nativa de México y Centro América, se encuentra en lugares húmedos o secos, en campos de maleza y praderas, en suelo cubierto de arena a las orillas de arroyos o caminos, a menudo en terrenos baldíos o suelos cultivados hasta 2,300 msnm; introducida en Sur América, Caribe, Africa y Asia.(4 )
DESCRIPCION BOTANICA Planta perenne, base leñosa, tallos ramificados, 15 – 50 cm de largo, a veces enraizado en los nódulos, densamente hirsuta. Hojas corto pecioladas, limbo rómbico-ovaladas o lanceolado, 2-7 cm de largo, agudo o acuminado, cuneado en la base, verde oscura, márgenes fuertemente Farmacologia:
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dentadas, hirsuto en el envés, escabroso en el haz. Flores en cabezuelas radiadas, solitarias, pedúnculos desnudos. 10-20 cm de largo, hirsutos; filarios biseriados. Flores del disco amarillas, 5-7 mm de largo; aquenios negros, 2.5 mm de largo, pilosos; papus en corona con 20 cerdas plumosas, rayos reducidos, 2-3 mm de largo.( 4 )
HISTORIA Es una planta cuyo nombre en hindú es “Ghamra”, entra en la preparación del “Bhringraj”, un medicamento que tiene una gran reputación en la medicina Ayurveda para el tratamiento de desórdenes hepáticos.( 4 )
COMPOSICION QUIMICA El tamizaje fitoquímico de toda la planta presenta esteroides/terpenoides, flavonas, taninos, saponinas, azúcares y β-sitosterol. Las hojas y semillas contienen un alcaloide, ácido fumárico, β-sitosterol y taninos. Las flores frescas contienen luteolina, glucoluteolina, quercetina e isoquercetina. De la fracción hexánica de la planta completa se han aislado los siguientes compuestos: βamarina, β-amirona, ∆12-dihidrolupen-3-ona,dotriacontanol, lupeol, fucosterol, 14-metil oxonona-cosanoato, 3-metilnonadecilbenceno, heptacosanil ciclo-hexano carboxilado, 1(2,2metil-3-hidroxipropil)-2-isobutil
ftalato,
9-oxoheptadecano,
10-oxononadecano,
12-
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hidroxitetracosan-15-ona,
32-metil-30-oxotetratriacont-31-en-1-ol.
Ácido
30
metil-28-
oxodotriacont-29-em-1-oico y sitorterol.( 4 )
USOS MEDICINALES La planta fresca o seca, en infusión o decocción es usada por vía oral para tratar alergia, anemia, afecciones gastrointestinales (diarrea, disentería, dolor de estómago, estreñimiento, flatulencia, parásitos intestinales) y respiratorias (bronquitis, catarros, fiebre), dolor de cabeza, diabetes, enfermedades hepáticas, inflamaciones, hipertensión y trastornos menstruales. El emplasto de las hojas se aplica tópicamente para aliviar inflamaciones; el jugo de hojas frescas se usa para obtener hemorragias y lavar cortadas, raspones y heridas; la decocción se usa en lavados para tratar casos de vaginitis. Se le atribuye propiedades antisépticas, cicatrizante, febrífuga, hepatoprotectora, hipoglicémica, insecticida, vermicida, refrescante y refrigerante.( 4 )
ACTIVIDAD BIOLOGICA Estudios antibacterianos demuestran que la tintura de hojas es inactiva contra enterobacterias (Escherichia coli, Salmonela enteritidis, Salmonella typhi, Shigella dysenteriae, Shigella flexneri) y bacterias gram-positivo
(Stafilococcus aureus,
Streptococcus pneumoniae, Streptococcus
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pyogenes); el extracto metanólico es inactivo contra Bacillus subtilis, Escherichia coli, Pseudomoa aeruginosa, Staphylococcus albus, Staphylococcus aureus. Los extractos diclorometánico, metanólico y etéreo son inactivos contra Pseudoma falciparum (LC50>499 µg/ml). El aceite esencial (3%) tiene actividad insecticida contra Mosca Domestica, larvas de mosquito (Culex fatigans), Dysdercus similis y cucarachas, así como presenta actividad repelente contra tres variedades de hormigas. El extracto acuoso y etéreo de las partes aéreas tiene actividad contra hongos fitopatógenos (Fusarium nivale) e insecticida de contacto (Oncopeltus fascualus, Sitophilus oryzae, Tribolium castaneum). Estudios farmacológicos demuestran que el jugo de hojas frescas (1 ml/animal/día) aplicado a heridas provocadas experimentalmente en animales reduce el tiempo de epitelización en conejos aumenta la fuerza tensil en cobayos y reduce el tamaño de los granulomas en ratas. Aplicado a heridas por incisión y excisión en conejos y cobayos tiene una definida acción cicatrizante, de contracción de la herida y de granulación similar a la dexametasona (0.33 mg/kg intramuscular) y se opone significativamente a sus efectos sobre la fuerza tensil y epitelización. La infusión de hojas en dosis de 750 y 1,000 mg/kg posee actividad antiinflamatoria. El extracto etanólico (300 mg) de toda la planta tiene muy buena actividad antisecretoria demostrada por antagonismo en un modelo de diarrea inducido por enterotoxinas termolábiles y termoestables
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de E. coli en asas ligadas de ileon de conejo y cobayo e impidiendo, la acumulación de fluido en un 70%. El extracto etanólico ha demostrado actividad antihepatotóxica en ratas albinas utilizando modelos crónicos y agudos de daño hepático y evaluación morfológica, metabólica, histológica y bioquímica; su fracción insoluble posee actividad hepatoprotectora sobre la acción hepatotóxica inducida por el monitoreo de transaminasas, fosfatasa alcalina, bilirrubina séricas. El extracto etanólico de partes aéreas administrado a ratas por vía oral (100 mg/kg/día) o tópica (ungüento al 10%) durante 21 días, promueve el crecimiento de cabello en regiones rasuradas; se sugiere que el efecto es por acción sistémica y que la actividad se encuentra en la subfracción soluble en éter de petróleo.( 4 ) Por su actividad hepatoprotectora demostrada experimentalmente, la planta completa está indicada por vía oral en el tratamiento de afecciones hepáticas. Se recomienda administrar tres veces al día en dosis de 2-4 g/taza en infusión, 3-5 ml de tintura 1:8 en etanol 35%. Por su actividad cicatrizante y folicular esta indicada su aplicación tópica en heridas, llagas, caída de pelo y otras afecciones dérmicas. Por su actividad hepatoprotectora puede combinarse con Alcachofa, Apacín, Boldo, Cardo de María, Romero y Zarzaparrilla; por su actividad cicatrizante y folicular puede combinarse con Caulote, Geranio, Llantén, Manzanilla, Ortiga y Romero.( 8 )
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TOXICIDAD Los extractos acuosos y etanólicos de la planta completa, no fueron tóxicos dichos extractos para los peces, a pesar de la presencia de saponinas, según el análisis. Esto podría deberse a que su contenido de glicósidos saponínicos sea bajo, o porque la planta contenga saponinas ácidas que son poco o nada tóxicas.(11)
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ANEXO N° 2 EQUIPO UTILIZADO EN LABORATORIO CROMATOCRAFO LIQUIDO DE ALTA RESOLUCIÓN
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EQUIPO UTILIZADO PARA OBTENER LOS EXTRACTOS ROTAVAPOR
EQUIPO DE REFLUJO
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ANEXO 3 GLOSARIO Aborto: Interrupción espontánea o inducida de el embarazo Abortifaciente: Sustancia y prácticas capaces de producir el aborto Acre: Adjetivo de sabor y olor áspero. Absceso: Acumulación de pus en una cavidad anormal, formada por la desintegración de los tejidos. Acuminado: Aguzado, puntiagudo. Agua de Tiempo: A temperatura ambiente, sustancia acuosa generalmente medicinal que su consumo es frecuente Alergia: Reacción de hipersensibilidad frente a ciertos antigenos Almorrana: Hemorroides. Amenorrea: Falta de menstruación. Analgésico: Que calma o disminuye la sensación de dolor Antiácido: Que contrarresta la acidez Antialérgico: que contrarresta la alergia Antianémico: Sustancia para tratar o evitar la anemia Antibacteriano: Destructor de bacterias Antibiótico: Agente antimicrobiano Antidiarreico: Que alivia o impide la diarrea
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Antiflatulento: Que se opone a la formación de gases en el aparato digestivo Antiparasitario: Destruye los parásitos o impide su crecimiento y reproduccion Antiespasmódico: Sustancia utilizada para utilizar las contracciones. Antiséptico: Sustancia utilizada para lograr la desinfección Astringente: Sustancia que provoca una contracción fibrilar de los tejidos orgánicos. Sustancia que produce contracción y sequedad de los tejidos cuando se aplica localmente. Antitusivo: Que calma la tos Artritis: Inflamación de las articulaciones Asma: Enfermedad de los pulmones, a menudo catarla. Astringente: Que contrae, aprieta, estrecha y endurece los tejidos. Disminuyendo las secreciones y coagula la sangre. Baños: preparación de hojas, corteza o cualquier otra parte de la planta para uso externo Bronquitis: Inflamación de los bronquios Calambre: Contracción espasmódica, involuntaria, dolorosa y transitoria, de un músculo o varios músculos, especialmente de la pantorrilla o de la túnica muscular del estómago Calculo: Concrecacion que se forma en el cuerpo, compuesto generalmente de sales minerales. Colágogo: Agente que promueve el flujo de bilis al intestino, especialmente por contracción de la vesícula biliar. Cefalalgia: Dolor de cabeza Cefalea: Cefalalgia violenta y tenaz.
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Cicatrizante: Que cierra y sana las heridas y llagas Carminativo: Sustancia que favorece la expulsión de los gases desarrollados en el tubo digestivo. Calmante: Que tranquiliza, alivia el dolor e induce al sueño Cataplasma: Masa plástica y plana que contiene productos medicinales y que se aplica como calmante o emoliente. Catarro: Inflamación de la mucosa bronquial, con secreción abundante de mucosa Catártico: Purgante Contorsión: Actitud forzada, movimiento irregular y convulsivo que procede de un dolor repentino o de una causa física. Carcinogénicas: Que tiene la capacidad de inducir el desarrollo de un cáncer Carcinoma: Tumor canceroso Carminativa: facilita la expulsión de gases intestinales Cáustico: Quemante o corrosivo Citotóxico: Que tiene un efecto toxico sobre determinadas células. Coadyubvante: Que contribuye o ayuda Cocimiento: procedimiento para la obtención de principios activos de las partes duras Cólico: dolor intenso en el vientre, hígado o riñones. Colitis: Inflamación del intestinogrueso, llamado colon. Colutorio: Enjuagado medicinal.
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Convulsión: Contracción violenta o involuntaria de los músculos. Decocción: Producto que se obtiene por el cocimiento en agua de sustancias vegetales y minerales. Desinfección: Acción de eliminar los gérmenes nocivos para la salud. Dermatosis: Diversas afecciones de la piel. Diabetes: Enfermedad del metabolismo, caracterizada por sed, apetito intenso, aumenta la orina y glucosa sanguínea. Diarrea: Síntoma o fenómeno que consiste evacuaciones de vientre líquidas y frecuentes, con agudos dolores y retortijones. Diurético: Sustancia capaz de excitar la secreción de orina Dolor de vientre: Diversos malestares y dolencias abdominales. Edema: Hinchazón de alguna parte del cuerpo Emenagogo: Que estimulo el flujo menstrual. Emético: Vomitivo, que produce vómito Emetocatártico: Que a un tiempo es vomitivo y purgante Emoliente: Suaviza y ablanda la piel Epilepsia: Enfermedad generalmente caracterizada por accesos repentinos con pérdida de conocimiento y convulsiones.
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Epistaxis: hemorragia nasal, producida por la irritación local de las membranas mucosas, un estornudo violento, la fragilidad del epitelio o de las paredes arteriales, una infección crónica, un traumatismo, hipertensión, leucemia, deficiencia de potasio o vitamina K. Escorbuto: Enfermedad causada por carencia de vitamina “C”, se presenta por hinchazón y hemorragia de las encías, perdida de los dientes, manchas en la piel. Espasmo: Contracción muscular involuntaria, persistente y dolorosa Estomatitis: inflamación de la mucosa bucal, trastorno inflamatorio de la boca producida por una infección bacteriana, vírica o fúngica; la exposición a ciertas sustancias químicas o fármacos, deficiencias vitamínicas o enfermedad inflamatoria sistémica. Estreñimiento: Dificultad para expulsar las heces fecales del cuerpo Eupepsia: Digestión normal Expectorante: Sustancia que facilita la expulsión de la flema acumulada en los bronquios y pulmones. Extravasación: Paso o escape hacia los tejidos de un líquido generalmente sangre. Febrífuga: Fármacos o sustancias que reducen la fiebre. Se aplica a la sustancia o procedimiento que disminuye la fiebre, es decir que hace descender el umbral de termodetección del centro hipotalámico regulador de la temperatura, con la consiguiente vasodilatación. Fermentación: Transformación química en una sustancia por acción de una enzima o un microorganismo. Fiebre: Temperatura del cuerpo mas alta de los normal.
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Fitoterapia: Ciencia que trata las enfermedades con plantas Flatulencia: Exceso de gases en el tubo digestivo. Frotación: Movimiento de masaje, consistente en rozar levemente con la palma de los dedos. Fungistático: Sustancia que inhibe el crecimiento de los hongos. Galactogogas: Que favorece la producción de leche Gangrena: Necrosis o muerte de un tejido, generalmente a consecuencia de isquemia, invasión bacteriana y putrefacción consiguiente. Gárgara: Enjuagatorio de la garganta y boca para tratar infecciones. Gastralgia: Dolor de estómago Gastroenteritis: Inflamación del estómago y de los intestinos. Gota: Enfermedad que causa hinchazón muy dolorosa en ciertas articulaciones. Gripe: Enfermedad epidémica aguda, infecciosa, propia de las vías respiratorias, producida por virus. Hematoma: Tumor sanguíneo proveniente de una ruptura de vasos. Hematuria: Presencia anormal de sangre en la horina Hemorragia: salida de flujo sanguíneo de una vena o arteria. Hemorroides: dilatación e inflamación de las venas rectales o anales. Hemostática: Que detiene o corta el sangrado o hemorragia. Hepático: Para tratar enfermedades del hígado. Herpes: Afección cutánea o mucosa que se caracteriza por la aparición de pequeñas vesículas.
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HERRINGS (inglés) – ARENQUE (español): Pez teleósteo mayor que la sardina, de cuerpo comprimido, aletas estrechas, lomo azulado y vientre plateado, abunda en los mares de Europa. Hipertensión arterial: Aumentó transitorio o permanente de la presión de la sangre en las arterias. Hematocrito: Medida del volumen de la fracción de hematíes (glóbulos rojos) de la sangre expresada como porcentaje del volumen sanguíneo total. Hematuria: emisión de orina que contiene sangre. Presencia anormal de sangre en la orina, es sintomática de muchas enfermedades renales y trastornos del sistema genitourinario. Hepatomegalia: Aumento patológico del tamaño del hígado que suele deber a enfermedad del mismo. Hierba bienal: dícese de la planta cuyo ciclo de reproducción dura dos años. Homeopatía: Sistema terapéutico que consiste en curar enfermedades mediante sustancias Impétigo: Enfermedad cutánea caracterizada por pequeñas pústulas, que se curan sin dejar cicatrices Indigestión: Dificultad causada por una mala digestión Infección: Invasión del organismo por microorganismos patógenos Inflamación: Alteración patológica que ocasiona enrojecimiento, dolor e hinchazón. Infusión: es la acción de extraer sustancias de partes solubles, por medio de agua caliente. Es la forma más usada y más fácil para obtener los principios activos de las partes suaves de una planta (flores y hojas)
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Inhalación: Flujo de aire aspirado al interior del organismo Insecticida: Que elimina o ahuyenta los insectos. Insomnio: Dificultad para conciliar el sueño. Intoxicación: Incorporación de toxinas o venenos a los fluidos vitales. Jaqueca: Dolor de cabeza que ataca solo en un lado o parte de ella. Jarabe: Solución concentrada de sacarosa (azúcar) en agua, a la que se llama jarabe simple, se disuelve en un cocimiento o infusión de la planta, convirtiéndose en jarabe medicinal Laxante: Que ayuda a activar el movimiento del intestino, con lo que facilita la defecación. Letargo: Estado anormal de adormecimiento o sueño. Leucemia: Enfermedad que se caracteriza por un gran aumento de leucocitos en la sangre. Lienzos: Tela humedecida con cualquier liquidó, que se aplica sobre la piel. Litiasis renales: formación de cálculos en cualquier parte del aparato urogenital. Macerado: Ablandar una planta, ya sea destruyéndola o sumergiéndola en un liquidó. Método de extracción sin calor. Machacar: fragmentar a través de una acción mecánica. Meteorismo: Abultamiento del vientre por gases acumulados en el intestino. Migraña: Sin. Jaqueca. Narcótico: Que produce sueño, estupor o inconciencia. Náuseas: Asco o repugnancia, seguido de vómito Necrosis: destrucción de un tejido, especialmente el óseo
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Nefritis: Inflamación de los riñones Neumonía: Infección de los pulmones Nutritivo: Capaz de nutrir Oculares: Referente al ojo Odontálgico: Calmante del dolor de diente o muela. Oftalmia: Inflamación de los ojos. Oral: que es bebido o ingerido. Otico: Perteneciente al oído. Oxitócico: Sustancia que tiene la acción de acelerar el parto. Polvo: Es la reducción de una planta seca a un polvo fino; esto puede lograrse a través de moler o machacar la misma. Pomada: son preparados semisólidos para aplicación tópica. Su consistencia de crema permite untar fácilmente sobre la piel. Se utiliza vaselina sólida como base mezclado con un extracto o jugo de planta. Sin Ungüento. Pujo: Sensación molesta en los niños tiernos consistente en la gana de defecar y tener dificultad para hacerlo. Purgante: Sustancia que sirve para limpiar el estomago y los intestinos. Reconstituyente: que da fuerzas a las personas débiles y enfermas. Repelente: Sustancia que repelen los insectos
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Reumatismo: Enfermedad que se manifiesta en las articulaciones o en las partes musculares y fibrosas del cuerpo. Salpullido: erupción cutánea, de granitos o ronchas, es leve y pasajera. Sarna: Enfermedad contagiosa que consiste en una multitud de vesículas por todo el cuerpo, producidas por el ácaro, causando una viva picazón Sedante: Que calma el dolor o excitación. sin. calmante. Somnífero: Sustancia que provoca o induce al sueño. Té: Sin. Infusión. Tintura: Solución de cualquier sustancia medicinal en un líquido que disuelve de ella ciertos principios. Tranquilizante: Droga o sustancia que es sedativa y que induce al sueño. Tuberculosis: Enfermedad transmisible, aguda o crónica que suele atacar los pulmones, pero puede afectar cualquier otro organo. Tumor: hinchazón o bulto que se forma en alguna parte del cuerpo. Trombocitopemia: Disminución de la tasa de las plaquetas sanguíneas. Situación hematológica anormal en que el número de plaquetas está disminuido debido a destrucción de eritrocitos en la medula ósea por ciertas enfermedades neoplásicas o por respuesta inmunológica; es la causa mas frecuente de trastornos hemorrágicos. Tropismo: Movimiento inducido desde el exterior que afecta a un organo de la planta y relacionado con la dirección del estimulo.
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Tónica: Que entona o vigoriza. Ulcera: Perdida limitada de la sustancia de un tejido con escasa tendencia a la cicatrización. Se aplica sobre todo a lesiones de tegumentos y mucosas. Varicela: Enfermedad infecciosa aguda, caracterizada por brotes en forma de mácula, vesícula y costra. Vasodilatador: Relajante de loa músculos lisos del sistema vascular. Vermífugo: Que elimina parásitos intestinales. Sin. Antiparásito. Vermicida: Destructor de gusanos intestinales. Vía intra gástrica: Que entra en el aparato digestivo. Sin. Bebido. Vía subcutánea: Que se aplica debajo de la piel. Vomito: Acción de expulsar por la boca, el contenido del estomago. Zumo: extracción que se obtiene, triturando las partes vegetales, sin agregarle agua.
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