UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

TESIS DE GRADO PRESENTADA AL HONORABLE CONSEJO DIRECTIVO COMO REQUISITO PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE:

MÉDICO VETERINARIO Y ZOOTECNISTA.

TEMA “DIAGNÓSTICO DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO MEDIANTE EL USO DE KITS SNAP 4DX”

AUTOR ISRAEL EMILIO MÁRQUEZ CABRERA

DIRECTOR Dr. ALFREDO MITE VIVAR

GUAYAQUIL-ECUADOR 2011

La responsabilidad por las ideas, Investigaciones, resultados y conclusiones Sustentadas en ésta tesis corresponden Exclusivamente al autor.

ISRAEL EMILIO MÁRQUEZ CABRERA

Dr. Carlos Eduardo Cedeño Navarrete RECTOR.

Dr. Mario Humberto Cobo Cedeño DECANO.

Abg. Fidel Fausto Romero Bajaña SECRETARIO.

Dr. Alfredo Mite Vivar. DIRECTOR DE TESIS.

“DIAGNÓSTICO DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO MEDIANTE EL USO DE KITS SNAP 4DX”

ISRAEL EMILIO MÁRQUEZ CABRERA

TESIS DE GRADO

PRESENTADA AL HONORABLE CONSEJO DIRECTIVO COMO REQUISITO PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE:

MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA. Los Miembros del Tribunal de Sustentación designados por el Honorable Consejo Directivo de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, le damos por Aprobada la presente investigación.

Dr. Alfredo Mite Vivar PRESIDENTE

Dr. Luis Placencio Triviño EXAMINADOR PRINCIPAL

Dr. Oscar Macías Peña EXAMINADOR PRINCIPAL

Dr. Mauro Loor Macías EXAMINADOR SUPLENTE

DEDICATORIA

Este trabajo de investigación se lo dedico en primer lugar a dios; después a mi hija y mi esposa por estar a mi lado y darme fuerza cada día.

Dedico este trabajo a las personas que amo y quiero en especial a mi madre; mis hermanos y mi abuelita por ayudarme y guiarme en este camino que me ha tocado recorrer y gracias a su ayuda y consejos siempre he seguido adelante.

A los queridos Profesores Universitarios que de un modo u otro me ayudaron a seguir adelante en mi vida personal y profesional. Gracias.

AGRADECIMIENTO

Un sincero agradecimiento a mi director de tesis Dr. Alfredo Mite Vivar, por todo el tiempo que me ha dado, por sus sugerencias e ideas, por su respaldo y amistad.

Agradezco al Dr. Julio Decker Cadena al Dr. Luis Placencio Triviño, por su invaluable ayuda y asesoramiento, la cual fue de gran importancia para la realización de la tesis.

Un

agradecimiento

especial

a

la

Dra.

por su apoyo y comentarios para la realización de la tesis.

María

de

Lourdes

Salazar

PENSAMIENTO

El humano es un ser altamente adaptable, se acostumbra a todo el problema es cuando solo es a lo malo, siempre cuesta el doble el bien y la recompensa llega tarde, somos tan impacientes que nunca la esperamos. La vida está llena de oportunidades, solo tenemos que ser observadores y tener la valentía para tomarlas, la perfección se alcanza con el trabajo.

ÍNDICE DEDICATORIA…………………….……………...……………………………….ⅰ AGRADECIMIENTO……………….……………...………………………………ⅱ PENSAMIENTO…………………….……………...…………………………..…..ⅲ ÍNDICE………………………………….……………...…………………………...ⅳ LISTA DE CUADROS…………………………………...…………………………ⅴ LISTA DE FIGURAS…………………………………………………………….…ⅵ LISTA DE ANEXOS.…………………………………………………………….…ⅶ INTRODUCCIÓN……………………………………...………………………….…1 1. OBJETIVOS...... ………………………………...……………………...................4 II. REVISION DE LITERATURA……………………....………………………...…5 2.1 GENERALIDADES………………………………………………………..…….5 2.2 AGENTE ETIOLOGICO……………………………………………………….. 5 2.3 DISTRIBUCION GEOGRAFICA…………………….…………….. ……….... 6 2.4 TAXONOMIA………………………………………...……….…….. ………… 6 2.5 BREVE HISTORIA …………………………………………….………………. 6 2.6 MORFOLOGIA……………………………………………….………………… 8 2.7 CICLO DE LA EHRLICHIA CANIS …………………...……..…….. ……...... 8 2.8 VECTORES………………………………………..……...…………………. … 9 2.9 TRANSMICIÓN………………………………………………………………….9 2.10 FISIOPATOLOGIA……………………………………………..…….............10 2.11 SISTEMAS AFECTADOS ……………………………………………..……..11 2.12 PATOGENIA…………………………………………………………………..12 2.13 SIGNOS CLINICOS Y ANORMALIDADES DE LABORATORIO…….......13 2.14 LESIONES……………………... ………………..………………………..…. 15 2.15 ALTERACIONES BIO PATOLOGICAS………...…………………….. ……16 2.16 DIAGNOSTICO…………………………………………..…………...………21 2.17 DIAGNOSTICO DIFERENCIAL…………………...……………...………. ..25 2.18 TRATAMIENTO………………………………….………………………….. 25 2.19 PRONOSTICO Y PREVENCIÓN…………….....…………...……………. .. 27

2.20 SALUD PÚBLICA.…………………………..………………...…………… ..28 2.20 GENERALIDADES LYME…………………………………………………..29 2.21 ETIOLOGIA…………………………………………………………………..29 2.22 PATOGENIA………………………………………………………………….30 2.23 SIGNOSCLINICOS Y DIAGNOSTICO DIFERENCIAL……………………31 2.24 DIAGNOSTICO……………………………………………………………….31 2.25 TERAPEUTICA Y MEDICAMENTOS PREFERIDOS……………………...32 2.26 SALUD PUBLICA…………………………………………………………….32 2.27 GENERALIDADES DIROFILARIA INMITIS………………………………33 2.28 ETIOLOGIA…………………………………………………………………...34 2.29 CICLO EVOLUTIVO…………………………………………………………34 2.30 SINTOMAS……………………………………………………………………35 2.31 DIAGNOSTICO………………………………………………………………36 2.32 TERAPEUTICA……………………………………………………………….36 2.33 ZOONOSIS……………………………………………………………………41 2.34 GENERALIDADES ANAPLASMA………………………………………….42 2.35 HISTORIA RELEVANTE…………………………………………………….42 2.36 FISIOPATOLOGIA……………………………………………………………43 2.37 SIGNOS CLINICOS…………………………………………………………...43 2.38 DIAGNOSTICO DIFERENCIAL E IMPORTANCIA………………………..43 2.39 TRATAMIENTO………………………………………………………………44 III. HIPOTESIS……………………………………………...........………...……... 44 IV. MATERIALES Y MÉTODOS…………….…...……...………….…………… 45 4.1 CARACTERISTICAS DEL ÁREA DE ESTUDIO.……………………………45 4.2. MATERIALES…………………………………………………………………45 4.2.1 DE CAMPO …………………………………..……………….………… .… 45 4.2.2 DE LABORATORIO……………………….………………..….………… ... 46 4.2.3 DE OFICINA…………………………….…………………...…..……….… 46 4.3 METODO DE TRABAJO ………………………..…………...…….………… 46 4.3.1 DE CAMPO …………………………………………………...……..….……46 4.3.2 DE LABORATORIO…………………………………….…………..………. 46 4.3.3 DE LA TECNICA UTILIZADA……….………...…..……………………….47

PROCEDIMIENTO……………………………………………………………47 1. MUESTREO ……………………………………………...………….….….47 2. LABORATORIO ……………………………………...……………..…… 47 4.3.4 DE LA DISTRIBUCIÓN DE LOS ANIMALES EN EL ESTUDIO…………50 4.3.5 DEL ANALISIS ESTADÍSTICO……………………….……………….……50 V. RESULTADOS y DISCUSIÓN.……...……………..……………...……...…....52 VI. CONCLUSIONES Y DISCUSIONES...………………………..……………....60 6.1. CONCLUSIONES……………………………………………………………...60 6.2. DISCUSIONES…………….…………………………………………………..61 VII. RECOMENDACIONES.….……………………...…………...…………….…63 VIII. RESUMEN…………………………………………………………………..III. SUMMARY………………………...……………………………………………….65 IX. BIBLIOGRAFÍA….…………………...………………………….....................66 X. ANEXOS….………………...………...………………………………................70

LISTA DE CUADROS

CUADRO # 1

TÍTULO

PÁGINA #

INCIDENCIA DE ENFERMEDAD HEMATICAS EN

52

CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO.

2

INCIDENCIA DE ENFERMEDADEA HEMATICAS EN

53

CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO POR ZONA

3

INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN

54

CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO DEACUERDO AL SEXO.

4

INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN

56

CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO POR SEXO Y PROCEDENCIA.

5

INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN

57

CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO POR SEXO; DIAGNÓSTICO Y ZONA.

6

INCIDECIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO POR EDAD; DIAGNÓSTICO Y ZONA.

11

58

LISTA DE FIGURAS.

FIGURA #

TÍTULO

PÁGINA #

1

INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO.

52

2

INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO POR ZONA.

54

3

INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO DEACUERDO AL SEXO.

55

4

INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO POR SEXO Y PROCEDENCIA.

56

5

INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMATICAS EN CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO POR SEXO; DIAGNOSTICO Y ZONAS.

58

6

INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HAMATICAS EN CANINOS DE LA CIUDAD DE MILAGRO POR EDAD; DIAGNOSTICO Y ZONAS.

59

12

LISTA DE ANEXOS.

ANEXO

TÍTULO

PÁGINA

# I

# EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE PRUEBA No PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA

70

PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA LAS ZONAS.

II

EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA

71

PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA EL SEXO.

III

EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA

72

PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA Y EL SEXO HEMBRA.

IV

EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA

73

PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA Y EL SEXO MACHO.

V

EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA DIAGNOSTICO EHRLICHIA Y SEXO HEMBRA.

13

74

VI

EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA

75

PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA DIAGNOSTICO ANAPLASMOSIS Y SEXO HEMBRA.

VII

EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA

76

PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA DIAGNOSTICO EHRLICHIA Y ANAPLASMOSIS SEXO HEMBRA.

VIII

EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA

77

PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA DIAGNOSTICO EHRLICHIA Y SEXO MACHO.

IX

VIII

EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA

PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA

78

PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA DIAGNOSTICO EHRLICHIA Y ANAPLASMA SEXO MACHO.

X

EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA EDAD 4-12 MESES Y DIAGNOSTICO EHRLICHIA

14

79

XI

EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA

80

PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA EDAD 12 A 60 MESES Y DIAGNOSTICO EHRLICHIA.

XII

EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA

81

PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA EDAD MAS DE 60 MESES Y DIAGNOSTICO EHRLICHIA.

XIII

EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA

82

PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA EDAD DE 4 A 12 MESES Y DIAGNOSTICO ANAPLASMA.

XIV

EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA

83

PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA EDAD 12 A 60 MESES Y DIAGNOSTICO ANAPLASMA.

XV

EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA EDAD 12 A 60 MESES Y DIAGNOSTICO ANAPLASMA Y EHRLICHIA.

15

84

XVI

EVALUACION DE CASOS POSITIVOS MEDIANTE LA PRUEBA No. PARAMETRICA PARA UNA SOLA MUESTRA

85

PRUEBA DE CHI CUADRADO PARA PROCEDENCIA EDAD MAS DE 60 MESES Y DIAGNOSTICO ANAPLASMA Y EHRLICHIA. XVII

ANALISIS DE SENSIVILIDAD METODO DE DIAGNOSTICO.

XVIII

TABLA DE χ2 (chi cuadrado)

XIX

86 87

FOTOS DEL PROCESO DE DIAGNOSTICO EN ENFER.

88

HEMATICAS CANINAS EN LA CIUDAD DE MILAGRO. XX

HOJAS DE REGISTRO.

95

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INTRODUCCIÓN En el país es cada vez más notorio el interés de los propietarios de las mascotas por brindarles una mejor atención y cuidado. De ahí surge la importancia de los profesionales en medicina veterinaria, quienes se encargan de asesorar en el control y manejo para poder darles una mejor calidad de vida.

Sin embargo hasta el momento los trabajos de investigación sobre el sinnúmero de enfermedades que aquejan a los cánidos son escasos, y los que hay no se dirigen a áreas específicas como la enorme población de parásitos existentes en climas húmedos tropicales como el nuestro, los cuales son el origen de múltiples padecimientos que afectan el crecimiento y desarrollo normal de nuestras mascotas.

Esto representa una gran pérdida no solo económica sino sentimental, ya que estos seres forman parte de nuestras vidas, están en constante contacto con nosotros y si no tenemos el conocimiento pleno de qué enfermedades pueden atacarlos o a qué riesgos están expuestos en nuestro entorno no sabremos cómo actuar para protegerlos.

Este trabajo investigativo va dirigido a un área específica, que es parte de las enfermedades causadas por parásitos chupadores externos como son: Las garrapatas y los mosquitos, los mismos que son portadores y trasmisores de enfermedades como Ehrlichia, Anaplasma y Lyme, enfermedades transmitidas por las garrapatas y Dirofilariasis enfermedad cuyo vector es el mosco.

El riesgo de que nuestra mascota en su tiempo de vida pueda padecer de una o varias de estas afecciones es alto. El conocimiento sería la única opción que nos llevaría a hacer un buen plan de prevención y cuidado y así garantizar la salud y bienestar de nuestros caninos. Los vectores de estas enfermedades son muy comunes en nuestro medio, ahí radica la importancia de realizar un buen diagnóstico y poder tener la seguridad en

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base a exámenes y sintomatología de que nuestro paciente padece de una de estas afecciones.

La Ehrlichiosis canina, también llamada ehrlichiosis monocítica canina (EMC), pancitopenia tropical canina, tifus canino, fiebre hemorrágica y síndrome hemorrágico idiopático, entre otras denominaciones, es una enfermedad ocasionada por Ehrlichia canis, un microorganismo perteneciente a la tribu EHRLICHIAE, situada entre las Rickettsieae y las Chlamydiales, parásito intracelular obligatorio de las células mononucleares del perro y otros canidos.

La Ehrlichia es un microorganismo pleomórfico, cocoide, anaeróbico y gran (-), del orden rickettsiales, no crece en medios bacteriológicos estándares. Intracelular obligada tanto en el hospedador vertebrado como en el vector invertebrado. Presenta tropismo por células sanguíneas (monocitos, granulocitos o plaquetas) de animales y seres humanos. Trasmitidas por garrapatas, (León, A., 2008).

Anaplasma Phagocytophilum, ex Ehrlichia Phagocytophila, E. equi, y ehrlichiosis granulocitica humana. Es una infección más leve que la causada por E. canis, pero produce una variedad de signos clínicos durante la fase aguda, es menos probable que alcance la cronicidad, en comparación de E. canis. Sin embargo la reaparición de la infección puede ocurrir si el animal es posteriormente inmunosuprimido en los meses siguientes a la presentación de la infección. (Fisher, M. y John. 2007).

Enfermedad de Lyme, enfermedad bacteriana zoonótica común de los perros, trasmitida por garrapatas, que causa artritis recurrente con claudicación y ocasionalmente glomerulonefritis, enfermedad cardiaca y neurológica. (Bowman, D. 2007). La Dirofilariasis, enfermedad causada por el gusano filaria Dirofilaria inmitis. Las microfilarias se desarrollan en varias especies de mosquitos cuando estos se alimentan de la sangre del perro, estas entran a través de las lesiones de la picadura,

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luego migran al ventrículo derecho y arterias pulmonares, apareciendo en la circulación de 6 a 7 meses después de la infección. (Vademécum veterinario.2002).

Este grupo de enfermedades de las cuales algunas tienen la capacidad de afectar al humano, se encuentran en nuestro entorno nuestras mascotas y nosotros convivimos con ellas a diario, un correcto diagnóstico en sus primeros estadios puede ser la diferencia.

Con la presente investigación sobre la incidencia de enfermedades hemáticas trataremos de solucionar las pérdidas de las mascotas que ocurren en milagro, obteniendo el bienestar de sus propietarios.

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I OBJETIVOS.

1.1. Objetivo General. Determinar la incidencia de enfermedades hemáticas en caninos en la ciudad de milagro.

1.2. Objetivos Específicos. 1.2.1. Graficar la zona de mayor incidencia de estas enfermedades. 1.2.2. Precisar la enfermedad hemática más frecuente. 1.2.3. Indicar de acuerdo a la edad quienes son más susceptibles.

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II. REVISIÓN DE LITERATURA 2.1. GENERALIDADES.

Birchard y Sherdin, (1996), afirman que la Ehrliquiosis canina es una enfermedad causada por rickettsias, relativamente común en perros, la cual recientemente ha sido confirmada como zoonosis. Los sinónimos utilizados en literatura para este trastorno incluyen enfermedad de los perros rastreadores, pancitopenia canina tropical, fiebre hemorrágica canina y tifus canino. Su distribución es mundial y logró prominencia en el medio y entre los veterinarios durante la guerra de Vietnam, cuando una gran proporción de perros militares contrajeron esta enfermedad. Debido a su naturaleza crónica e insidiosa, la ehrliquiosis es prevalente durante todo el año más que solo los meses calurosos.

2.2. AGENTE ETIOLÓGICO. Simon, (2007), señala que la Ehrlichia canis es un agente infeccioso de la familia Rickettsiacae, pleomorfico intracelular obligado. Existe un gran número de ehrlichia identificadas recientemente que provocan enfermedad en el perro y en el humano, así como afecta a muchos animales domésticos. La enfermedad clásica es una enfermedad con curso agudo a crónico que está provocada por una infección a las células mononucleares. Kirk, (1994), escribe que las Ehrliquiosis son enfermedades veterinarias y humanas trasmitidas por las garrapatas y causadas por las bacterias del género ehrlichia,

familia

rickettisiaceae.

Los

microorganismos

son

parásitos

intracelulares obligados gran negativos y pleomorfos. Dentro de sus huéspedes mamíferos las bacterias muestran tropismos por leucocitos y se multiplican dentro de endosomas, produciendo inclusiones citoplasmáticas llamadas mórulas. 2.3. DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA.

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Bermeo, (2003), comenta que la Ehrlichiosis se ha encontrado en Japón, Malasia y Estados Unidos, siendo los agentes etiológicos para los países asiáticos E. sennetsu y para los Estados Unidos E. chaffeensis.

En general los vectores para la Ehrliquiosis tanto humana como animal son las garrapatas, de las cuales se han caracterizado cuatro distintos géneros que son: Amblyomma, Dermacentor, Rhipicephalus e Ixodes. En México se han descubierto hasta ahora humanos a E. chaffeensis y el perro a E. canis.

2.4. TAXONOMIA TRIBU EHRLICHIEAE.

Sánchez, (2001), publica: ORDEN: Rickettsiales FAMILIA: Rickettsiaceae TRIBU:

Ehrlichieae

GÉNERO: Ehrlichia

Cowdria

ESPECIE: E. canis

C. ruminatum

E. chaffensis

Neorickettsia N. helminthoeca N. elokominica

E. equi E. ewingii E. granulocitica humana E. phagocytophila E. platys E. risticii E. sennetsu

2.5. BREVE HISTORIA.

Sánchez, (2001), menciona que la Ehrlichia fue identificada en 1935 en el Instituto Pasteur de Argelia por Donatein y Lestoquard tras observar que algunos

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perros infectados por garrapatas desarrollaban ocasionalmente un proceso febril agudo que cursaba con anemia. En las extensiones sanguíneas de los perros infectados observaron unos pequeños microorganismos en el interior de monocitos, creyendo en un momento que podría tratarse de una especie de Rickettsia, por lo que recibió el nombre de Rickettsia Canis. Casi una década después, Moshkovskii sustituyo ese nombre por el actual Ehrlichia Canis, como reconocimiento a Paul Ehrlich, gran bacteriólogo alemán. A partir de entonces se describieron casos de ehrlichiosis canina en distintos países del centro y sur del África, en la India y en Estados Unidos, siendo considerada como una enfermedad leve caracterizada por presentación de fiebre, vómitos y secreción oculo-nasal. En la década del sesenta se describió en perros militares británicos destacados en Singapur y en perros americanos destacados en Vietnam, un proceso patológico agudo que cursaba con manifestaciones hemorrágicas graves, pancitopenia y emaciación, causando un gran número de bajas en estas poblaciones caninas. Debido a dudas surgidas en torno a su etiología, este proceso recibió muchos nombres tales como rickettsiosis canina, tifus canino, fiebre hemorrágica canina, síndrome hemorrágico idiopático, enfermedad del perro de rastreo y pancitopenia tropical canina, si bien el más aceptado fue este último. Años más tarde, distintos trabajos señalaron a la E. canis como el agente causal de la pancitopenia tropical canina, comprobándose que el poder patógeno de estos microorganismos no era tan benigno como se pensaba, al menos en ciertas poblaciones caninas. Gómez, (2007), refiere que la Ehrlichia fue descrita por primera vez por DONATEIN y LESTOQUARD en perros en ARGELIA en 1935. El primer reporte en las ANTILLAS fue en 1957 en perros de la isla de ARUBA. USA Y SUDAMERICA en 1962.

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2.6. MORFOLOGÍA. Bermeo,(2003), escribe que la Ehrlichia canis es un microorganismo pleomórfico, cocoide y gran negativo que se observa en forma individual (cuerpo elemental) o en racimo (mórulas), en el citoplasma de leucocitos infectados, principalmente linfocitos y monocitos, cuando se emplean colorantes tipo Romanowsky. Cuando están aisladas se denominan cuerpos elementales y miden 0.4 micras de diámetro, pero que tienden a agregarse, formando inclusiones inmaduras denominadas ¨cuerpos iniciales¨ que miden de 0.4 a 2.5 micras de diámetro, para luego formar una mórula, la cual se puede distinguir con mayor facilidad por su mayor tamaño que varía entre 1 y 4 micras. Morfológicamente las otras variedades son similares, sin embargo, E. platys infecta específicamente a las plaquetas y E. equi principalmente neutrófilos y eosinófilos. La E. canis es considerada agente causal de la ehrlichiosis humana. Bermeo, (2003).

2.7. CICLO DE LA EHRLICHIA CANIS. Angulo, (2005) acota que: DAVOUST (1993) Y GREGORY (1990) citados por VIGNARD-ROSEZ (2002), sostienen que el ciclo de la EHRLICHA está constituido por tres fases: 1. Penetración de los cuerpos elementales en los monocitos, en los cuales permanecen en crecimiento por aproximadamente 2 días. 2. Multiplicación de Ehrlichia por un periodo de 3 a 5 días, con la formación de los cuerpos iníciales. 3. Formación de las mórulas estando estas formadas por un conjunto de cuerpos elementales envueltos por una membrana.

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DAVOUST (1993); COUTO (1998) citados por VIGNARD-ROSEZ (2002) señalan que en una misma célula podemos encontrar más de una mórula, esta permanece en la célula hospedera entre 3 a 4 días para luego ser liberada por lisis celular.

2.8. VECTORES.

Schaer, (2006), sostiene que la garrapata marrón del perro, Rhipicephalus sanguineus, es el artrópodo vector de E. canis. Aunque las garrapatas vectores no sirven de reservorio de la infección, son capaces de albergar organismos infecciosos durante un año y pueden trasmitir la enfermedad a perros susceptibles durante al menos 155 días después de la infección.

2.9. TRANSMISIÓN. Sainz,(2010), menciona que en general, Ehrlichia sp. se transmite por la picadura de garrapatas. En concreto, en el caso de E. canis existe un único vector conocido: Rhipicephalus sanguineus. Esta garrapata al alimentarse de un perro con ehrlichiosis, puede ingerir glóbulos blancos con ehrlichia en su citoplasma. Este hecho es mucho más frecuente si la garrapata se fija a perros en fase aguda de la enfermedad, ya que es en esta fase cuando se encuentra un mayor número de leucocitos infectados en sangre. Hibter et. al,(1986). La transmisión de E. canis en la garrapata es de tipo trans-estadial, es decir, de larva a ninfa y de ninfa a adulto, sin que se haya podido demostrar hasta el momento la existencia de transmisión trans-ovárica (de una generación de garrapatas a la siguiente). Brichard, (1986), escribe que al vector y reservorio es la garrapata café común del perro (Rhipicephalus sanguíneus), que transmiten microorganismos por lo menos durante cinco meses posinchamiento.

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La ehrliquiosis así como otras enfermedades provocadas por Rickettsias, pueden ser transmitidas en forma yatrogena por transfusiones con sangre contaminada. El periodo de incubación es de siete a veintiún días. El microorganismo se transmite a través de la mordida de las garrapatas, las cuales ingieren el microorganismo de un huésped infectado.

2.10. FISIOPATOLOGÍA. Schaer, (2006), escribe que normalmente, la ehrlichiosis monocítica canina se caracteriza por una reducción de los elementos celulares sanguíneos. E. canis provoca fases: aguda, sub clínica y crónica de la enfermedad. Durante la fase aguda el organismo se multiplica en las células mono nucleares del hígado, bazo y ganglios linfáticos. Las células infectadas se transportan a través de la sangre a otros tejidos, especialmente a las meninges, pulmones y riñones, donde se fijan al endotelio vascular produciendo vasculitis e infección del tejido subendotelial. Durante esta fase aparece trombocitopenia debido al consumo, secuestro y destrucción de las plaquetas. La anemia se desarrolla progresivamente debido a la supresión de la eritropoyesis y a la destrucción acelerada de eritrocitos. Durante la fase sub clínica, la persistencia de la trombocitopenia, leucopenia y anemia es variable. La enfermedad crónica ocurre en los perros incapaces de desarrollar una respuesta inmune eficaz frente al microorganismo. La página galgos publica que una vez la garrapata transmite la infección al perro, el período de incubación puede variar de 8 a 20 días. Tras este, el animal puede pasar por tres fases clínicas consecutivas.

En la primera fase (fase aguda) los animales demuestran pérdida de apetito, apatía, pérdida de peso, aumento del tamaño de los ganglios (linfadenopatia), aumento del tamaño del hígado y/o bazo, tendencia a hemorragia, signos neurológicos (como temblores o síntomas derivados de la presencia de la

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Ehrlichia en las meninges), diferentes grados de dolor más o menos localizado, dificultad respiratoria (disnea). Esta fase aguda suele resolver en 12 semanas aún sin tratamiento, cuando los síntomas son leves, incluso puede pasar completamente desapercibida.

La segunda fase tiene lugar 6-9 meses después de la infección. En esta fase únicamente se aprecia alteraciones en analítica (principalmente disminución del número de plaquetas, y en el resto de células sanguíneas).

Si el sistema inmune es inefectivo, el animal entrará en la tercera fase (fase crónica), desarrollándose antes o después una serie de signos clínicos que en algún caso pueden comprometer gravemente la vida del paciente. Los principales son los descritos en la fase aguda como hemorragias, distintos grados de anemia, adelgazamiento, debilidad, alteraciones neurológicas, infecciones bacterianas por la inmunodepresión que se produce.

2.11. SISTEMAS AFECTADOS. Barr, (2007), acota que la afección multisistémica, tendencia hemorrágica por trombocitopenia y vasculitis, linfadenopatia, esplenomegalia, sistema nervioso, ojos (uveítis anterior), y pulmones rara vez afectados por la vasculitis.

2.12. PATOGENIA.

Beer, (1983), sostiene que la infección de los vertebrados ocurre cuando la garrapata se alimenta de sangre y sus secreciones salivales contaminan el sitio donde muerde.

Después de una incubación de ocho a veinte días, sobrevienen las tres etapas de la enfermedad en las infecciones naturales y experimentales.

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La fase aguda dura de dos a cuatro semanas. La replicación del microorganismo ocurre dentro de mononucleares infectados, entonces el microbio se disemina a órganos que contienen fagocitos mono nucleares. Estos órganos blancos incluyen el bazo, hígado y ganglios linfáticos. La hiperplasia linforreticular resultante puede agrandar el órgano. Las células enfermas en apariencia,

atacan

la

microbasculatura

o migran a

las

superficies

subendoteliales de los órganos blancos y se produce vasculitis o inflamación.

La disminución de la vida de las plaquetas (no merma su producción), causa trombocitopenia. La destrucción plaquetaria o la utilización origina vasculitis y respuesta inflamatoria o respuestas inmunológicas o de coagulación del huésped, que causan trombocitopenia. La disfunción plaquetaria ocurre de forma directa por la infección o interferencia por hiperglobulinemia. El número de leucocitos varía durante la fase aguda. Sin embargo el aumento del secuestro por mecanismos inmunológicos o inflamatorios que utilizan leucocitos circulantes puede disminuir el número. También llega a verse menor producción de células rojas como resultado de la respuesta inflamatoria. La fase subclínica de la ehrliquiosis se relaciona con la persistencia del microbio y el aumento de la respuesta de anticuerpos. Esta refleja la ineficacia del huésped para eliminar el microorganismo intracelular. Cabe persistan hallazgos hematológicos similares a la fase aguda durante este estadio de la enfermedad, aun sin signos clínicos. Una respuesta inmune ineficaz del huésped origina la fase crónica. La gravedad de la enfermedad se relaciona con la cepa del germen infectante, enfermedades concomitantes, susceptibilidad de raza y edad del animal. La producción alterada de la médula ósea de elementos sanguíneos es la principal característica de ésta fase.

2.13. SIGNOS CLÍNICOS Y ANORMALIDADES DE LABORATORIO.

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Rhea, (2004), menciona que los signos clínicos varían en las diferentes fases de la enfermedad.

Fase aguda: Los signos clínicos y los datos del examen físico son principalmente el resultado de la hiperplasia diseminada del SFM. (linforreticular) y de anormalidades hematológicas. Por lo tanto en la presentación clínica predominan signos como: pirexia, linfadenopatia generalizada, esplenomegalia, hepatomegalia, disnea o intolerancia al ejercicio debida a neumonitis signos neurológicos causados por meningoencefalitis, y petequias y equimosis causados por trombocitopenia. Los títulos de anticuerpos pueden ser negativos durante esta fase, ya que se requieren tres semanas para que se desarrollen títulos significativos.

Las anormalidades hematológicas y bioquímicas incluyen: trombocitopenia anemia leve a intensa, leucopenia o leucocitosis, citología de la médula ósea hipercelular, hiperglobulinemia leve y elevaciones ligeras de la actividad de las enzimas hepáticas.

Fase subclínica: Los pacientes están asintomáticos. Pueden identificarse cambios hematológicos y bioquímicos leves.

Fase crónica: Los signos clínicos pueden ser leves o intensos, se desarrollan entre 1 a 4 meses después de la inoculación del microorganismo, y reflejan las anormalidades de la hiperplasia del SFM y hematológicas. Se puede observar cualquiera de los siguientes signos: pérdida de peso, pirexia, sangrado espontáneo, palidez debida a la anemia, linfadenopatia generalizada, hepatosplenomegalia, uveítis anterior o posterior, o ambas, signos neurológicos causados por meningoencefalomielitis y edema intermitente de los miembros.

Birchard y Sherding mencionan que las anormalidades hematológicas y bioquímicas en general son pronunciadas e incluyen: monocitopenia, bicitopenia o pancitopenia debido a la hipoplasia de la medula ósea;

29

plasmacitosis de la medula ósea o esplénica; linfocitosis en ocasiones compuesta de grandes linfocitos granulares; hiperglobulinemia causada por gammapatia policlonal (o menos a menudo monoclonal); hipoalbuminemia y proteinuria.

PUNTO CLAVE: Los signos clínicos, datos físicos y anormalidades de laboratorio en perros con ehrliquiosis crónica pueden semejarse al mieloma múltiple o la leucemia linfocitica crónica. Rhea, (2004), menciona que la existencia simultánea de otras enfermedades transmitidas por garrapatas o protozoos puede alterar la presentación clínica.

Las manifestaciones clínicas varían en función de la fase de enfermedad y puede ser más grave en el caso de las infecciones crónicas: Fiebre, letargo, anorexia, pérdida de peso. Linfadenomegalia, esplenomegalia. Petequias, equimosis, epistaxis. Cambios oculares: uveítis anterior, coriorretinitis, hemorragias retinianas. Convulsiones, ataxia, síndrome vestibular, temblor intencional, hiperestesia espinal. Poliartritis, edema periférico, miositis.

La gravedad viene determinada por cierto número de factores como la edad, raza (predisposición por pastor alemán) y estado inmunitario del hospedador Shaw y Cols., (2001ª). Especie y cepa de Ehrlichia. Infección asociada con otros patógenos transmitidos por garrapatas.

La enfermedad dividida en un principio en formas monociticas y granulociticas se clasifican ahora en genogrupos: Es difícil atribuir un grupo de manifestaciones clínicas a cualquier genogrupo o a formas específicas monociticas/granulociticas. Las infecciones naturales por E. Canis y E. Chaffeensis pueden provocar enfermedad más grave (ehrlichiosis clásica) que E.ewingee.

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Green, (1993), acota que las manifestaciones oculares en la ehrliquiosis canina resultan de trombocitopenia por hemorragias o por una reacción inflamatoria; las hemorragias varían de petequias a hemorragias masivas orbitales u oculares. Los signos oculares adicionales son uveítis anterior bilateral, glaucoma secundario, desprendimientos retinianos exudativos, cotiorretinitis y papiledema.

2.14. LESIONES.

Merck, (2000), menciona que: durante la etapa aguda las lesiones generalmente no son específicas, pero es común observar esplenomegalia y pulmones decolorados. Histológicamente se evidencia una hiperplasia linforreticular y manguitos peri vasculares linfociticos y plasmáticos. En los casos crónicos esta lesión puede ir acompañada de hemorragias difusas y a un aumento de la infiltración en los órganos de células mononucleares.

2.15.

ALTERACIONES

BIO

PATOLÓGICAS:

HEMATOLOGIA,

BIOQUÍMICA SANGUINEA Y URIANÁLISIS.

Sánchez, (2001), refiere que en la Ehrlichia de todos los hallazgos hematológicos que podemos encontrar en la Ehrlichiosis canina, es la trombocitopenia la más frecuente en perros con esta enfermedad, apareciendo de los 15 a 20 días de postinfección y pudiendo persistir durante todas las fases de la enfermedad.

En fases agudas, la trombocitopenia se debe a un descenso en la vida media de las plaquetas, más que a una disminución en su producción. Diferentes mecanismos inmunomediados e inflamatorios motivan el secuestro, consumo y destrucción prematura de las plaquetas en el bazo, acortando su vida media.

Recientemente se han detectado anticuerpos antiplaquetarios en perros infectados por E. canis. También se relaciona la trombocitopenia con el

31

consumo de plaquetas secundario a la vasculitis que se presenta en el curso de la ehrlichiosis. Junto a la existencia de trombocitopenia, también se pueden presentar alteraciones en la funcionalidad plaquetaria, fundamentalmente en cuanto a su agregación y migración en la sangre, la cual parece estar inhibida por una sustancia sérica (denominada factor de inhibición de migración plaquetaria) producida por los linfocitos B. Este factor parece ser capaz de impedir la formación de pseudópodos en las plaquetas y de inducir cambios en su superficie haciéndolas así más susceptibles a la destrucción por células del sistema mononuclear fagocitario.

En nuestra experiencia alrededor del 80% de los casos con Ehrlichiosis presentan trombocitopenia. El recuento plaquetario no siempre se relaciona con la gravedad de las hemorragias descubriéndose, en ocasiones, importante variaciones diarias en este parámetro analítico. En este sentido, hemos atendido algunos perros con recuentos de plaquetas inferiores a 10.000/mm3 sin hemorragias mientras que con otros recuentos normales pueden tener síntomas de este tipo debido a alteraciones en la funcionalidad plaquetaria.

También la anemia es un hallazgo frecuente en el curso de la ehrlichiosis canina; durante la fase aguda, será regenerativa debido al aumento de la destrucción de los hematíes por mecanismos inmunológicos. Un elevado número de perros con anemia regenerativa serán positivos al test de Coombs, lo cual debe ser tenido en cuenta para no incurrir en errores diagnósticos. Estos resultados

sugieren

la

existencia

de

una

unión

inespecífica

de

inmunoglobulinas a los eritrocitos o de un proceso autoinmune especifico por la existencia de anticuerpos frente a la superficie eritrocitaria, lo cual podría contribuir a la instauración de un cuadro hemolítico agudo en algunos perros con ehrlichiosis.

Posteriormente, en fases crónicas la anemia será no regenerativa debido a la destrucción continuada de eritrocitos, la perdida crónica de sangre y la

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existencia de hipoplasia o aplacía medular. En casos de infección concurrente con babesia canis o una hemorragia reciente, la anemia puede adquirir un cierto carácter regenerativo.

El recuento leucocitario es uno de los parámetros más variables en la ehrlichiosis canina, pudiendo presentarse tanto leucopenia como, menos frecuentemente, leucocitosis.

También se han encontrado, en relación con la serie blanca, diferentes alteraciones como neutropenia, linfocitosis y monocitosis. Además se ha señalado la presencia en la fase crónica, de linfocitos con granulación azurofla debido a la estimulación constante del sistema inmunitario, granulación que lógicamente no se especifica de la ehrlichiosis y que podría confundirse con inclusiones compatibles con ehrlichia.

En algunos casos se pueden ver en sangre circulante células anormales o indiferenciadas, pudiendo confundirse con aquellas que aparecen en alteraciones mieloproliferativas.

Llama la atención el hecho de que pese a que la ehrlichiosis históricamente recibió el nombre de “pancitopenia tropical canina”, realmente el número de casos con “pancitopenia” es bajo ( en torno al 15%), tratándose generalmente de animales con pronóstico reservado, en fase crónica de la enfermedad con hipoplasia o aplacía medular.

Los hallazgos en la médula ósea varían en función de la fase y la gravedad de la infección, a excepción de la plasmacitosis que suele observarse con mucha frecuencia. Durante la fase aguda y subclínica se produce una hipercelularidad de las series megacariocítica y mieloide. Algunos autores describen la existencia de hipoplasia eritroide en este periodo. En la fase crónica la medula ósea es hipoplasica, afectando a todas las líneas celulares y provocando, por tanto, la típica pancitopenia ya comentada. Sin

33

embargo, ocasionalmente se ha observado normocelularidad e hipercelularidad medular con megacariocitosis y aumento en el número de mastocitos. BIOQUÍMICA SANGUÍNEA.

En cuanto a la bioquímica sanguínea, debido al estudio antigénico, la hiperproteinemia motivada por una hiperglobulinemia es un hallazgo muy frecuente en perros con ehrlichiosis. De hecho aproximadamente el 75% de los casos

de

nuestra

hiperglobulinemia.

serie Los

cinca niveles

presentaban

hiperproteinemia

séricos

globulinas

de

con

aumentan

progresivamente en el curso de la enfermedad y adquieren unos valores elevados de la primera a la tercera semana postinfección.

En la fase crónica, se detectan aumentos importantes de las gamma-globulinas y descenso en la concentración de albúmina; la fracción betaglobulina también puede presentar valores elevados. La hiperglobulinemia puede ser indicativa de una respuesta inmunitaria humoral tan exacerbada como inefectiva.

El proteinograma es una técnica habitualmente empleada en el control posttratamiento de perros con ehrlichiosis. Durante la fase crónica el estudio electroforético de las proteínas séricas suelen mostrar la existencia de una gammapatia policlonal, con aumento de las fracciones alfa-2, beta y gammaglobulinas. Con menos frecuencia se han detectado gammapatias con aspecto monoclonal, por aumento de igG. En cualquier caso tras el tratamiento, los niveles de globulinas se suelen normalizar entre los tres y nueve meses post-tratamiento, aunque a veces es necesario esperar incluso hasta más de 18 meses.

La hipoalbuminemia se presenta durante la fase aguda y, normalmente, desaparece en la subclínica, describiéndose también en las fases crónicas. Esta hipoalbuminemia puede deberse a su empleo en procesos inflamatorios, pérdida de peso, proteinuria, malnutrición, hepatopatía concurrente, perdida de

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proteínas a nivel periférico debido a la existencia de edemas y compensación debida a la hiperglobulinemia. No obstante, la existencia de una relación inversamente proporcional entre la cantidad de proteína perdida en la orina y la concentración sérica de albúmina, en perros infectados experimentalmente, ha hecho que la proteinuria sea el factor al que mayor importancia se le conceda en este sentido.

Los aumentos de creatina por encima de los valores fisiológicos de referencia pueden tener un origen prerenal o renal. Así, se presentan casos de uremia asociados a glomerulonefritis y a plasmocitosi intersticial renal, que suelen tener peor pronóstico.

Los parámetros analíticos indicadores de la funcionalidad hepática suelen presentar valores normales en perros con ehrlichiosis. Sin embargo, se han descrito aumentos de la ALT (GPT) y de la fosfatasa alcalina, fundamentalmente en la fase aguda; estos pueden también acompañarse de hiperbilirrubinemia.

En estos casos con la instauración de una terapia asintomática apropiada junto a la específica para ehrlichiosis, estos valores a veces disminuyen hasta niveles fisiológicos, excepto en aquellos animales en los que como consecuencia de la ehrlichiosis se ha producido una lesión hepática irreversible.

En el caso de presentarse problemas hemorrágicos, el tiempo de hemorragia y el de retracción del coagulo pueden estar prolongados por la existencia de trombocitopenia o de trombocitopatia.

Sin embargo el tiempo de protrombina, el tiempo de tromboplastina parcial activada y los productos de degradación de fibrinógeno suelen ser normales, excepto en el caso de que se haya instaurado un cuadro de coagulación intravascular diseminada.

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URIANALISIS.

Normalmente, no suele ser habitual realizar urianalisis en perros con ehrlichiosis, salvo si nuestro paciente tiene hipoalbuminemia o insuficiencia renal. Sin embargo es interesante saber que en un alto porcentaje de perros con ehrlichiosis se puede encontrar proteinuria y hematuria, con o sin uremia, relacionándose con la existencia de lesiones glomerulares inmunomediadas.

LÍQUIDO CEFALORRAQUÍDEO Y LÍQUIDO SINOVIAL

El análisis de líquido cefalorraquídeo en perros con sintomatología neurológica muestra elevados niveles de proteínas y pleocitosis mononuclear con gran número de linfocitos y células plasmáticas.

El líquido sinovial, en casos con artritis, suele presentar una coloración amarillenta con aumento de la concentración de proteínas y del recuento celular, con predominancia de neutrófilos maduros (75%) y con algunos macrófagos y linfocitos.

Aunque ocasionalmente, las típicas mórulas pueden visualizarse tanto en líquido sinovial como en el cefalorraquídeo.

2.16. DIAGNÓSTICO.

Kirt, (1994), refiere que el diagnóstico de la ehrlichiosis debe iniciarse con la sospecha, que se basa en signos clínicos consistentes en un paciente que estuvo en una región endémica de garrapatas durante una a tres semanas antes de la enfermedad. La forma más rápida de diagnosticar ehrliquiosis, es el hallazgo de mórulas citoplasmáticas dentro de leucocitos circulantes infectados. Es frecuente observar mórulas en la circulación durante la ehrliquiosis granulocitica y por el contrario rara vez se identifica en la ehrliquiosis monocítica.

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Las pruebas serológicas son el estudio fundamental para el diagnóstico de infecciones ehrliquiales, específicamente la inmuno fluorescencia indirecta, aunque tiene varios inconvenientes. Primero, la identificación de una cero conversión del cuádruplo (incremento) al antígeno apropiado (es decir una especie específica de ehrlichia) es retrospectivo y por lo tanto un medio deficiente para tomar decisiones terapéuticas en una enfermedad aguda.

Rhea, (2004), menciona que en la Ehrlichiosis se presentan las siguientes anomalías:

ANOMALÍAS HEMATOLÓGICAS:

-Trombocitopenia, aunque en ocasiones la cifra de plaquetas es normal. -Anemias variables: no regenerativas, regenerativas, inmunomediadas. -Leucopenia, sobretodo neutropenia. -Pancitopenia: habitualmente en la fase crónica. -La linfocitosis es posible.

CAMBIOS DE LA BIOQUÍMICA SÉRICA:

-Hiperproteinemia:

hiperglobulinemia

mono

o

policlonal

con

hipoalbuminemia. -Aumento de la alanina transaminasa y de la fosfatasa alcalina. -La azoemia es posible.

RESULTADO DE LOS ANALISIS DE ORINA: -Proteinuria. -Disminución de la densidad específica de la orina. -En animales inmunodeprimidos es posible la aparición de infecciones secundarias con bacteriurias.

POSIBLEMENTE PARÁMETROS DE COAGULACIÓN ANÓMALOS:

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-Prolongación del tiempo de coagulación activado. -Tiempo de hemorragia prolongado sobre todo a causa de la disfunción de las plaquetas. -En ocasiones se aprecian tiempos de protrombina y de tromboplastina parcial prolongados.

ANÁLISIS DEL LÍQUIDO CEFALORAQUÍDEO (LCR): -Aumento de proteínas, pleocitosis linfocítica.

CITOLOGÍA DE LA MÉDULA OSEA: -Líneas celulares híper o hipoplásicas con infiltrados de células plasmáticas.

ARTROCENTESIS: -Inflamación neutrofílica.

IDENTIFICACIÓN DEL MICROORGANISMO:

-Extensiones de sangre o médula ósea. -Líquido articular, LCR (raro).

PRUEBAS INMUNOLÓGICAS:

PRUEBAS SEROLÓGICAS: -La prueba indirecta de anticuerpos inmunofluorecentes (IFI) es la más habitual. -Los anticuerpos se detectan 2 – 7 días después de la infección, alcanzan un pico entre 2 – 5 meses y pueden persistir durante largos periodos. -Algunos perros asintomáticos en aéreas endémicas pueden presentar títulos positivos. -Hay una reacción cruzada serológica entre las diferentes especies de ehrlichia.

PRUEBA DE WESTERN INMUNOBLOT.

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PRUEBAS DE PCR UTILIZANDO CEBADORES ESPECÍFICOS PARA CADA ESPECIE.

En un artículo traducido por la Universidad de Argentina se menciona que la mayoría de los caso de ehrlichiosis canina ocurre en áreas endémicas durante la primavera y los meses de verano cuando la población de garrapatas es más activa. El diagnóstico se basa en la anamnesis, presentación clínica y hallazgos patológicos al examen clínico y se confirma con la prueba de laboratorio. El diagnóstico se confirma con la visualización de las mórulas en los monocitos circulantes, detección del aumento en suero contra E. canis, o la demostración del ADN de E. canis mediante la reacción de la cadena de polimerasa (PCR). Actualmente, la prueba de inmunofluorescencia indirecta de anticuerpos (IFA) usando antígenos de E. canis es el test serológico más aceptable.

La prueba DOT-ELISA se ha desarrollado recientemente para usar en clínica. Estas pruebas requieren un mínimo equipo y permitirán un diagnóstico serológico de EMC ampliamente disponible. Promete ser una prueba clínica auxiliar de diagnóstico de gran valor para esta enfermedad.

Cuando se determina el título de anticuerpos contra E. canis mediante la prueba de inmunofluorescencia indirecta (IFA) en perros, es esencial que el clínico tenga en cuenta las reacciones cruzadas que se pueden presentar y pueden confundir el diagnóstico. En áreas endémicas a otras especies de Ehrlichia las reacciones cruzadas entre E. canis, y E. ewingii, E. equi o E. risticii deben tenerse en cuenta.

2.17. DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL. Beer, (1993), escribe que en la Ehrlichiosis se tendrán en cuenta las babesiosis y leishmaniosis. También se excluirán las parasitaciones por vermes y las enfermedades carenciales.

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La forma cutánea de la rickettsiosis se parece a la forma exantemática del moquillo del perro.

2.18. TRATAMIENTO.

Barr, (2007), dice que el paciente internado: estabilización médica inicial para anemia y/o tendencia hemorrágica resultante de trombocitopenia (solución electrolítica equilibrada o transfusión sanguínea si se la indica).

Paciente ambulatorio: casos estables, monitorear con frecuencia HC y la respuesta a la medicación.

Doxiciclina: se observa una mejoría rápida (dentro de las 72 horas del comienzo del tratamiento) del recuento plaquetario en casos agudos. Imidocarb dipropinato (imazol [Schering-Plough Animal Health, Union, NJ]): eficaz contra Ehrlichia canis y babesiosis; alternativa razonable para la doxiciclina; un pre tratamiento con atropina puede disminuir los efectos adversos anti colinérgicos (salivación, secreción nasal serosa, diarrea).

Glucocorticoides (solo en perros; los gatos tratados con esteroides no eliminan la infección cuando reciben doxiciclina): puede estar indicado cuando la trombocitopenia amenaza la vida (que se cree es el resultado de mecanismos inmunomediados); debido a que la trombocitopenia inmunomediada es un diagnóstico diferencial principal, puede estar indicado hasta que este disponibles los resultados de las pruebas serológicas, y no afectarán el desenlace si el diagnóstico final es ehrlichiosis. Esteroides androgénicos (oximetolona o nandrolona decanoato): para estimular la producción de médula ósea en perros crónicamente afectados con médula hipoplásica.

La tetraciclina (y derivados): no usar en perros menores de 6 meses de edad (los dientes se amarillean permanentemente); no usar con insuficiencia renal

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(intentar doxiciclina que puede ser excretada a través del sistema gastrointestinal).

Enrofloxacina: no es eficaz contra E. canis.

Glucocorticoides: el uso prolongado a niveles inmunosupresores puede interferir con la depuración y eliminación de E. canis después del uso de tetraciclina.

FARMACOTERAPIA PARA EHRLICHIOSIS EN PERROS Y GATOS.

MEDICAMENTO

ESPECIE

DOSIS MG/K

VIA

INTERVALO(HORAS)

DOXICICLINA

P,G

10

ORAL

24

DURACIÓN (DIAS) 28 DIAS

IMIDOCARB

P,G

5

IM

1 VEZ*

-

PREDNISONA

P

1

ORAL

12

OXIMETOLONA

P

2

ORAL

24

NANDROLONA

P

1,5

IM

SEMANAL

14ä HASTA RESPUESTA HASTA LA RESPUESTA

* REPETIR DOS SEMANAS DESPUÉS; REALIZAR TRATAMIENTO PREVIO CON ATROPINA.

Ä

DISMINUIR

GRADUALMENTE

LA

DOSISMIENTRAS

MEJORA

LA

TROMBOCITOPENIA; REALIZAR REDUCCIÓNES DEL 50% CADA 2 SEMANAS.

P; PERROS, G; GATOS

Green, (1993), recomienda el cloranfenicol para cachorros menores de cinco meses a fin de evitar la coloración amarillenta de los dientes que brotan. El cloranfenicol puede ser más eficaz que la tetraciclina para eliminar la infección (15 a 20 mg por kilo p.v. por vía oral intravenosa o subcutánea cada 8 horas por 14 días). Sin embargo por riesgos de salud pública relacionados con su uso y por su interferencia directa con las síntesis del grupo hemo y de medula ósea,

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su utilización en perros con anemia o pancitopenia debe evitarse cuando es posible.

Se debe corregir la deshidratación con soluciones balanceadas con electrolitos; también puede requerirse transfusiones sanguíneas en los animales con anemia grave. Es factible utilizar sangre fresca o plasma rico en plaquetas por que estas se inactivan con la refrigeración o congelación. La fenilefrina o epinefrina intranasales ayudan a controlar la epistaxis grave en situaciones de emergencia. La estimulación de la medula ósea con andrógenos tiene utilidad en los perros con supresión de la producción de la medula ósea y pancitopenia. Se usa oximetolona oral una vez al día o decanoato de nandrolona; cave administrar intramuscular una vez a la semana.

2.19. PRONÓSTICO Y PREVENCIÓN.

Birchard, (1996), acota que el pronóstico de la Ehrlichiosis canina es reservado aún con el tratamiento apropiado, a menos que la médula ósea se encuentre muy hipoplasica. La respuesta clínica en las formas crónicas puede tardar de tres a cuatro semanas. La forma crónica de la enfermedad parece ser un poco más grave en perros Pastor alemán y Doberman pinscher.

El control de la garrapata constituye el punto principal para la prevención de la ehrliquiosis. Pueden usarse dosis bajas de tetraciclina o doxiciclina en áreas endémicas durante la temporada de garrapatas (tetraciclina, 3 mg/kg, PO, cada 24 horas; o doxiciclina, 1-2 mg/kg, PO, cada 24 horas).

Fisher, (2007), menciona que la ehrlichiosis se trasmite normalmente por mordedura de garrapatas, por lo que la prevención se basa en la detención de la fijación y la alimentación de las garrapatas. Los dueños que planifican un viaje a un área endémica, deben estar advertidos de la importancia de un control adecuado contra las garrapatas. Evitar las áreas de alto riesgo como bosques, montes, prados o matorrales, incluido parques, en especial durante la época que

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va desde la primavera hasta otoño en áreas templadas, cuando la actividad de la garrapata es más alta. Sin embargo las garrapatas se agarran y se alimentan en cualquier época del año, en especial en la áreas tropicales y sub tropicales. La Rhipicephalus Sanguineus se encuentra en áreas que los perros frecuentan como las perreras. Usar un acaricida/repelente eficaz. Aplicar los productos antes de cualquier exposición y volverlos a aplicar en forma regular siguiendo las instrucciones del prospecto. Revisar al animal a diario y extraer las garrapatas encontradas

2.20. SALUD PÚBLICA.

Guanin, (2000), menciona que la Ehrlichia canis o especies muy relacionadas se han identificado como causantes de enfermedad en humanos. La mayoría de los reportes se refieren a casos del sur y regiones centrales de Estados Unidos y se diagnosticaron con base en la evidencia serológica de la infección por Ehrlichia canis. También se demostraron en otros casos inclusiones citoplasmáticas en leucocitos. Los principales signos clínicos en humanos incluyen: fiebre, dolor de cabeza, escalofríos, mialgia, dolor ocular y síntomas gastro intestinales.

Barr, (2007), refiere que las evidencias serológicas indican que la E. canis (o tal vez una especie relacionada) se presenta en los seres humanos (con una mayoría de los casos en Estados Unidos del sur y centro del sur), es probable que las personas no se infectan en forma directa a partir de los perros: se considera necesaria la exposición a las garrapatas. Sin embargo quizás el Rhipicephalus Sanguineus no sea el vector en la especie humana. Los principales signos en el hombre comprenden fiebre, cefaleas, mialgias, dolor ocular y disturbios oculares. El tratamiento con tetraciclina redunda en una rápida recuperación.

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2.20. GENERALIDADES ENFERMEDAD DE LYME (BORRELIA).

Enfermedad inflamatoria mediada por la inmunidad, trasmitida por las garrapatas que ocurre en perros, gatos, caballos, vacas, animales salvajes y el hombre. En EEUU es endémica a lo largo de la costa noreste y en Minnesota y Wisconsin; se ha comunicado en 44 estados, también en Canadá, Europa y Australia. Los veterinarios tienen que estar al tanto de la trasmisión potencial al hombre por el manejo de las garrapatas, sangre, orina y liquido sinovial infectado. Manual Merk, (2000).

2.21. ETIOLOGIA.

Green (1993) menciona que La borreliosis de Lyme es una enfermedad multiorganica compleja. La espiroqueta Borrelia burgdorferi es el agente causal. Como la mayoría de las espiroquetas, B. burgdorferi es pequeña (0,2milimicras x 30 milimicras) y para su observación adecuada se necesita un microscopio de campo oscuro y uno de fase.

Los vectores principales son diversas especies de garrapatas duras

y la

prevalencia de la enfermedad se relaciona con la distribución de estas en el mundo. Ixodes ricinus es el principal vector en Europa, mientras en EE.UU. I. dammini en el noroeste y medio oeste, I. pacificus en el oeste y muy probablemente I. scapularis en el suroeste. La I. dammini es una garrapata de tres huéspedes con un ciclo de vida de dos a tres años. Las larvas y ninfas se alimentan sobre todo de roedores y pequeños mamíferos, mientras las pulgas adultas lo hacen de venados o grandes mamíferos.

A diferencia de muchas otras especies de pulgas, el estado de ninfa se activa en el año antes que el de larva.

Este modelo inverso de actividad de temporada de las larvas y ninfas es para la trasmisión anula efectiva, ya que la trasmisión trans-ovarica de este

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fundamental patógeno es mínima: las larvas adquieren infecciones que habían sido trasmitidas a un huésped que funciona como reservorio, cuando las ninfas se alimentan a principio de temporada. El estado de ninfa es considerado el principal agente trasmisor de espiroquetas al ser humano y perro.

Otras especies de pulgas, moscas de ciervo, moscas de caballos, moscardones mosquitos y pulgas también albergan B. burgdorferi. La amplia variedad de huéspedes accidentales puede ser una de las razones para la amplia difusión global del microorganismo.

2.22. PATOGENIA.

Es probable que Borrelia prolifere de manera local en la piel en el sitio de inoculación durante toda la infección. A partir de este sitio migran y se replican a la totalidad de los tejidos, comenzando muy cerca de la mordedura. Enseguida pueden diseminarse en forma constante e infectar muchos tejidos, incluso las articulaciones. No todos los animales que se infectan después de la mordedura de una garrapata presentan la enfermedad clínica. Es posible que la ocurrencia de complicaciones inmunitarias, como artritis, quizá se relacione con inmunodeficiencia del huésped. Ortiz, (2003).

2.23. SIGNOS CLÍNICOS Y DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL.

Fisher y John (2007) aportan que la Claudicación, depresión, fiebre, enfermedad renal, enfermedad cardiaca, enfermedad hepática. Hay que diferenciarlo de otras enfermedades trasmitidas por garrapatas. Una porción de la población de perros sanos es cero positiva, por lo que el diagnostico se debe basar en los signos clínicos y en la serología.

45

2.24. DIAGNÓSTICO.

Hemograma completo y perfil bioquímica sérica: nada especial en perros con artritis solamente.

Perros con glomerulonefritis con pérdidas de proteínas: por lo general se producen

uremias,

proteinuria,

hipercolesterolemia,

hiperfosfatemia

e

hipoalbuminemia.

Especímenes citológicos de articulaciones afectadas: las afecciones con articulación aguda tendrán un aumento de volumen del líquido articular, el cual con frecuencia será sanguinolento; en frotis, aumento marcado del recuento de glóbulos blancos (principalmente neutrófilos). Examen serológico ELISA: un título positivo indica una exposición previa o vacunación.

Prueba diagnóstica Canine Snap 3 Dx (idexx laboratories, westbrook, Me.) prueba realizada en el consultorio para anticuerpos con enfermedad de Lyme, E. canis, y antígeno para gusanos cardiacos; mide anticuerpo contra proteína C6 de B. burgdorferi; es una prueba conveniente y elimina las respuestas de los anticuerpos a la vacuna para enfermedad de Lyme; sin embargo recientemente se halló un 10% de reacciones falsas positivas en muestras de campo. PCR de especímenes de biopsia de piel: con frecuencia se aísla o demuestra B. burgdorferi, lleva mucho tiempo y es costosa.

2.25. TERAPEÚTICA Y MEDICAMENTOS PREFERIDOS.

Vacunas: dos bacterinas comercialmente disponibles que consisten en B. burgdorferi muertos en adyuvante; demostró que reduce la incidencia de la enfermedad en perros cero positivos de 4,7% a alrededor del 1%; su valor

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todavía se debate; la vacuna de una sola proteína (OspA) protege a los perros frente a la infección y enfermedad.

Reposo en jaula mientras se produce la claudicación: usar analgésicos o ANIE. Los medicamentos a elección son: Doxiciclina dar 10 mg/kg por vía oral cada 12 horas por 4 semanas Amoxicilina dar 20 mg/kg vía oral cada 8-12 horas por 4 semanas Otros medicamentos eficaces: azitromicina, penicilina G y cloranfenicol. Los antibióticos no eliminan la infección persistente: mejoran de manera significativa los signos clínicos y la patología. Bowman, (2007)

2.26. SALUD PÚBLICA.

Aún no se ha determinado si el perro puede trasmitir la infección de forma directa al humano. La exposición de la gente y los perros en zonas endémicas al mismo entorno infestado de pulgas probablemente es el medio más frecuente de infección en seres humanos. Además se ha indicado la trasmisión de B. burgdorferi en la orina de perros y esto puede plantear una amenaza para la salud pública.

Se han observado tres estados clínicos variables que abarcan manifestaciones dermatológicas, cardiacas, neurológicas y artríticas en seres humanos. Green (1993)

La característica lesión cutánea, el eritema crónico migratorio, aparece de unos 3 a 20 días después de la picadura de la garrapata. Esta lesión se inicia por una macula o pápula roja que se va extendiendo. Los bordes están bien marcados, la lesión central palidece y se forma un eritema circinado. Las lesiones cutáneas pueden estar acompañadas durante varias semanas de malestar, fiebre, cefalalgia, rigidez de nuca, mialgias, artralgias o linfoadenopatía. Transcurridas unas semanas o meses, algunos pacientes manifiestan meningoencefalitis, neuropatías, miocarditis, taquicardia atrioventricular. Los ataques de artritis de

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las grandes articulaciones pueden ocurrir y repetirse durante varios años, tomando a veces un curso crónico. El tratamiento con penicilina de estos procesos ha dado muy buenos resultados. Acha; y Szyfres. (1986)

2.27. GENERALIDADES DE DIROFILARIA IMMITIS

La Dirofilaria immitis tiene una distribución mundial e infecta a una amplia variedad de especies (perro, gato, hurón, lobo, zorro, león marino, caballo) la distribución está influida por una población reservorio de animales (habitualmente perros) en los que el ciclo vital se completa y se produce la microfilariemia y por un mosquito vector en el que se desarrollan los estadios precoces de larva. Los diferentes patrones alimentarios del mosquito influyen en las áreas y especies animales infectadas. Para la trasmisión a los gatos, el mosquito debe alimentarse primero de un perro y entonces después de una adecuada exposición a un ambiente cálido alimentarse de un gato. Merck, (2000).

2.28. ETIOLOGIA.

Es una enfermedad cardio pulmonar, complicada avece con alteraciones hepáticas y renales que es causada por un parásito llamado Dirofilaria immitis. Es un parásito hemático, blanquecino, redondeado, tubular, cuyos adultos se localizan a nivel de la aurícula y ventrículo derecho del corazón, arteria pulmonar y vena cava posterior de los perros, gatos y ocasionalmente el hombre. Ayo, (2003).

Género Dirofilaria; abertura oral pequeña rodeada de 10 papilas cefálicas. La cubierta corporal se compone de 4 capas de estructura distinta. El extremo caudal del macho se adelgaza y enrolla varias veces. Espículas desiguales. No hay gubernaculo ni aletas caudales. Vivíparos. Hospedadores: perro, gato, carnívoros silvestres, hombre.

48

Localización: corazón derecho especialmente en el perro, arteria pulmonar, raramente en otros vasos hemáticos y órganos, como la cavidad pleural, los bronquios y el tejido conjuntivo intramuscular y subcutáneo. Existe en Europa (Francia, Italia, España, Rumania) y Asia se ha comprobado en Alemania en perros importados. Borchert. (1981).

2.29. CICLO EVOLUTIVO.

Las larvas puestas por las hembras pasan a la sangre del hospedador con una periodicidad muy marcada en diferentes momentos del día. La larva 1 ingerida por el hospedador intermediario al tiempo que realiza la succión de la sangre, se desarrolla en los diversos órganos del mismo, principalmente en los tubos de Malpighio en un plazo de 5 a 10 días, por lo general, y una vez infestante migran hacia los órganos bucales del hospedador intermediario. Durante la succión rompen la membrana Quitinosa de la Proboscis y llegan así al hospedador definitivo, en el que alcanzan su ubicación definitiva a través de la vía hemática o linfática. En este lugar se hacen sexualmente maduros al cabo de 7 a 10 meses. Sus microfilarias pueden comprobarse en la sangre a las 28 a 40 semanas de la infestación. La periocidad de su aparición en la sangre circulante se manifiesta porque en las horas de la madrugada (a las 6) el número de micro filarias presentes es solo de 5 a 20 % de las existentes por la tarde (a las 18 horas).

Los mosquitos por los que las filarias tienen tropismo positivo trasmiten la infestación hasta en un 50% de los casos, teniendo influencia en ello la temperatura .Borchert. (1981).

2.30. SÍNTOMAS.

Aquí se demuestra de acuerdo a los síntomas establecidos y hallazgos realizados, las siguientes clases:

49

Clase 1: En la enfermedad sub-clínica asintomática se observa; pérdida de peso agitación al ejercicio.

Clase 2: En la enfermedad moderada nos muestra; engrosamiento de la arteria pulmonar, aumento de la densidad peri vascular, anemia, pérdida del estado general, fatiga durante el ejercicio y tos.

Clase 3: En la enfermedad severa; la radiografía nos indica aumento del tamaño de las arterias pulmonares, dilatación auricular y ventricular derecha, fatiga constante, tos persistente, insuficiencia cardiaca, anemia grave, proteinuria, pronóstico reservado.

Clase 4: Síndrome de vena cava: presenta gran cantidad de vermes que se han desplazado hasta la vena cava, siendo su pronóstico muy grave. Paucar, (2005).

2.31. DIAGNÓSTICO.

El diagnóstico de las filarias tiene lugar al realizar la necropsia de los perros muertos de la enfermedad o sometidos a eutanasia.

En los animales vivos se demuestra la presencia de microfilarias en la sangre. En los casos leves se recomienda mezclar unos centímetros cúbicos de sangre venosa con 5 veces su volumen de ácido acético (al 2%) y centrifugar para examinar microscópicamente el sedimento. También se ha comprobado la filariosis canina empleado la angiocardiografia, como método diagnóstico.

Mediante el empleo de la técnica de la cámara lenta puede seguirse la marcha del medio de contraste a través del corazón y los pulmones, comprobándose la presencia de Dirofilaria immitis se presenta a veces simultáneamente con Dirofilaria repens. Borchert. (1981).

50

2.32. TERAPEÚTICA.

Hospitalización: algunos pacientes pueden necesitar internación durante la administración del adulticida. Hospitalización: se recomienda para perros que experimentan complicaciones tromboembolicas. Restricción marcada de la actividad: requerida durante 4-6 semanas después de la administración del adulticida. Confinamiento en jaula: recomendado durante 3-4 semanas después de la administración del adulticida para la enfermedad grave (clase 3). Confinamiento en jaula durante 7 días: recomendado para perros que experimentan complicaciones tromboembolicas pulmonares. Enfermedad de clase 3: tratar la ICC hasta que este estable antes de administrar el adulticida; utilizar diuréticos, reposo en jaula y restricción de sodio. Estabilizar la insuficiencia pulmonar: con agentes antitromboticos (por ejemplo aspirina o heparina) y dosis anti inflamatorias de corticoesteroides; monitorear utilizando parámetros clínicos y radiográficos. Perro con síndrome de vena cava: extracción quirúrgica de gusanos adultos del lado derecho del corazón y de la Ap. A través de la vena yugular usando fluoroscopia y fórceps cocodrilo flexibles y largos; altamente eficaz para tratar una alta carga verminosa cuando la emplea un operador experimentado. Determine la justificación del tratamiento adulticida en perros mayores: el resultado puede ser peor que no tratar debido a que el beneficio del tratamiento puede no notarse durante toda la vida del perro.

MEDICAMENTOS PREFERIDOS.

51

Melarsomina diclorhidrato (immiticide [ Merial, Iselin, Nj ]): baja toxicicidad (hepatotoxicidad); buena eficacia (mayor que 90%) contra ambos sexos de gusanos adultos; los efectos adversos incluyen tromboembolia pulmonar (por lo general, de 7 a 30 días después de la terapia), anorexia (13% de incidencia), reacción en el sitio de la inyección (miositis: 32% de la incidencia pero leve y dura de 1 a 2 días), letargo o depresión (15% de incidencia); causas elevaciones de enzimas hepáticas. Infección Clase 1: se aplican dos inyecciones con 24 horas de diferencia entre cada una en los músculos epaxiales (la primera de un lado la segunda del lado opuesto, utilizando agujas calibres 22); aplicar presión sobre el sitio de inyección mientras se retira la aguja y después de retirarla; controlar la prueba de antígeno 6 meses después y, si da positiva, repetir el tratamiento. Infecciones Clase 2 y 3 (después de estabilizar la ICC): usar un esquema de dosis alternativo: se administra la primera inyección inicialmente (40% de índice de muerte); 1 mes después se recomiendan dos inyecciones con 24 horas de diferencia. Esquema de dosis alternativo: disemina el efecto de muerte del adulticida y la tromboembolia a lo largo de dos tratamientos. Esquema de dosis alternativo: usados por muchos veterinarios para tratar infecciones de clase 1. Administración de microfilaricida: indicada para la mayoría de los perros con microfilarias circulantes, 4-6 semanas después del adulticida: 

Milbemicina (interceptor, Novartis, Greensboro, NC, 0,5 mg/kg) o ivermectina (preparación múltiple, 50 micro gramos): administrada en la mañana, observar al paciente por signos de anafilaxis microfilarial (shock, vómitos, diarrea, colapso circulatorio) durante el día y dar alta en la noche.



Probabilidad de que se desarrolle shock: es mayor en perros con altas microfilaremias.

52



Si se produce shock: administrar dosis elevada de glucocorticoides y dosis de choque de líquidos IV; excelente pronóstico si se trata rápidamente.



Ivermectina: si se da como profilaxis (6 microgramos/kg, en forma mensual) eventualmente eliminará la microfilaria después de 8 meses en la mayoría de los perros.

Comenzar profilaxis microfilaricida mensual 4 semanas después: puede producirse reinfección en los perros tratados.

Realizar una prueba de antígenos 4-6 meses después del tratamiento adulticida: si da positivo, repetir tratamiento adulticida.

Algunos perros con infección adulta persistente: pueden no requerir tratamiento; determinado por la edad, gravedad de la infección, el grado de mejora desde el primer tratamiento, la fuerza del resultado positivo de la prueba de antígenos, una enfermedad concomitante.

Heparina (75 U/kg, SC, cada 8 horas) o aspirina (5-7 mg/kg, vía oral, cada 24 horas) durante 1 a 3 semanas antes de la administración del adulticida, durante la misma y por 3 semanas después: recomendación, controvertida para los casos más graves de enfermedad clase 3; la terapia se combina con confinamiento en jaula estricto y prolongado.

Heparina (75 U/kg, SC, cada 8 horas): se recomienda en perros con trombosis pulmonar, trombocitopenia o hemoglobinuria.

PROFILAXIS DE PERROS NO INFECTADOS

Profilaxis de gusano cardiacos: debería proporcionarse a todos los perros en riesgo.

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Nuevos pacientes que comienzan la profilaxis por primera vez: se puede indicar una prueba para detectar microfilaria porque algunos endectocidas macrolidos (Milbemicina) pueden inducir al síndrome de shock de las 24 horas de la primera dosis; se indica realizar la prueba de antígenos antes de comenzar el tratamiento preventivo en tales casos para descartar posibles infecciones de adultos (si es positiva, considerar opciones de tratamiento adulticida pero comenzar la terapia profiláctica de inmediato mientras el paciente sea microfilaremico negativo).

Ivermectina: preventivo mensual altamente eficaz; cuando la administración mensual se continua durante 12 meses, la eficacia es retroactiva hasta 4 meses después de la infección; cuando se la combina con pamoato de pirantel, también controla la infección por anquilostomas y gusanos redondos; puede suministrarse en forma segura a perros microfilaremicos, incluyendo los sensibles a la ivermectina.

Milbemicina oxima: preventivo mensual altamente eficaz; también controla anquilostomas, gusanos redondos y nematodos (trichuris); la dosis preventiva es microfilaricida; pueden producirse reacciones agudas cuando se lo suministra a perros microfilaremicos.

Moxidectina (Proheart tabletas [fort Dodge,IA]: preventivo mensual; puede darse a perros microfilaremicos.

Moxidectina (Proheart6 inyectable [fort Dodge, IA]: eficaz profiláctico durante al menos 6 meses después de la inyección; actualmente no está disponible en los EE.UU. Selamectina (Revolution [Pfizer, Exon, PA]): preventivo tópico mensual; también controla pulgas, ácaros de las orejas, sarna sarcoptica y algunas infestaciones de garrapatas. Preventivos endectocidas macrocidas (Milbemicina oxina, ivermectina, Selamectina y Moxidectina): proporcionan eficacia retroactiva del 100%

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durante un mes y al menos del 75% durante dos meses; la ivermectina puede proporcionar hasta 4 meses de protección si se la continúa hasta 12 meses a partir de entonces.

Todos los medicamentos profilácticos: pueden administrarse en formas segura a Collies y razas tipo Collie en las dosis preventivas apropiadas. Bowman. (2007)

2.33. ZOONOSIS.

El reservorio principal de D. immitis es el perro y la trasmisión se realiza por mosquitos; el hombre se infecta solo de modo accidental. Después de que una persona es inoculada por mosquitos con larvas del tercer estadio, la mayoría de ellas muere en el tejido conjuntivo subcutáneo. Sin embargo alguna puede escaparse del tejido subcutáneo, sobretodo en infecciones repetidas, seguir su desarrollo y migrar a los pulmones. En muchas especies de mosquitos la micro filaria puede alcanzar el desarrollo de larva (de tercer estadio) infectante, pero no todas ellas tienen la misma eficacia de vectores.

El hombre es un huésped accidental de las filarias zoonoticas con excepción de B. malayi subperiodica.

La mayor parte de los infectados son asintomáticos y la lesión pulmonar se descubre al practicarse un examen radiológico por diferentes motivos o por lobectomías pulmonares realizadas al sospecharse de un tumor maligno. En los casos sintomáticos se observa tos y dolor torácico durante un mes o más y, en acciones hemoptisis, fiebre, malestar, escalofríos y mialgias. En el examen radiográfico se observa una lesión nodular redonda y circunscrita (forma de moneda) de 1 a 4 cm de diámetro. Rara vez se comprueba eosinofilia. Solo en dos casos en los EE.UU. y uno en Brasil se ha encontrado el parásito en el corazón (lado derecho), mientras que en casi todos los demás casos la dirofilaria se aloja en el lóbulo del pulmón derecho, donde ocluía parcialmente

55

una arteria y formaba un trombo. En todos los casos pulmonares se encuentran los parásitos muertos y casi siempre en estado de degeneración. Las infecciones humanas son causadas por un solo parásito y de modo excepcional, por dos. En el examen radiológico la lesión puede confundirse con neoplasma. Acha; y Szyfres. (1986).

2.34. GENERALIDADES DE ANAPLASMA PHAGOCYPILUM

Anaplasma phagocytopilum ex Ehrlichia phagocytophila, E. equi y Ehrlichiosis granulocitica humana.

2.35. HISTORIA RELEVANTE.

La ehrlichiosis granulocitica ha sido identificada en Europa, en particular Suecia, y en los EE.UU. Animales de cualquier edad y sexo. En áreas endémicas, la enfermedad puede observarse en los animales jóvenes, a medida que son expuestos por primera vez a la mordedura de las garrapatas. El animal habrá residido o habrá visitado áreas en las que la ehrlichiosis es endémica durante la época del año en las que las garrapatas están activas (por lo general desde la primavera hasta el otoño en climas templados). Una garrapata pudo haber estado sobre el animal unos 10 a 15 días antes de la presentación de los signos clínicos. Puede haber evidencia de un control inadecuado de las garrapatas en el momento en que el perro o el gato hayan estado en un área endémica. Puede haber evidencia de que el perro o el gato haya pasado un tiempo en lugares como áreas boscosas, que es el habitad ideal para las garrapatas. Fisher; y John. (2007).

2.36. FISIOPATOLOGIA.

Afecta principalmente a las plaquetas pero también pueden aparecer Poliartritis y anemia normocítica normocrónica. Característicamente, aparece una ligera trombocitopenia, alteraciones de la función plaquetaria y vasculitis. El

56

parénquima pulmonar se predispone a las hemorragias. Durante la fase crónica de la enfermedad, las reacciones inmunológicas al microorganismo producen alteraciones clínicas y de laboratorio. Schaer, (2006).

2.37. SIGNOS CLÍNICOS.

Fiebre mayor de 39°c, anorexia, depresión, letargo, esplenomegalia, puede haber claudicación, diarrea, signos neurológicos en algunos animales.

2.38. DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL E IMPORTANCIA.

Los signos clínicos pueden no ser específicos por lo que se sugiere realizar el diagnóstico basándose en una combinación de signos clínicos, PCR o positividad hematológica de A. phagocytophilum y niveles de anticuerpos. Pueden ocurrir coinfecciones.

En general es una infección más leve que la causada por Ehrlichia canis, pero produce una variedad de signos durante la fase aguda. Es menos probable que alcance la cronicidad, en comparación con Ehrlichia canis.

Sin embargo, la reaparición de la infección puede ocurrir si el animal es posteriormente inmuno suprimido en los meses siguientes a la presentación de la infección. Fisher; y John. (2007).

2.39. TRATAMIENTO.

Es similar al de infección por E. canis. Se recomienda tratamiento paliativo. Los esteroides anabolizantes y otros estimulantes de la médula ósea no suelen ser eficaces, pero los corticoides en dosis antiinflamatoria o inmunosupresoras pueden disminuir la destrucción de los hematíes y plaquetas. Otros tratamientos paliativos incluyen la administración intravenosa de fluidos poliiónicos y la transfusión de productos sanguíneos. Schaer, (2006)

57

III HIPÓTESIS.

Hi: Utilizando el KITS SNAP 4DX

podremos diagnosticar enfermedades

hemáticas en caninos en la Ciudad de Milagro. Ho: No utilizando el KITS SNAP 4DX

no podremos diagnosticar

enfermedades hemáticas en caninos en la Ciudad de Milagro.

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IV. MATERIALES Y MÉTODOS

4.1. CARACTERÍSTICAS DEL ÁREA DE ESTUDIO.

La siguiente investigación se realizó en el Cantón

Milagro Provincia del

Guayas. Sus coordenadas son 2º 11´24´´ de latitud sur y 79º53´15´´ de longitud oeste. Con un altura promedio de 13 metros sobre el nivel del mar; cuya zona climática es tropical, tipo de suelo arcilloso, humedad atmosférica del 81%; con una temperatura máxima de 34,6°c; media anual de 24,7°c; mínima absoluta de 18,6°c; con una evaporización de 99,5mm; y una nubosidad media de 7/8; con una población aproximada de 160.000 habitantes.

4.2. MATERIALES.

4.2.1. DE CAMPO.  Hojas de trabajo  Canes  Bozal  Jeringas descartables de 3 cc  Tubo de 1 ml con EDTA  Povidin  Guantes desechables  Algodón  Tijeras  Torniquetes  Bolígrafos  Termo

4.2.2. DE LABORATORIO.

59

 Hojas de laboratorio  Muestra de sangre  Tubos receptores de muestra con EDTA de 1 ml.  Dispositivos Snap para la prueba de anticuerpos de E. canis, Anaplasma, Lyme, Dirofilaria Immitis.  Botellas de 8 ml del conjugado anti-HW/AP/LY/EC:HRPO.  Tubos de ensayo con tapa  Pipeta cuenta gotas  Soporte de reactivos  Cámara fotográfica

4.2.3. MATERIALES DE OFICINA  Computadora  Impresora  Plumas  Hojas de registros  Marcadores

4.3. METODOLOGÍA DE TRABAJO.

4.3.1. DE CAMPO.

La muestra fue tomada de la vena radial, con una jeringa de 3cc, se la coloco en el tubo recolector de 1 ml que contiene EDTA (ácido etilendiaminotetraacético), y se procedió a marcar y guardar en el termo.

4.3.2. DE LABORATORIO Se utilizaron kits de diagnóstico rápido para la detección de antígenos de E. canis, Lyme, Dirofilaria immitis y Anaplasma, a las muestras obtenidas. Este kit SNAP 4DX CANINO es un inmune ensayo

60

cromatográfico para la detección del antígeno de la Dirofilaria immitis, anticuerpos frente a Anaplasma phagocytophilum, anticuerpos frente a Borrelia burgdorferi y anticuerpos frente a E. canis en suero, plasma o sangre total canina. 4.3.3. DE LA TÉCNICA UTILIZADA. PROCEDIMIENTO. 1. Muestreo  Se inmovilizó al paciente  Se le puso un bozal  Depile el área donde hice la punción, el brazo en la vena radial  Desinfecté el sitio escogido.  Le puse el torniquete a la altura de articulación radio cubito humeral.  Le tomé la muestra con una jeringa de 3cc.  La coloqué en el tubo recolector de 1 ml con EDTA y mezclé con movimientos suaves.  Identifiqué la muestra.  Guardé la muestra en el termo para preservación y transporte.  Llené la hoja de trabajo con los datos del paciente. 2. Laboratorio.  Sangre entera: tome la muestra del tubo colector de 1 ml con anti coagulante (EDTA).  Si las muestras no se prueban inmediatamente, deben ser refrigeradas máximo por 3 días.  Si los componentes están almacenados refrigerados, esperamos a que se equilibre a temperatura ambiente durante 30 minutos. NO CALENTARLOS.  Se quita la envoltura del kit y se coloca sobre una superficie plana y seca.

61

 Se toma con la micro pipeta una muestra de sangre entera.  Con la micro pipeta se colocan 3 gotas de sangre en el tubo de ensayo nuevo.  Dentro del tubo con las gotas de sangre se colocan 4 gotas del conjugado sosteniendo la botella en posición vertical.  Tapar el tubo de ensayo y mezclarlo a fondo invirtiendo entre 3 y 5 veces.  Colocar el dispositivo sobre una superficie horizontal. Agregar todo el contenido del tubo de ensayo en el pocillo de muestras, teniendo cuidado de no verter el contenido fuera de dicho pocillo.  La muestra fluirá por la ventana de resultados, alcanzando el círculo de activación en aproximadamente 30-60 segundos. Es posible que quede algún resto de la muestra en el pocillo.  En cuanto aparezca el color en el círculo de activación, presionar el activador con firmeza hasta que quede al ras con el cuerpo del dispositivo.  Es posible que alguna muestra no fluya hacia el círculo de activación dentro de los 60 segundos, y, por lo tanto el círculo no se coloreara. En este caso, presionar el activador después de que la muestra haya fluido por la ventana de resultados.  Leer los resultados del análisis cuando hayan pasado 8 minutos.

62

3. Interpretación de los resultados del análisis. Resultados Positivos. Cualquier desarrollo de color en los puntos de la muestra indica la presencia del antígeno de la Dirofilaria canina, anticuerpo frente a A. phagocytophilum, anticuerpo frente a B. burgdorferi o anticuerpo frente a E. canis en la muestra NOTA: Los datos iniciales de la investigación sugieren que el punto del SNAP 4 Dx de Anaplasma phagocytophilum podría presentar reacción cruzada con Anaplasma platys. En los estudios que implicaban los perros infectados con Anaplasma platys, el SNAP 4 Dx era reactivo con el suero a partir del 10 fuera de 10 animales infectados. Resultados Negativos. Solo se produce color en el punto de control positivo. Resultados Inválidos. FONDO: Es posible que se produzca color de fondo si se permite que la muestra fluya sobrepasando el circulo de activación. Algo de color de fondo es normal. Sin embargo, si el color de fondo dificulta el resultado del análisis repítalo. NO SE PRODUCE COLOR: Si el punto del control positivo no produce color, repita el análisis. [Tomado del instructivo del kit]

4.3.4. DE LA DISTRIBUCIÓN DE LOS ANIMALES EN EL ESTUDIO.

63

Para la siguiente investigación se tomó muestras de sangre de 100 perros; para el muestreo se dividió al Cantón Milagro en 4 zonas:

zona 1,

(Norte); zona 2, (Este); zona 3, (Oeste) y zona 4, (Sur). De cada zona se tomaron muestras de sangre de 25 caninos, las mismas que fueron manejadas con el mayor cuidado posible para garantizar su diagnóstico.

4.3.5. DEL ANÁLISIS ESTADÍSTICO.

En el presente trabajo de investigación se utilizó para evaluar los datos el Método Porcentual para determinar en porcentaje cuántos caninos son positivos o negativos a enfermedades hemáticas caninas,

mediante la

fórmula matemática:

x 100

Los casos positivos fueron evaluados mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado, cuya fórmula matemática es:

2 = (Fo – Fe)2/Fe En donde: 2 = Chi Cuadrado Fo = Frecuencias observadas.

64

Fe = Frecuencias esperadas. g.l. = grados de libertad.

El valor calculado de 2 se comparará con el valor tabulado de 2 con k – r grados de libertad. La regla de decisión, entonces, es: rechazar Ho si 2 calculado es mayor o igual que el valor tabulado de 2 para el valor seleccionado de α. (WAYNE, 2002).

Además se realizó el Análisis de sensibilidad del método de diagnóstico utilizado, mediante la fórmula matemática:

Sensibilidad = Resultados de la Prueba Positivos Negativos Total

x 100 Resultados Verdaderos (A) (C) (A + C)

65

V. RESULTADOS Y DISCUSIÓN CUADRO Nº 1. INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO.

Nº de Casos Muestreados

Nº de Casos Positivos

100

57

Incidencia Nº de Casos % Negativos 57

43

Incidencia % 43

En el cuadro nº 1 podemos observar que de los 100 casos muestreados el porcentaje de incidencia de enfermedades hemáticas en caninos en la ciudad de Milagro fue de 57 casos positivos lo que representó el 57 %, el análisis de sensibilidad de la prueba de diagnóstico fue del 57 %, lo que demostró que si hay significancia estadística, (p≤0.05). FIGURA Nº 1. INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO.

60

57

Porcentaje

50

43

40

Positivos

30

Negativos

20 10 0

Diagnóstico

Márquez 2011 tesis

66

CUADRO Nº 2. INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO, POR ZONA.

Zonas

Nº de Casos Muestreados

Nº de Casos Positivos

Incidencia %

Nº de Casos Negativos

Incidencia %

Norte

25

16

16

9

9

Este

25

14

14

11

11

Oeste

25

12

12

13

13

Sur

25

15

15

10

10

TOTAL

100

57

57

43

43

En el cuadro nº 2, podemos observar que de los 25 casos muestreados en cada una de las zonas, el mayor porcentaje de incidencia de enfermedades hemáticas en caninos en la ciudad de Milagro fue en la zona Norte con 16 casos positivos lo que representó el 16 %, seguido de la zona Sur con 15 casos positivos con el 15 %, la zona Este 14 casos positivos con el 14 % y la zona Oeste 12 casos positivos con el 12 % de incidencia: el análisis estadístico mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para las zonas, determinó que no hay significancia estadística entre las zonas, (p0.05). Ver anexo I.

67

FIGURA Nº 2. INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO, POR ZONA.

18

16

% de Incidencia

14 12 Norte

10

Este

8

Oeste

6

Sur

4 2 0

Zonas

Márquez 2011 tesis

CUADRO Nº 3. INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO, DE ACUERDO AL SEXO.

Sexo

Nº de Casos Nº de Casos Muestreados Positivos

Incidencia %

Hembras

57

30

30

Machos

43 100

27 57

27 57

TOTAL

68

En el cuadro nº 3, podemos observar que de los (57) casos muestreados 30 casos fueron positivos a hembras lo que representó el 30 % y de los machos muestreados (43) 27 casos fueron positivos lo que representó el 27% de incidencia de enfermedades hemáticas en caninos en la ciudad de Milagro. El análisis estadístico mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para el sexo, determinó que si hay significancia estadística para el sexo, (p≤0.05).

FIGURA Nº 3. INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO, DE ACUERDO AL SEXO. 35

% de Incidencia

30

25 20

Hembra

15

Macho

10 5 0

Sexo

Márquez 2011 tesis

69

CUADRO Nº 4. INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO, POR SEXO Y PROCEDENCIA.

Zona

Sexo

TOTAL

Norte

Este

Oeste

Sur

Hembras

7

7

7

9

30

Machos

9

7

5

6

27

TOTAL

16

14

12

15

57

El cuadro nº 4 muestra los casos positivos de enfermedades hemáticas en caninos en la ciudad de Milagro diagnosticados mediante el uso del Kits Snap 4 DX, obteniéndose un mayor porcentaje en las hembras (30 %) y el sector Norte (16 %), la evaluación estadística del sexo y procedencia determinó que no hay significancia estadística, (p0,05). Ver anexo III y IV.

FIGURA Nº 4. INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO, POR SEXO Y PROCEDENCIA. 10

9

9 8 7

7

9 7

7

7

6

6

5

5

Hembras

4

Machos

3 2 1 0 Norte

Este

Oeste

Márquez 2011 tesis

70

Sur

CUADRO Nº 5. INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO, POR SEXO, DIAGNÓSTICO Y ZONAS.

Zona Sexo

Diagnóstico

Hembras

Machos

TOTAL

Norte

Este

Oeste

Sur

Ehrlichia

2

2

3

5

12

Anaplasmosis

2

1

1

2

6

Inf. mixtas

3

4

3

2

12

Ehr

2

5

3

3

13

Anaplasmosis

3

0

0

0

3

Inf. mixtas

4

2

2

3

11

16

14

12

15

57

TOTAL

En el cuadro nº 5 observamos que el mayor porcentaje de enfermedades hemáticas en caninos en la ciudad de Milagro diagnosticados mediante el uso del Kits Snap 4 DX, se obtuvo para el diagnóstico de Ehrlichia con 25 %, seguido de infecciones mixtas con 23 % y para Anaplasma el 9 %, el análisis estadístico determinó que no hay significancia estadística, (p0,05). Ver anexo V, VI, VII, VIII y IX.

71

FIGURA Nº 5. INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO, POR SEXO, DIAGNÓSTICO Y ZONAS. 9 8 7 6 5

Erhlichia

4

Anaplasma

3

Inf. Mixtas

2 1 0 Norte

Este

Oeste

Sur

Márquez 2011 tesis CUADRO Nº 6. INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO, POR EDAD, DIAGNÓSTICO Y ZONAS.

Categorías Meses

4-12-

12-60-

más 60 Total

Diagnóstico Ehrlichia Anaplasmosis Infecciones mixtas Ehrlichia Anaplasmosis Infecciones mixtas Ehrlichia Anaplasmosis Infecciones mixtas

Zonas Norte 0 3

Este 1 0

Oeste 0 1

Sur 2 2

0

1

1

0

2 2

3 1

6 0

5 0

5

5

3

3

2 0

2 0

0 0

1 0

2

1

1

2

16

14

12

15

72

En el cuadro nº 6 observamos que el mayor porcentaje de enfermedades hemáticas en caninos en la ciudad de Milagro diagnosticados mediante el uso del Kits Snap 4 DX, en lo que respecta a la edad tenemos que: el grupo que va de 12 a 60 meses representa el 35%; seguido de los de 4 a 12 meses con el 11% y los que son de más de 60 meses con el 11% estadística, (p0,05). Ver anexo X, XI, XII, XIII, XIV, XV Y XVI

FIGURA Nº 6.

INCIDENCIA DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO, POR EDAD, DIAGNÓSTICO Y ZONAS. 10

9

9

9

9 8

8 7 6

CASOS POSITIVOS

4 a 12

5 4 3

4

4

3

3 2

2

12 a 60 3

2 1

1 0 norte

sur

este

Márquez 2011 tesis

73

Oeste

más de 60

VI. CONCLUSIONES Y DISCUSIONES

6.1. CONCLUSIONES.

6.1.1. Del presente trabajo de investigación se concluye que la incidencia de enfermedades hemáticas de caninos en la ciudad de Milagro fue de 57 % diagnosticados mediante el uso del Kits Snap 4 DX, la sensibilidad de la prueba fue del 57 %, porcentaje significativo.

.

6.1.2. Respecto a la procedencia podemos observar que el mayor porcentaje de incidencia de enfermedades hemáticas se obtuvo en el sector Norte con el 16 %, seguido del sector Sur con el 15 %, luego con el sector Este con el 14 % y el sector Oeste con el 12 %, la evaluación estadística determinó que no hay significancia estadística, (p0,05).

6.1.3. En lo que respecta a las enfermedades hemáticas diagnosticadas nos encontramos con la Ehrlichia canis con un 25%; Anaplasma phagocytophilum con un 9%; y pacientes con infecciones mixtas con un 23%; las otras dos enfermedades Borrelia Burgdorferi y Dirofilaria Immitis no se encontró ningún caso positivo.

6.1.4. Se determinó que las hembras tienen un mayor porcentaje de incidencia de enfermedades hemáticas de 30 % diagnosticados mediante el uso del Kits Snap 4 DX, frente a los machos 27 %. La evaluación hecha con respecto al sexo determinó que si hay significancia estadística, (p≤0,05).

6.1.5. Los casos positivos en cuanto al sexo y la procedencia que fueron evaluados mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado, demostraron que no hay significancia estadística, (P0.05).

74

6.1.6. La evaluación estadística de los casos positivos de incidencia de enfermedades hemáticas de acuerdo a la procedencia, diagnóstico y sexo, tanto para las hembras como para los machos, determinaron que no hay significancia estadística, (P0.05).

6.1.7. El grupo etéreo que presentó mayor porcentaje de incidencia de enfermedades hemáticas fue el de (12 a 60) meses, lo que representó el (35) %, seguido de los de (4 a 12) meses con el (11) %, igual que el de los (+ de 60) meses con el (11) %,

6.1.8. La evaluación estadística de los casos positivos de la procedencia, diagnóstico y las categorías de edades en meses, demostró que el porcentaje obtenido en las categorías de 12 a 60 meses son significativos, (P 0.05).

6.2. DISCUSIONES

La investigación de Bermeo (2003) se realizó en la parte norte de Guayaquil, con el fin de ver la incidencia de la Ehrlichia canis, para lo cual tomó muestras de sangre en distintos consultorios y también puerta a puerta, el universo que investigó fue 100 casos mediante el uso de la prueba de Micro-Elisa Snap 3 DX, dando como resultado 31 perros positivos representando el 31%.

En esta investigación mediante el uso de la prueba de Micro-Elisa Snap 4 DX en un universo de 100 perros me dieron como positivo a Ehrlichia canis 25 canes esto representa el 25%, en la ciudad de Milagro, sin embargo hay un porcentaje similar detectado de canidos infectados en la parte norte de Guayaquil.

75

Ortiz (2003) en su investigación “Presencia de la enfermedad de Lyme en el sector norte de la ciudad de Guayaquil”, mediante el uso de la prueba de Micro-Elisa Snap 3 DX en un total de 100 canes no encontró ningún caso positivo. Acota un caso de un canino en la ciudad de Quito en el mes de junio del 2002, atendido por el Dr. Cristian Sotomayor en la clínica veterinaria “All Pet” de su propiedad calles Portugal 617 y Av. 6 de diciembre tel.: 022441286. De un Caniche gigante adulto importado del estado de California EE.UU. Sin historial de garrapatas en buen estado de salud solo llegó a consulta por una cojera, le practicaron la prueba Snap 3 DX dando como resultado positivo a Lyme. En esta investigación no se encontró ningún caso positivo a Lyme.

La investigación en milagro Paucar (2005). Para el diagnostico de Dirofilaria Immitis; utilizó el método Buffy coat (prueba de tubo capilar) dándole un resultado de 36 casos positivos de 600 muestreados que le representaron un 6%. En esta investigación no se obtuvo ningún caso positivo a Dirofilaria. Los casos encontrados positivos por Paucar son de la parte rural periférica de Milagro, en cambio los caninos que se analizaron corresponden a la parte céntrica de Milagro.

Con lo que respecta a la Anaplasmosis canina no se encontró datos de ningún trabajo sobre ese tema en caninos.

Se encontraron 9 de casos positivos de Anaplasmosis que representan el 9%; también se encontró pacientes con infecciones mixtas representando el 23%; siendo el primer trabajo de reporte sobre este tipo de afecciones.

76

VII. RECOMENDACIONES.

7.1. Que se continúe la investigación, abarcando las demás regiones del Ecuador, ya que es un problema de salud pública.

7.2. En base a los resultados obtenidos de sensibilidad, es necesario utilizar la técnica de diagnóstico empleadas en la presente investigación.

7.3. Se deben adoptar medidas de control, con el propósito de romper el ciclo biológico del parásito, puesto que si existe la presencia de enfermedades hemáticas canina en la ciudad de Milagro.

7.4 Hay que tener en cuenta a la hora de dar un diagnóstico y empezar un tratamiento que el paciente, puede estar padeciendo de más de una afección en ese momento. 7.5 Tomar precauciones a la hora de atender un paciente proveniente de la zona norte, ya que fue en la que encontramos el mayor porcentaje de casos positivos.

77

VIII. RESUMEN. DIAGNÓSTICO DE ENFERMEDADES HEMÁTICAS EN CANINOS EN LA CIUDAD DE MILAGRO MEDIANTE EL USO DE KITS SNAP 4DX. La investigación se realizó con el objetivo de saber la prevalencia de los casos positivos de enfermedades hemáticas en la ciudad de Milagro; para lo cual fue dividida en 4 sectores: norte, sur, este y oeste. La población a muestrear fue de 100 individuos, los mismos que se dividieron en cuatro grupos de 25 cada uno. La muestra de sangre fue extraída de la vena radial, la misma que se la colocó en un tubo con EDTA de 1 ml, bien identificado y después puesto en un termo para su conservación. El diagnóstico se obtuvo mediante el uso del Kit Snap 4dx, que es una prueba de reacción para 4 enfermedades: Ehrlichia; Lyme; Anaplasma y Dirofilaria. En la hoja de información se tomaron en cuenta parámetros como: sector; sexo; enfermedad presente y edad. De los 100 caninos investigados 57 resultaron positivos; que representa el 57%. Por sector el Norte nos dio el 16%; seguido del Sur con un 15%; el Este 14% y el Oeste con el 12%, la evaluación estadística reveló que no hay significancia estadística. En cuanto al sexo; tenemos que las hembras representan el 30% en comparación con los machos con un 27%. Del 57% de casos positivos encontramos: Ehrlichia con el 25%; Anaplasma con el 9% y pacientes con infecciones mixtas representan el 23%. Por edad; los que van de 12 a 60 meses tienen 35%; de 4 a 12 meses y los de más de 60 meses con igual porcentaje 11%

78

VIII SUMMARY. DIAGNOSIS OF DISEASES HEMATICAS IN CANINE CITY OF MIRACLE THROUGH USE OF KITS SNAP 4DX. The research was conducted with the objective of determining the number of positive cases of hematological diseases in the city of miracle, for which it was divided into 4 sectors: north, south, east and west. The sample population was 100 individuals, they were divided into four groups of 25 each. The blood sample was drawn from the radial vein, the same as it is placed in a tube with EDTA of 1 ml, well identified and then put into a thermos for conservation. The diagnosis was obtained using the 4DX Snap Kit, which is a reaction test for 4 diseases: Ehrlichia, Lyme, Anaplasma and Dirofilaria. In the information sheet were taken into account parameters such as sector, age, sex and disease present. Of the 100 dogs surveyed 57 were positive, which accounts for 57%. For the North sector gave us 16%, followed by the South with 15%, the East with 14% and the West with 12% statistical evaluation revealed no statistical significance. Regarding gender, we have that females make up 30% compared with 27% males. 57% of positive cases are: Ehrlichia with 25% to 9% Anaplasma and Mix infections patients represent 23%. By age: ranging from 12 to 60 months are 35%, from 4 to 12 months and the other 60 months with the same percentage 11%.

79

IX. BIBLIOGRAFÍA

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83

X. ANEXOS ANEXO I. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para las zonas.

Casos Positivos

Fo

Fe

(Fo – Fe)

Norte Este Oeste Sur Suman

16 14 12 15 57

14,25 14,25 14,25 14,25 57

1,75 -0,25 -2,25 0,75 0

(Fo – Fe)2 (Fo – Fe)2/Fe 3,06 0,06 5,06 0,56 *****

0,21 0,00 0,36 0,04 0,61

57/4=14.25 El resultado obtenido es 0,61 Los g.l. = (r – 1) g.l. = 4 – 1 = 3 g.l. = 3 Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior al 2 de la tabla. No hay significancia estadística (P0.05).

84

ANEXO II. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para el sexo.

Casos Positivos

Fo

Fe

(Fo – Fe)

(Fo – Fe)2

(Fo – Fe)2/Fe

Hembras Machos Suman

30 27 57

14,25 14,25 57

15,75 12,75 0

248,06 162,56 *****

17,41 11,41 28,82

57/2=14,25 El resultado obtenido es 28,82 Los g.l. = (r – 1) g.l. = 2 – 1 = 1 g.l. = 1 Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 1 g.l. = 3,841; Por tanto se acepta la hipótesis de investigación porque el 2 calculado es superior al 2 de la tabla. Hay significancia estadística (P0.05).

85

ANEXO III. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la procedencia y el sexo (Hembras). Casos Positivos Norte Este Oeste Sur Suman

Fo

Fe

(Fo – Fe)

(Fo – Fe)2

(Fo – Fe)2/Fe

7 7 7 9 30

7,5 7,5 7,5 7,5 30

-0,5 -0,5 -0,5 1,5 0

0,25 0,25 0,25 2,25 *****

0,03 0,03 0,03 0,30 0,40

30/4 = 7,5 El resultado obtenido es 0,40 Los g.l. = (r – 1) g.l. = 4 – 1 = 3 g.l. = 3 Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto se no se acepta la hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el 2 de la tabla. No hay significancia estadística con respecto a las hembras y zonas, (P0.05).

86

ANEXO IV. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la procedencia y el sexo (Machos) Casos Positivos

Fo

Fe

(Fo – Fe)

(Fo – Fe)2

(Fo – Fe)2/Fe

Norte

9

6,75

2,25

5,06

0,75

Este Oeste Sur Suman

7 5 6 27

6,75 6,75 6,75 27

0,25 -1,75 -0,75 0

0,06 3,06 0,56 *****

0,01 0,45 0,08 1,30

27/4 = 6,75 El resultado obtenido es 1,30 Los g.l. = (r – 1) g.l. = 4 – 1 = 3 g.l. = 3 Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el 2 de la tabla. No hay significancia estadística con respecto a los Machos. (P0.05).

87

ANEXO V. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la procedencia, diagnóstico (Ehrlichia) y el sexo (Hembra)

Sexo

Diagnóstico

Hembras

Ehrlichia Anaplasmosis Ehr y Ana

Zona Norte 2 2 3

Este 2 1 4

Oeste 3 1 3

TOTAL

Sur 5 2 2

12 6 12

Casos Positivos

Fo

Fe

(Fo – Fe)

(Fo – Fe)2

(Fo – Fe)2/Fe

Norte Este Oeste Sur Suman

2 2 3 5 12

3 3 3 3 12

-1 -1 0 2 0

1,00 1,00 0,00 4,00 *****

0,33 0,33 0,00 1,33 2,00

12/4 = 3 El resultado obtenido es 2,00 Los g.l. = (r – 1) g.l. = 4 – 1 = 3 g.l. = 3 Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el 2 de la tabla. No hay significancia estadística con respecto a los Machos. (P0.05).

88

ANEXO VI. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la procedencia, diagnóstico (Anaplasmosis) y el sexo (Hembra) Zona

Sexo

Diagnóstico

Hembras

Ehrlichia Anaplasmosis Inf. mixtas

Norte 2 2 3

Este 2 1 4

Oeste 3 1 3

TOTAL

Sur 5 2 2

12 6 12

Casos Positivos

Fo

Fe

(Fo – Fe)

(Fo – Fe)2

(Fo – Fe)2/Fe

Norte Este Oeste Sur Suman

2 1 1 2 6

1,5 1,5 1,5 1,5 6

0,5 -0,5 -0,5 0,5 0

0,25 0,25 0,25 0,25 *****

0,17 0,17 0,17 0,17 0,67

6/4 = 1,5 El resultado obtenido es 0,67 Los g.l. = (r – 1) g.l. = 4 – 1 = 3 g.l. = 3 Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el 2 de la tabla. No hay significancia estadística con respecto a los Machos. (P0.05).

89

ANEXO VII. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la procedencia, diagnóstico (Infecciones mixtas) y el sexo (Hembra)

Sexo

Diagnóstico

Hembras

Ehrlichia Anaplasmosis Inf. mixtas

Zona Norte 2 2 3

Este 2 1 4

Oeste 3 1 3

TOTAL

Sur 5 2 2

12 6 12

Casos Positivos

Fo

Fe

(Fo – Fe)

(Fo – Fe)2

(Fo – Fe)2/Fe

Norte Este Oeste Sur Suman

3 4 3 2 12

3 3 3 3 12

0 1 0 -1 0

0,00 1,00 0,00 1,00 *****

0,00 0,33 0,00 0,33 0,67

12/4 = 3 El resultado obtenido es 0,67 Los g.l. = (r – 1) g.l. = 4 – 1 = 3 g.l. = 3 Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el 2 de la tabla. No hay significancia estadística con respecto a los Machos. (P0.05).

90

ANEXO VIII. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la procedencia, diagnóstico (Ehrlichia) y el sexo (Macho) Sexo

Diagnóstico

Machos

Zona

TOTAL

Norte

Este

Oeste

Sur

Ehr

2

5

3

3

13

Anaplasmosis Inf. mixtas

3 4

0 2

0 2

0 3

3 11

Casos Positivos

Fo

Fe

(Fo – Fe)

(Fo – Fe)2

(Fo – Fe)2/Fe

Norte Este Oeste Sur Suman

2 5 3 3 13

3,25 3,25 3,25 3,25 13

-1,25 1,75 -0,25 -0,25 0

1,56 3,06 0,06 0,06 *****

0,48 0,94 0,02 0,02 1,46

13/4 = 3,25 El resultado obtenido es 1,46 Los g.l. = (r – 1) g.l. = 4 – 1 = 3 g.l. = 3 Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el 2 de la tabla. No hay significancia estadística con respecto a los Machos. (P0.05).

91

ANEXO IX. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la procedencia, diagnóstico (Infecciones mixtas) y el sexo (Macho) Sexo

Machos

Diagnóstico

Zona

TOTAL

Norte

Este

Oeste

Sur

Ehr

2

5

3

3

13

Anaplasmosis Inf. mixtas

3 4

0 2

0 2

0 3

3 11

Casos Positivos

Fo

Fe

(Fo – Fe)

(Fo – Fe)2

(Fo – Fe)2/Fe

Norte Este Oeste Sur Suman

4 2 2 3 11

2,75 2,75 2,75 2,75 11

1,25 -0,75 -0,75 0,25 0

1,56 0,56 0,56 0,06 *****

0,57 0,20 0,20 0,02 1,00

11/4 = 2,75 El resultado obtenido es 1,00 Los g.l. = (r – 1) g.l. = 4 – 1 = 3 g.l. = 3 Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el 2 de la tabla. No hay significancia estadística con respecto a los Machos. (P0.05).

92

ANEXO X. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la procedencia, edad (4-12 meses) y diagnóstico (Ehrlichia). Casos Positivos 4-12 meses

Fo

Fe

(Fo – Fe)

(Fo – Fe)2

(Fo – Fe)2/Fe

Norte Este Oeste Sur Suman

0 2 1 0 3

0 1.5 1.5 0 3

0 0.5 -0.5 0 0

0 0.25 0.25 0 *****

0 0.17 0.17 0 0.34

3/2=1.5 El resultado obtenido es 0,34. Los g.l. = (r – 1) g.l. = 2 – 1 = 1 g.l. = 1 Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 1 g.l. = 3,84; Por tanto no se acepta la hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el 2 de la tabla. No hay significancia estadística con respecto a esta categoría. (P0.05).

93

ANEXO XI. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la procedencia, edad (12 – 60 meses) y diagnóstico (Ehrlichia). Casos Positivos 12-60

Fo

Fe

(Fo – Fe)

(Fo – Fe)2

(Fo – Fe)2/Fe

Norte Este Oeste Sur Suman

2 3 6 5 16

4 4 4 4 16

-2 -1 2 1 0

4 1 4 1 *****

1 0.25 1 0.25 2.50

16/4=4 El resultado obtenido es 2.5

Los g.l. = (r – 1) g.l. = 4 – 1 = 3 g.l. = 3 Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por lo tanto no se acepta la hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el 2 de la tabla. No hay significancia estadística con respecto a esta categoría. (P≥0.05).

94

ANEXO XII. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la procedencia, edad (más de 60 meses) y diagnóstico (Ehrlichia). Casos Positivos más de 60

Fo

Fe

(Fo – Fe)

(Fo – Fe)2

(Fo – Fe)2/Fe

Norte Este Oeste Sur Suman

2 2 0 1 5

1.67 1.67 0 1.67 5

0.33 0.33 0 -0.66 0

0.11 0.11 0 0.43 *****

0.06 0.06 0 0.26 0.38

5/3 = 1.67 El resultado obtenido es 0,38

Los g.l. = (r – 1) g.l. = 3 – 1 = 2 g.l. = 2 Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 2 g.l. = 5,99; Por lo tanto no se acepta la hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el 2 de la tabla. No hay significancia estadística con respecto a esta categoría. (P≥0.05).

95

ANEXO XIII. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la procedencia, edad (4 – 12 meses) y diagnóstico (Anaplasmosis). Casos Positivos 412 meses

Fo

Fe

(Fo – Fe)

(Fo – Fe)2

(Fo – Fe)2/Fe

Norte Este Oeste Sur Suman

3 0 1 2 6

2 0 2 2 6

1 0 -1 0 0

1 0 1 0 *****

0.5 0 0.5 0 1.0

6/3 = 2 El resultado obtenido es 1

Los g.l. = (r – 1) g.l. = 3 – 1 = 2 g.l. = 2 Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 2 g.l. = 5,99; Por lo tanto no se acepta la hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el 2 de la tabla. No hay significancia estadística con respecto a esta categoría. (P≥0.05).

96

ANEXO XIV. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la procedencia, edad (12 – 60 meses) y diagnóstico (Anaplasmosis). Casos Positivos 12-60

Fo

Fe

(Fo – Fe)

(Fo – Fe)2

(Fo – Fe)2/Fe

Norte Este Oeste Sur Suman

2 1 0 0 3

1.5 1.5 0 0 3

0.5 -0.5 0 0 0

0.25 0.25 0 0 *****

0.16 0.16 0 0 0.33

3 / 2 = 1.5 El resultado obtenido es 0.33

Los g.l. = (r – 1) g.l. = 2 – 1 = 1 g.l. = 1 Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 1 g.l. = 3,84; Por lo tanto no se acepta la hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el 2 de la tabla. No hay significancia estadística con respecto a esta categoría. (P≥0.05).

97

ANEXO XV. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la procedencia, edad (12 – 60 meses) y diagnóstico (Infecciones mixtas). Casos Positivos 12-60

Fo

Fe

(Fo – Fe)

(Fo – Fe)2

(Fo – Fe)2/Fe

Norte Este Oeste Sur Suman

5 5 3 3 16

4 4 4 4 16

1 1 -1 -1 0

1 1 1 1 *****

0.25 0.25 0.25 0.25 1

16 / 4 = 4 El resultado obtenido es 1

Los g.l. = (r – 1) g.l. = 4 – 1 = 3 g.l. = 3 Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el 2 de la tabla. No hay Significancia estadística con respecto a esta categoría. (P≥0.05).

98

ANEXO XVI. Evaluación de casos positivos mediante la Prueba No Paramétrica para una sola muestra, Prueba de Chi Cuadrado para la procedencia, edad (más de 60 meses) y diagnóstico (Infecciones mixtas).

Casos Positivos más de 60

Fo

Fe

(Fo – Fe)

(Fo – Fe)2

(Fo – Fe)2/Fe

Norte Este Oeste Sur Suman

2 1 1 2 6

1.5 1.5 1.5 1.5 6

0.5 -0.5 -0.5 0.5 0

0.25 0.25 0.25 0.25 *****

0.16 0.16 0.16 0.16 0.64

6 / 4 = 1.5 El resultado obtenido es 0.64

Los g.l. = (r – 1) g.l. = 4 – 1 = 3 g.l. = 3 Buscamos en la tabla 2 con un α 0,05 y 3 g.l. = 7,82; Por tanto no se acepta la hipótesis de investigación porque el 2 calculado es inferior que el 2 de la tabla. No hay Significancia estadística con respecto a esta categoría. (P≥0.05).

99

ANEXO XVII. Análisis de sensibilidad del método de diagnóstico.

Resultados de la Prueba

Resultados Verdaderos

Positivos Negativos

57 (A) 43 ©

Total

100 (A + C)

Sensibilidad =

Sensibilidad =

x 100

x 100

Sensibilidad = 57 %

El método de diagnóstico utilizado para determinar la incidencia de enfermedades hemáticas en caninos en la ciudad de Milagro diagnosticados mediante el uso del Kits Snap 4 DX, tiene una sensibilidad del 57 %, lo que nos demuestra que si es confiable este método, ya que el 57 % es significativo según (Guerrero, 1986).

100

ANEXO XVIII.

TABLA DE χ2 (chi cuadrado)

Grados de 20%

10%

5%

2%

1%

0,10%

1

1,64

2,71

3,84

5,41

6,64

10,83

2

3,22

4,6

5,99

7,82

9,21

13,82

3

4,64

6,25

7,82

9,84

11,34

16,27

4

5,99

7,78

9,49

11,67

13,28

18,46

5

7,29

9,24

11,07

13,39

15,09

20,52

6

8,56

10,64

12,59

15,03

16,81

22,46

7

9,8

12,02

14,07

16,62

18,48

24,32

8

11,03

13,36

15,51

18,17

20,09

26,12

9

12,24

14,68

16,92

19,68

21,67

27,88

10

13,44

15,99

18,31

21,16

23,21

29,59

11

14,63

17,28

19,68

22,62

24,72

31,26

12

15,81

18,55

21,03

24,05

26,22

32,91

13

16,98

19,81

22,36

25,47

27,69

34,53

14

18,15

21,06

23,68

26,87

29,14

36,12

15

19,31

22,31

25

28,26

30,58

37,7

16

20,46

23,54

26,3

29,63

32

39,25

17

21,62

24,77

27,59

31

33,41

40,79

18

22,76

25,99

28,87

32,35

34,8

42,31

19

23,9

27,2

30,14

33,69

36,19

43,82

20

25,04

28,41

31,41

35,02

37,57

45,32

21

26,17

29,62

32,67

36,34

38,93

46,8

22

27,3

30,81

33,92

37,66

40,29

48,27

23

28,43

32,01

35,17

38,97

41,64

49,73

24

29,55

33,2

36,42

40,27

42,98

51,18

25

30,68

34,38

37,65

41,57

44,31

52,62

26

31,8

35,56

38,88

42,86

45,64

54,05

27

32,91

36,74

40,11

44,14

46,96

55,48

28

34,03

37,92

41,34

45,42

48,28

56,89

29

35,14

39,09

42,56

46,69

49,59

58,3

30

36,25

40,26

43,77

47,96

50,89

59,7

Libertad.

101

ANEXO XIX. Fotos de todo el proceso de diagnóstico de enfermedades hemáticas caninas en la Ciudad de Milagro.

Elementos que conforman el kit: tubo de ensayo con tapa; micropipeta; la botella con el enjugado; el dispositivo y una muestra de sangre.

102

Paciente: Simone en el momento en que realizó la toma de muestra vena radial.

103

Paciente: kenya en el consultorio antes del chequeo.

104

Obsérvese aquí las petequias ventrales, síntoma clásico de la Ehrlichiosis en paciente Kenya

Resultado de la paciente kenya: Ehrlichia y Anaplasma

105

Paciente: Bebe en el momento de la toma de muestra.

Resultado de la paciente Bebe: Ehrlichia

106

Extracción de la muestra de sangre paciente Lana.

Resultado de la paciente Lana: Ehrlichia y Anaplasma

107

Paciente: Osi en el momento de la toma de muestra.

Resultado del paciente Osi: Ehrlichia y Anaplasma

108

ANEXO XX. Hojas de Registro. DIAGNÓSTICO Nº DE CASO

FECHA

NOMBRE

EDAD

PROCEDENCIA

SEXO

SINTOMAS POSITIVO

1

6-8-10

nena

48 mese

Grupo 1

hembra

2

7-8-10

frida

15 messes

Grupo 1

hembra

3

9-8-10

Billy you

20 meses

Grupo 2

macho

4

14-8-10

flopy

96 meses

Grupo 1

macho

5

27-8-10

randu

96 meses

Grupo 2

macho

6

27-8-10

spaik

96 meses

Grupo 1

macho

7

27-8-10

sarita

36 meses

Grupo 1

hembra

8

27-8-10

truchini

10 meses

Grupo 1

macho

9

30-8-10

Fisher

36 meses

Grupo 3

macho

10

31-8-10

hullk

48 meses

Grupo 1

macho

11

3-9-10

hueso

24 meses

Grupo 1

macho

12

4-9-10

simone

17 meses

Grupo 3

hembra

13

4-9-10

eros

84 meses

Grupo 3

macho

14

6-9-10

killer

48 meses

Grupo 4

macho

15

6-9-10

nena

72 meses

Grupo 4

hembra

16

6-9-10

koby

16 meses

Grupo 3

macho

17

11-9-10

caramelo

72 meses

Grupo 3

hembra

109

Presencia de garrapatas,temperatura alta, mucosas pálidas Delgada antecedentes de dirofilaria en el habitad Presencia de garrapatas-ganglios inflamados-t40°c Presencia de garrapatas-delgadopalido-40.5°c Presencia de garrapatas-caquexticopalido-alitosis-41°c Presencia de garrapatas-mucosas pálidas-animo intermitente Presencia garrapataspálida-sin ánimo-40°c Presencia de garrapatascaquéctico-mucosas amarillas-40.5°c Presencia de garrapatasinmovilidad tren posterior Presencia de garrapatas-mucosas amarillas-petequiasdisnea-41°c Presencia de garrapatascaquextico-39.5°c Presencia de garrapatasdecaimiento-41°c Garrapatas-mucosas palidas-alitosis Problemas de pielproblemas de coagulaciónproblemas de piel Mucosas pálidasvientre ascíticocaquéctica Expuesto a garrapatas-delgadoproblemas de piel Presencia de garrapatas-palidez mucosas-caquécticoparto hace 2 meses39°c

NEGATIVO negativo

negativo

negativo

ehrlichia

ehrlichia

negativo

negativo

anaplasma

Infecciones mixtas

Infecciones mixtas

negativo

ehrlichia Infecciones mixtas Infecciones mixtas

ehrlichia

ehrlichia

negativo

18

13-9-10

nena

18 meses

Grupo 2

hembra

19

14-9-10

Scott

60 meses

Grupo 3

macho

20

15-9-10

cochi

48 meses

Grupo 3

hembra

21

16-9-20

osi

120 meses

Grupo 1

macho

22

16-9-10

bebe

48 meses

Grupo 1

hembra

23

16-9-10

lana

84 meses

Grupo 1

hembra

24

22-9-10

noa

4 meses

Grupo 2

hembra

25

23-9-10

summer

60 meses

Grupo 4

macho

26

23-9-10

nikita

72 meses

Grupo 4

hembra

27

27-9-10

yaki

48 meses

Grupo 4

hembra

28

27-9-10

coqui

30 meses

Grupo 1

hembra

29

5-10-10

Paco

8 meses

Grupo 1

macho

30

6-10-10

osa

10 meses

Grupo 3

hembra

31

7-10-10

Max

17 meses

Grupo 4

macho

32

9-10-10

copo

4 meses

Grupo 2

macho

33

9-10-10

kenya

28 meses

Grupo 3

hembra

34

11-10-10

niña

24 meses

Grupo 3

hembra

110

Presencia de garrapatas-palidez mucosas-gestante38°c Dolor corporal al tacto-inapetentedelgado Presencia garrapataspalidez mucosashalitosis Presencia de garrapatas-palidez mucosas-anorexiacaquéctico Presencia de garrapatasdecaimiento Presencia de garrapata-gestantepalidez mucosas Presencia de garrapatas-manchas petequiales en los parpados Garrapatascaquéctico-mucosas pálidas-con apetito Con garrapatascaquectica-palidez mucosas-halitosisabsceso en la mama Presencia de garrapatas-cojerainapetencia-ganglios inflamados-40°c Presencia garrapataspetequias vientrealopecias Presencia garrapatastics nerviosos- caspahalitosis Presencia de garrapatas-caquexia40°c Presencia garrapatasinapetencia-ganglios inflamados-38.7°c Antecedentes de garrapatasdecaimiento-palidez mucosas-39°c Presencia de garrapatas-petequias en el vientreproblemas de pieldelgada Presencia de garrapatas-alopecias39.5°c

Infecciones mixtas

negativo

negativo

Infecciones mixtas

ehrlichia Infecciones mixtas

negativo

Infecciones mixtas Infecciones mixtas

negativo

anaplasma

anaplasma

anaplasma

ehrlichia

ehrlichia

ehrlichia

negativo

35

11-10-10

shugar

11 meses

Grupo 3

hembra

36

11-16-10

niña

15 meses

Grupo 2

hembra

37

13-10-10

Ronaldinho

72 meses

Grupo 1

macho

38

13-10-10

ranger

10 meses

Grupo 1

macho

39

13-10-10

flopy

4 meses

Grupo 3

hembra

40

14-10-10

bia

30 meses

Grupo 3

hembra

41

15-10-10

suko

5 meses

Grupo 4

macho

42

15-10-10

cuki

16 meses

Grupo 2

hembra

43

15-10-10

shada

5 meses

Grupo 1

hembra

44

15-10-10

coco

12 meses

Grupo 4

macho

45

16-10-10

caramelo

48 meses

Grupo 2

hembra

46

16-10-10

CASANDRA

36 MESES

GRUPO 4

HEMBRA

47

18-10-10

nina

96 meses

Grupo 3

hembra

48

18-10-10

boomer

96 meses

Grupo 3

macho

49

19-10-10

janko

36 meses

Grupo 4

macho

111

Presencia de garrapatas-erupción cutánea-secreción vaginal-caquéctica39.5°c Presencia de garrapatas-problemas de piel-palidez mucosas-38.5 °c Presencia de garrapatas-palidez mucosas-heces oscuras-caquexiaalitosis-38°c Ganglios infladosdemódex canisdecaimiento-39°c Palidez mucosasganglios inflamados heces negras Presencia de garrapatas-palidez mucosas- alopeciasvientre distendido Presencia de garrapatas-delgadoanorexia-40°c Presencia de garrapatas-delgadaanoréxica-heces negras- mucosas pálidas Presencia de garrapatas-palidez mucosas-anorexiaganglios inflamados Presencia de garrapatas-halitosisdelgado-ganglios inflamados Garrapatas-problemas de piel-otitis-ganglios inflamados-dermatitis alérgica PRESENCIA DE GARRAPATASPROBLEMAS DE PIELTVTPresencia de garrapatas-mucosas pálidas-inapetenciamiasis Presencia de garrapatainapetencia

Heces negrascaquécticoinapetente-mucosas escarlatas 39°c

Infecciones mixtas

anaplasma

ehrlichia

anaplasma

negativo

ehrlichia

negativo

ehrlichia

negativo

negativo

Infecciones mixtas

NEGATIVO

negativo

negativo

ehrlichia

20-10-10

nena

96 meses

Grupo 4

hembra

51

21-10-10

cuky

7 meses

Grupo 4

hembra

52

21-10-10

picles

9 meses

Grupo 4

hembra

53

22-10-10

cuky

48 meses

Grupo 1

hembra

54

22-10-10

chucho

36 meses

Grupo 3

Macho

55

26-10-10

lupo

48 meses

Grupo 3

macho

56

26-10-10

shadow

24 meses

Grupo 1

macho

57

27-10-10

kenok

24 meses

Grupo 1

macho

58

28-10-10

pelusa

36 meses

Grupo 1

hembra

59

29-10-10

Lucas

48 meses

Grupo 2

macho

60

3-11-10

gari

60 meses

Grupo 2

macho

61

3-11-10

mara

48 meses

Grupo 4

hembra

62

3-11-10

arena

60 meses

Grupo 4

hembra

63

3-11-10

blanca

6 meses

Grupo 4

hembra

64

3-11-10

blanco

5 meses

Grupo 4

macho

65

5-11-10

chiquita

8 meses

Grupo 4

hembra

Garrapatas-obeso

negativo

50

66

6-11-10

grandota

6 meses

Grupo 2

hembra

112

Presencia de garrapatas-caquexia40°c Presencia garrapataspalidez mucosasdelgades-40°c Presencia garrapatasganglios inflamados Presencia de garrapatas-sangre en la orina Presencia de garrapatas-erupciones en la piel Presencia de garrapatas-anorexiadecaimiento Antecedentes de garrapatas-heces negras-mucosas palidas-40°c Inapetenciadecaimiento-39°cantecedentes de garrapatas Presencia de garrapatas-palidoacumulación de liquido en las extremidades-heces negras-disnea-37°c Presencia garrapataspalidez mucosasanimo intermitente Presencia de garrapatasdecaimiento-halitosis Presencia de garrapatas-vientre ascítico-dando de lactar-mucosas pálidas Caquextica-anoréxicoproblemas de pielpresencia de garrapatas Ascítico-presencia de garrapatas-palidezheces negras-ganglios inflamados Presencia garrapatas39°c-ganglios agrandadosproblemas de piel Presencia de garrapatas-uveítisdecaimiento-ganglios inflamados-caquexia

negativo

negativo anaplasma ehrlichia

negativo Infecciones mixtas Infecciones mixtas

negativo

ehrlichia

Infecciones mixtas ehrlichia

ehrlichia

negativo

ehrlichia

ehrlichia

negativo

67

6-11-10

princesa

24 meses

Grupo 2

hembra

68

8-11-10

cuka

60 meses

Grupo 3

hembra

69

8-11-10

pulgo

18 meses

Grupo 3

macho

70

9-11-10

mory

48 meses

Grupo 4

hembra

71

13-11-10

preciosa

4 meses

Grupo 2

hembra

72

13-11-10

susi

19 meses

Grupo 2

hembra

73

13-11-10

Lucas

120 meses

Grupo 2

macho

74

13-11-10

keila

108 meses

Grupo 2

hembra

75

13-11-10

kipi

48 meses

Grupo 2

macho

76

15-11-10

toti

14 meses

Grupo 3

hembra

77

16-11-10

doshi

48 meses

Grupo 3

hembra

78

18-11-10

guapa

4 meses

Grupo 4

hembra

79

19-11-10

duda

60 meses

Grupo 4

hembra

80

19-11-10

muñeca

96 meses

Grupo 4

hembra

81

20-11-10

bella

36 meses

Grupo 4

hembra

82

26-11-10

chiquita

36 meses

Grupo 2

hembra

83

27-11-10

beyonce

15 meses

Grupo 1

hembra

84

29-11-10

bengi

4 meses

Grupo 3

macho

113

Presencia garrapatasdecaimiento-40°c Presencia garrapatasanemia-ganglios inflamados-38.7°c Presencia garrapatasanemia-anorexia40°c Presencia garrapatasganglios agrandadosheces oscuras Garrapatas-diarreatos-animo intermitente-39.5°c Presencia garrapatasdecaimiento Presencia garrapatasganglios inflamados Heces con sangrehalitosis-encías palidas-disneagarrapatas-38°c Garrapatas abundantes-otitiscaquexia Presencia garrapatasdecaida-ganglios inflamados-39°c Presencia de garrapatas uveítis Presencia garrapatasojos azulados-ganglios inflamados-hígado agrandado Garrapatas abundantes-sist nervioso alteradopalides mucosas Garrapatas-problemas depiel-alteracion nerviosa-pupilas dilatadas37°c-heces negrasascitis-disneapresencia garrapatas Parida-halitosisgarrapatas-palidez mucosas Garrapatas-palidez mucosas-petequiasmiasis-heces negras41°c Presencia garrapatasanorexia-ganglios inflamados – caquéctico-mucosas amarillas

negativo

Infecciones mixtas negativo

ehrlichia

negativo negativo negativo Infecciones mixtas

negativo

negativo negativo

Anaplasma

Infecciones mixtas

Infecciones mixtas

negativo Infecciones mixtas

ehrlichia

negativo

85

30-11-10

estrellita

72 meses

86

1-12-10

oso

4 meses

Grupo 2

hembra

Garrapatas-heces negras-ascitis-disneamucosas palidas-39°c

Grupo 2

macho

Garrapatas-anoréxicodecaído-ganglios inflamados

87

1-12-10

coffe

24 meses

Grupo 1

macho

88

3-12-10

loba

24 meses

Grupo 3

hembra

89

3-12-10

caramelo

72 meses

Grupo 2

macho

90

3-12-10

Max

36 meses

Grupo 2

macho

91

7-12-10

pucca

24 meses

Grupo 3

hembra

92

8-12-10

murdog

168 meses

Grupo 4

macho

93

11-12-10

oso

10 meses

Grupo 4

macho

94

14-12-10

yanka

18 meses

Grupo 2

hembra

95

14-12-10

rabito

11 meses

Grupo 2

macho

96

14-12-10

tobi

33 meses

Grupo 2

macho

97

15-12-10

princesa

19 meses

Grupo 1

hembra

98

22-12-10

lay di

96 meses

Grupo 1

hembra

99

4-1-11

spike

48 meses

Grupo 3

macho

100

6-1-11

Morgan

4 meses

Grupo 1

macho

Infecciones mixtas = Ehrlichia y Anaplasma

114

Presencia de garrapatasinapetencia Inapetencia-vómitos esporádicos-halitosis Presencia garrapatasproblemas de pielpalidez mucosas Presencia garrapataproblemas de pielpalidez mucosasheces fétidas Caquextica-presencia garrapatasinapetencia-palidez mucosas-heces oscuras Presencia garrapatasdificultad de movimiento-tumor en la encía-problemas de piel Presencia garrapatasproblemas de piel Problemas de pielgarrapatas-paridaganglios inflamados Presencia garrapatasganglios inflamadosinapetenciadecaimiento-vomito amarillo espumoso Garrapatas-41°ccaquexia-heces oscuras-anorexia Presencia garrapatasganglios inflamadosalitosis-39°c Garrapatas-mucosas pálidas-heces amarillas-ganglios inflamados-hernia inguinal Presencia garrapatasganglios inflamadosinapetenciadecaimientoPresencia de garrapatasdecaimiento-halitosis

negativo

Negativo

negativo negativo ehrlichia

ehrlichia

Infecciones mixtas

negativo

anaplasma Infecciones mixtas

Infecciones mixtas

negativo Infecciones mixtas

ehrlichia

ehrlichia

negativo