SECRETARIA DE SALUD LABORATORIO ESTATAL DE SALUD PUBLICA “DR. GALO SOBERON Y PARRA“ ACAPULCO, GRO. ELABORADO POR:

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APROBADO POR:

QBP. PATRICIA VILLANUEVA F. QFB. ARACELI HERNÁNDEZ G. QUÍMICAS ANALISTAS

QBP. LAURA T. ÁNGEL PABLO. JEFA DEL LABORATORIO DE MICOBACTERIAS

MSP. MARISA V. CADENA RODRÍGUEZ. RODRÍGUEZ JEFA DEL DEPARTAMENTO DE CONTROL MICROBIOLÓGICO.

CLAVE: TB-P-003

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PÁGINA 1 DE 20 CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO DE MUESTRAS APLICABLES AL LABORATORIO DE MICOBACTERIAS

CRITERIOS RITERIOS DE ACEPTACIÓN Y RECHAZO DE MUESTRAS APLICABLES AL LABORATORIO DE MICOBACTERIAS

DR. EDUARDO DIEGO VALDERRAMA DIRECTOR ACAPULCO, GRO., 20-MAYO MAYO-2014

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1.-

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OBJETIVO.

Dar a conocer los criterios de aceptación y rechazo de las muestras y laminillas que ingresan al Laboratorio Estatal de Salud Pública “Dr. Galo Soberón y Parra” para el diagnóstico y control de tratamiento de la tuberculosis y lepra.

2.-

ALCANCE.

Aplica a las muestras que se toman para el diagnóstico y control de tuberculosis y lepra, además de las laminillas provenientes de los Laboratorios de la Red Estatal de tuberculosis y lepra a que envían control de calidad.

3.-

DEFINICIÓN.

Control de Calidad: a la supervisión indirecta que se efectúa a distancia y consiste en la comparación de los resultados de la lectura de lamini laminillas llas de baciloscopias y el análisis y evaluación de la información mensual enviada al Laboratorio Estatal por los diferentes laboratorios que integran la Red de Tuberculosis y Lepra. Lepra Criterios de Aceptación: al conjunto de características que debe cumplir una muestra desde la toma, manejo, conservación y transporte, para obtener resultados confiables. Criterios de Rechazo: al conjunto de características inadecuadas de una muestra en la toma, manejo, conservación y transporte. Lepra: a la enfermedad infec infectocontagiosa crónica, causada por Mycobacteriumleprae que afecta principalmente piel y nervios periféricos, puede afectar otros órganos y en ocasiones es sistémica. Muestra biológica: al espécimen de origen humano susceptible al análisis. Tuberculosis:a a la enfermedad infecciosa, causada por el complejo M. tuberculosis (M. M. tuberculosis, M. bovis, M. microti, M. africanum, M. canettii canettii, M. caprae y M. pinnipedii), ), que se transmite del enfermo al sujeto sano por inhalación de material infectante., de madre infectada al producto, ingestión de leche contaminada, contacto con personas enfermas bacilíferas o animales enfermos . Puede ser de localización pulmonar o extrapulmonar.

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DOCUMENTOS APLICABLES APLICABLES. Modificación a la Norma Oficial Mexicana NOM-006-SSA2-2013, Para la prevención y control de la tuberculosis.

•

Norma Oficial Mexicana NOM NOM-027-SSA2-2007, 2007, Para la prevención y control de la lepra.

•

Organización Panamericana de la Salud. Manual para el diagnóstico bacteriológico de la tuberculosis. N Normas ormas y guía técnica. Parte I Baciloscopia. Organización Mundial de la Salud, 2008.

•

Secretaría de Salud. Manual de Técnicas de Laboratorio para el Examen Baciloscópico. Primera edición, 2003.

•

Instituto de Diagnóstico y Referencia Epidemiológicos. procedimientos de Laboratorio de lepra. Noviembre 2000.

Manual

de

RESPONSABILIDADES.

Personal médico y de enfermería enfermería: elaboración laboración de solicitud de estudio, toma, t manejo, conservación y transporte de dela muestra. Responsables jurisdiccionales del Programa de Tuberculosis y Lepra: Lepra organización para el envió de muestras para cultivo acompañadas de la solicitud de estudio correspondiente, envió de e informes mensuales y control de calidad. Coordinación de Recepción de Muestras y Atención al Público: recibir las muestras mu y laminillas que ingresan al Laboratorio Estatal aplicando los criterios iterios de aceptación y rechazo. Laboratorio de Micobacterias: procesar las muestras y realizar control de calidad a los laboratorios de la Red de tuberculosis y Lepra.

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DESCRIPCIÓN DE LA ACTIVIDAD.

Para realizar una entrega y recepción eficiente de muestras, debe de atender aten las siguientes indicaciones: El éxito en el aislamiento de Mycobacterium tuberculosisdepende depende básicamente de la obtención de una muestra de calidad. El tiempo y la temperatura ambiente son factores que disminuyen las posibilidades de aislamiento, por lo que es necesario evitar el retraso en el traslado de muestras y cumplir con las recomendaciones que se mencionan a continuación.

CRITERIOS DE ACEPTACIÓN Estos criterios se aplicarán a partir de la fecha de la publicación. Una muestra de calidad es aquella que: a) Proviene del sitio de la lesión (por ejemplo: si se sospecha de tuberculosis renal la muestra ideal es una serie de muestras de orina y no de expectoración). b) En cantidad antidad suficiente (dependiendo el tipo de muestra). c) Contenida en un recipiente adecuado adecuado, según sea el caso. d) Identificada correctamente. Es recomendable rotular el cuerpo del envase, jamás la tapa, antes de la toma de la muestra, con los siguientes datos: • • •

Nombre ombre completo y edad del paciente. Tipo de muestra (expectoración, orina, biopsia, etc.). Hora y fecha de toma (día/mes/año).

e) Conservada a temperatura de refrigeración entre 4 a 10°C,, desde la toma hasta la entrega al Laboratorio Estatal Estatal.. Se recomienda el uso de refrigerantes refrigera para conservar la muestra, e evitar utilizar hielo para ara no contaminarla. contamina f) Transportada correctamente. Cerrar perfectamente el envase que contiene la muestra, introducirlo en bolsa plástica para evitar contaminación por derrames, colocarla dentro de una caja de material resistente de preferencia SUSTITUYE A REV.: 0

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térmico que contenga refrigerante, protegidas de la luz solar para mantener las muestras en condiciones óptimas durante el transporte. g) Acompañada compañada del formato de solicitud correspondiente, llenado correctamente en su totalidad.

h) Las muestras para diagnóstico de tuberculosis por baciloscopiase baciloscopia enviarán al laboratorio local más cercano al domicilio del paciente. i) Se recibirán en el Laboratorio Estatal de Salud Pública “Dr. Galo Soberón y Parra” todas las muestras enviad enviadas para diagnóstico y controlde de Tuberculosis por cultivo que cumplan con los criterios de aceptación.

CRITERIOS DE RECHAZO Toda muestra que no cumpla con alguno de los criterios de aceptación será rechazada: suficiente, según el tipo de muestra. a) En cantidad insuficiente b) Contenida en un recipiente ina inadecuado,, sin rotulo o con datos incorrectos. c) Sinel formatoTB-F-001 001SOLICITUD DE CULTIVOS Y BACILOSCOPIAS DEL PROGRAMA DE TUBERCULOSIS TUBERCULOSIS, o bien, que el formato sea llenado incorrectamente,, de manera incompleta o con datos ilegibles y sin resumen clínico. d) Muestra derramada masivamente. e) Conservación inadecuada inadecuada: expuesta a la luz solar, sin red fría(refrigerantes) (refrigerantes) o rebasando el tiempo establecido de entrega al Laboratorio Estatal, de acuerdo al tipo de muestra. f) Transporte incorrect incorrecto: o: envase abierto, fuera de un contenedor térmico, térmico muestras que vengan en contacto con agua de deshielo. g) Laminillas rotas o empaquetadas incorrectamente y que se encuentren fuera del periodo de supervisión supervisión. SUSTITUYE A REV.: 0

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RECEPCIÓN DE MUESTRAS Las muestras y laminillas enviadas al Laboratorio Estatal de Salud Pública “Dr. Galo Soberón y Parra”, se recibirán en la Coordinación de Recepción de Muestras y Atención al Público en los horarios siguientes: •

Las muestras de expectoración para diagnóstico y control de tuberculosis por cultivo se recibirán de lunes a jueves en un horario de 07:00 a 18:30 pm y los viernes en un horario de 07:00 a 10:30 am.

•

Las as muestras extrapulmonares (líquido cefalorraquídeo cefalorraquídeo, orina, biopsia, líquido pleural, etc.) se reciben de lunes a viernes de 7:00 a 10:30 am con previo aviso al Laboratorio de Micobacterias, teléfono: 4418502 ext. 24 y 25.

•

Los pacientes para diagnóstico y control de lepra se atenderán en un horario de lunes a viernes de 08:00am a 14:30 pm.

•

Las laminillas de supervisión de tuberculosis y lepra se recibirán de lunes l a viernes en un horario de 07:00 a 18:30 pm.

•

La atención ención a pacientes para seguimiento de cultivos de tuberculosis se hará en un horario de 12:00 a 14:00 pm. Presentarse con ell formatoTB-F-003 formato Citas tas para cultivo de tuberculosis tuberculosis, con la finalidad debrindarle brindarle un mejor servicio.

Una vez que se le notifique al paciente que su resultado fue reportado,podrá consultarlo al igual que el médico tratante tratante,en la página Web eb del Laboratorio Estatal de Salud Públicawww.lesp www.lesp-guerrero.gob.mxingresando en la pestaña de Resultados el número de registro de la muestra que se encuentra en el formato TB-F-003.

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DIAGNÓSTICO DE TUBERCULOSIS POR BACILOSCOPIA Criterios de Aceptación Muestra: expectoración. Esta debe ser mucopurulenta (el color varía de blanco opaco, verde-amarillentas amarillentas o rojizas cuando son sanguinolentas). En caso de que la muestra sea saliva o secreción nasal es conveniente recibirla, procesarla y anotar la observación, porque aun cuando no sea una muestra de buena calidad, puede contener bacilos. Insistir en las instrucciones indicando al paciente el procedimiento para la recolección de otra muestra. Se recomienda la obtención de tres muestras por sintomático respiratorio. La primera muestra debe ser tomada en el momento de la consulta con el médico, quien explicará al paciente las indicaciones con lenguaje claro y sencillo para que obtenga una muestra adecuada, ecuada, e indicará que la segunda muestra la debe de recolectar en su casa por la mañana al despertar y la tercera muestra al momento de entregar la segunda en el servicio de salud, o también puede ser recolectada por el paciente al despertar en su casa. 5 ml. Se podrá aceptar una muestra en cantidad mínima de 1 mililitro Cantidad: 3-5 solo si es de calidad. Recipiente:El El envase para la muestra debe reunir las siguientes características: a) Boca ancha de aproximadamente 6 cm de diámetro, que facilite la recolección y permita al analista elegir la porción mucopurulenta de la muestra. b) Tapa de rosca, para disminuir el riesgo de derramar la muestra durante el transporte y de producir aerosoles al abrirla en el laboratorio. c) Etiquetado correctamente para que permita la identificación del envase. d) Capacidad de 50 a 60 ml aproximadamente para recolectar un volumen suficiente de muestra. e) De pared lisa y transparente, para poder juzgar la calidad de la muestra sin abrir el envase. SUSTITUYE A REV.: 0

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f) Desechable para facilitar su eliminación. Toma de muestra: debe llevarse a cabo en un área bien ventilada e iluminada con luz solar o al aire libre, evitando tomarla en lugares concurridos de espacios cerrados como baños; debido a que los bacilos pueden permanecer en el ambiente por un largo periodo de tiempo. Para obtener una muestra de calidad, se deben seguir los pasos mostrados en la Figura 1. Conservación: asegurarse que los frascos se encuentren debidamente cerrados, introducirlos ucirlos en bolsa plástica de forma individual para evitar derrames. Si las muestras no se entregan inmediatamente al laboratorio, deberán ser refrigeradas (4 -10ºC) 10ºC) o conservadas en un lugar fresco protegidas de la luz solar. Trasporte:termos o contenedo contenedores adecuados que contengan refrigerantes que conserven una temperatura entre 4 4-10ºC; 10ºC; tratando de mantener los frascos con muestra en forma vertical con el fin de evitar derrames y exposición a la luz solar. Las muestras deben venir a acompañadas del formatoTB-F-001 SOLICITUD DE CULTIVOS Y BACILOSCOPIAS DEL PROGRAMA DE TUBERCULOSIS utilizando el formato actualizado, llenado correctamente. Indicando si es una baciloscopia de

diagnóstico 1ª, 2ª o 3ª (de pacientes que no han tomado tratamiento antituberculoso) o si se trata de baciloscopia de control 1ª, 2ª, 3ª, 4ª, 5ª o 6ªde pacientes que estén tomando tratamiento antituberculoso.

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PROCEDIMIENTO PARA LA RECOLECCIÓN DE EXPECTORACIÓN LAVARSE LA BOCA

RESPIRAR Y EXHALAR TRES VECES

TOSER CON FUERZA Y DEPOSITAR LA MUESTRA

Figura 1. SUSTITUYE A REV.: 0

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DIAGNÓSTICO DE TUBERCULOSIS POR CULTIVO Todas las muestras enviadas para cultivo de Tuberculosis deben venir acompañadas del formato formatoTB-F-001SOLICITUD DE CULTIVOS Y BACILOSCOPIAS DEL PROGRAMA DE TUBERCULOSIS utilizando el formato actualizado, actualizado llenado correctamente Incluir ncluir un breve resumen clínico el cual debe contemplar los siguientes puntos: •

Indicar si el paciente presenta sintomatología comp compatible atible con tuberculosis.

•

Si hay convivencia con un enfermo de tuberculosis tuberculosis.

•

Si el paciente cursa con tratamiento antituberculoso, indicar el tipo de tratamiento, fecha de inicio y de término.

•

Indicar resultados de baciloscopias de diagnóstico y control y/o cultivos realizados con anterioridad.

•

Si el paciente recibió tratamientos antituberculosos con anterioridad, indicar el tipo de tratamiento, fecha de término y si se concluyeron satisfactoriamente.

•

Indicar sintomatología actual del paciente.

Criterios de Aceptación EXPECTORACIÓN Muestra: expectoración. Esta debe ser mucopurulenta (el color varía de blanco opaco, verde-amarillentas amarillentas o rojizas cuando son sanguinolentas). Podrán aceptarse muestras de saliva solo en caso de tratarse de un paciente en control de tratamiento. Cantidad: 3-5 ml. Recipiente:El El envase para la muestra debe reunir las siguientes características: a) Frasco estéril de b boca ancha de aproximadamente 6 cm de diámetro, que facilite la recolección cción y permita al analista elegir la porción mucopurulenta de la muestra.

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b) Tapa de rosca, para disminuir el riesgo de derramar la muestra durante el transporte y de producir aerosoles al abrirla en el laboratorio. c) Etiquetado correctamente para que permita la identificación del envase. d) Con capacidad apacidad de 50 a 60 ml aproximadamente para recolectar un volumen suficiente de muestra. e) De pared lisa y transparente, para poder juzgar la calidad de la muestra sin abrir el envase. f) Desechable para facilitar su eliminación. Toma de muestra: debe llevarse a cabo en un área bien ventilada e iluminada con luz solar o al aire libre, evitando tomarla en lugares concurridos de espacios cerrados como baños; debido a que los bacilos pueden permanecer en el ambiente por un largo periodo de tiempo. P Para ara obtener una muestra de calidad, se deben seguir los pasos mostrados en la Figura 1. Conservación: Las muestras deben m mantenerse antenerse a temperatura de refrigeración (4-10ºC). Asegurar que los frascos se encuentren debidamente cerrados, introducirlos en bolsa sa plástica de forma individual para evitar derrames. Se deberán entregar al Laboratorio Estatal dentro de las 24 horas a partir de la toma de muestra. Trasporte: en contenedores adecuados utilizando refrigerantes con el fin de evitar derrames y exposición n a la luz solar. ORINA Muestra: se requieren de seis muestras obligatorias, previo aseo de los genitales,, tomadas del segundo chorro de la primera micción de la mañana, preferentemente de días consecutivos. Cantidad: recolectar como mínimo 50 ml de orina. Recipiente:frasco de plástico ástico estéril, tapa de rosca, boca ancha, paredes lisas,, transparente, desechable, capacidad de 100 mililitros como mínimo. Figura 2. SUSTITUYE A REV.: 0

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Juan Díaz Pérez 58 años Orina 1ª F. Toma: 02/05/14 Hora toma: 7:30hrs

Figura 2.

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Toma de muestra: En caso de que el paciente sea foráneo, deberá acudir al laboratorio para recolectar la muestra. Se le debe de informar al paciente como debe recolectar la muestra según se indica en la Figura 3. Conservación: las muestras de o orina rina se deben de llevar de manera inmediata al laboratorio.

Fig. 3. Toma de muestra de orina Se requiere de un aseo genital previo a la toma de muestra, realizándolo de la siguiente manera: 1. Lavarse las manos perfectamente 2. Los varones deben lavarse el pene retrayendo el prepucio para una limpieza completa con agua y jabón. 3. Enseguida debe desechar el primer chorro de orina a la taza del baño y captar el segundo chorro en el frasco recolector sin tocarlo con los genitales. 4. Cerrar perfectamente el envase.

(1)

(2)

(3)

(4)

LAVADO GÁSTRICO Muestra: se requieren de tres muestras seriadas recolectadas por la mañana cuando el paciente aún se encuentre en ayuno. Cantidad: recolectar como mínimo 5 ml.

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Recipiente:frasco de plástico ástico estéril, tapa de rosca, boca ancha, paredes lisas, lisas transparente, desechable, capacidad de 100 mililitros. Toma de muestra: la obtención se realiza por personal médico especializado. especializado Conservación: se deben de llevar de manera inmediata al labor laboratorio. atorio. LÍQUIDO CEFALORRAQUÍDEO Muestra: se requiere de una muestra estéril. Cantidad: recolectar como mínimo 10 ml. Recipiente:se se requiere de un ffrasco estéril de 15 mililitros de capacidad y con tapa de rosca de cierre hermético. Toma de muestra: la obtención se realiza por personal médico especializado, especializado en condiciones asépticas. Sin agregar anticoagulante. Conservación: se debe de llevar de manera inmediata al laboratorio, en condiciones de refrigeración.

LÍQUIDO PLEURAL, ASCITIS, MÉDULA ÓSEA Y OTROS Muestra: se requiere de una muestra estéril. Cantidad: recolectar como mínimo 10 mililitros. Recipiente:se se requiere de un envase estéril, se pueden recibir las muestras en jeringas. Toma de muestra: la obtención se realiza por personal médico especializado, especializado en condiciones asépticas. Conservación: se deben de llevar de manera inmediata al laboratorio, en condiciones de refrigeración.

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BIOPSIAS Muestra: se requiere de una muestra estéril. Cantidad: las piezas deberán ser mayores a 1cm. Recipiente:se se requiere de un ffrasco estéril de 100 mililitros de capacidad. Toma de muestra: la obtención se realiza por personal médico especializado, especializado en condiciones asépticas. La pieza se deposita en solución salina fisiológica. fisiológica Se debe evitar el uso de formol porque que es letal para el bacilo. Conservación: se deben de llevar de manera inmediata al laboratorio, en condiciones de refrigeración.

DIAGNÓSTICO DE LEPRA POR BACILOSCOPIA Muestra: Las muestras para realizar los extendidos de lepra, se obtienen obtien del lóbulo de la oreja, de una lesión cutánea y cuando se considere necesario, de la mucosa nasal. Cantidad: la necesaria para realizar un frotis de 5 a 7 milímetros de diámetro aproximadamente. Toma de muestra: La obtención de la muestra se realiza por personal médico, médico de enfermería y/o o químicos capacitados capacitados, en condiciones asépticas. Explicarle al paciente de forma clara y sencilla el procedimiento que se sigue para la toma de muestra. Preguntar al paciente su nombre completo y corroborarlo con la solicitud de estudio y/o el formato formatoTB-F-012FORMATO SOLICITUD DE ESTUDIO BACILOSCOPICO PARA LEPRAutilizando el formato actualizado. Limpiar el portaobjetos con gasa o torunda humedecida con alcohol y dejar secar. Cuidando de no tocar con los dedos el lado destinado al extendido, rotularcon rotular lápiz del No. 2 la parte esmerilada esmerilada,, escribiendo el primer nombre completo del paciente seguido de las iníciales de los nombres subsecuentes (en caso de que es paciente tenga más de uno) y del apellido paterno y materno. Del número de registro asignado por or la Coordinación de Recepción de Muestras y Atención al Público, anotar los dígitos que aparecen después de las letras “MC”. Finalmente escribir las iníciales “LESPAG” (Laboratori (Laboratorio o Estatal de Salud Pública Acapulco SUSTITUYE A REV.: 0

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Guerrero) que indican el lugar donde se tomó la muestra (ver Fig. 4). En caso de que la muestra sea tomada fuera del Laboratorio Estatal cada unidad de salud asignará el registro y la unidad que corresponda.

Ejemplo mplo del rotulado: Paciente: María Concepción Reyes Torralba Número de Registro: 35670MC2459 Unidad de salud: Laboratorio Estatal, Acapulco, Gro.

María CRT 2459 LESPAG

Figura 4. Rotulo de la laminilla

Colocar la laminilla, sobre la cartulina negra para visualizar mejor la muestra al momento de depositarla, asegurándose que el rotulo quede hacia arriba. LÓBULO DE OREJA La toma de muestra del lóbulo de la oreja es la primer muestra que se toma, por ser uno de los sitios de mayor probabilidad de encontrar el bacilo y causar menos molestias al paciente. Limpiar la parte inferior del lóbulo suavemente con una torunda de algodón impregnada con alcohol al 70% (se recomienda asear solo tres veces, de arriba hacia abajo). Dejar secar. Abrir la envoltura de la hoja para bisturí. Con los dedos índice y pulgar presionar el borde inferior del lóbulo, aplicando presión hasta producir isquemia (que se observa con un cambio de coloración en la piel, como una zona blanquecina),si ,si después de 30 a 40 segundos no hay isquemia es preferible soltar y volver a intentarlo. Una vez que se logró la isquemia se debe mantener la presión con la misma intensidad, lo que garantizará tomar una muestra de linfa libre de sangre, con la hoja SUSTITUYE A REV.: 0

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de bisturí hacer un corte de 5 mm de largo en el borde del lóbulo y de 2 mm de profundidad de la dermis. Después del corte sin retirar la hoja para bisturí girarlo hacia la derecha (hasta que quede horizontalmente horizontalmente, ver Fig. 5) y hacer un raspado desde sde este extremo hasta el principio del corte, varias veces para obtener tejido y SIN DEJAR DE PRESIONAR DURANTE TODO EL PROCESO, transferir la muestra a la laminilla colocándola en el extremo cercano al rotulado y extenderla en forma circular (cuidando que e se deposite la muestra contenida en ambos lados de la hoja para bisturí), para facilitar la lectura del frotis se hace el extendido de 5-7 5 mm de diámetro aproximadamente. Corroborar que la muestra sea suficiente en el frotis, en caso contrario, repetir ell raspado para obtener la cantidad deseada. Una vez hecho el frotis, soltar el lóbulo y colocar sobre la incisión un pequeño fragmento de algodón seco.

Figura 5.Toma .Toma de muestra y preparación del extendido.

Descartar la hoja para bisturí en el contenedor rojo rígido de RPBI y utilizar una nueva si toma muestra de lesión.

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LESIÓN CUTÁNEA Si el paciente presenta alguna lesión cutánea,se ,se debe tomar muestra. Es la segunda muestra que se toma, debido a que es otro de los sitios de mayor probabilidad de encontrar el bacilo y causar menos molestias al paciente. La muestra se toma de acuerdo al tipo de lesión, si el paciente presenta nódulos se tomará del centro y si presenta manchas o placas se tomará de la orilla de la lesión. Hacer el corte como se describió anteriormente. Transferir la muestra hacia el portaobjetos colocándola en la parte central y extenderla para hacer el frotis. frotis Descartar la hoja para bisturí en RPBI.

Figura 6. L Lesión cutánea nódulo/mancha

MUCOSA NASAL SE RECOMIENDA NO TOMAR ESTA MUESTRA DEBIDO A LO MOLESTO QUE RESULTA PARA EL PACIENTE Y AL RIESGO QUE EXISTE DE LASTIMARLO. Se indica al pacienteque se limpie la nariz para no obtener tener moco nasal. Se frota con un hisopo la parte anterior y posterior del tabique nasal. Se recomienda que el algodón del hisopoesté b bien ien compactado. Transferir la muestra al portaobjetos colocándola en el extremo opuesto al del número de identificación y extenderla en forma circular. Descartar el hisopo en bolsa roja de RPBI.

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ELABORACIÓN DEL FROTIS El orden en el que se depositan las muestras en el portaobjetos es importante, debido a que su posición nos indica el tipo de muestra que fue tomada y en base a esto el químico analista reportará el resultado. La muestra de lóbulo ulo de la oreja se deposita en el extremo cercano al rotulo, la de lesión cutánea se coloca en la parte central y en el caso de que tomará muestra de la mucosa nasal se deposita en el extremo opuesto al rotulo, como se indica en la figura 7.

Mucosa Nasal Lesión cutánea Lóbulo de la oreja María CRT 2459 LESPAG Figura 7. Elaboración del frotis

Una vez concluida la toma de muestra, la laminilla se coloca en una gradilla, gradilla si la muestra fue tomada en el Laboratorio Estatal de Salud Pública se entregará al Laboratorio de Micobacterias, junto con la solicitud de estudio y/o el formato TB-F012FORMATO SOLICITUD DE ESTUDIO BACILOSCOPICO PARA LEPRAutilizando el formato actualiz actualizado. Sí la muestra es tomada en otra Unidad de Salud y se va a transportar para su proceso al Laboratorio Estatal o a otro perteneciente a la Red Estatal de Laboratorios de Lepra, se debe preparar la laminilla para su envió, como se describe a continuación. Dejar secar la laminilla en la gradilla u horizontalmente sobre la mesa (ver Fig. 8), a temperatura ambiente mínimo por 15 minutos, posteriormente, fijar el SUSTITUYE A REV.: 0

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frotis pasando la laminilla sobre la flama tres veces, cuidando que no se caliente demasiado, la temperatura de la laminilla debe ser soportable al tacto.Se Se envuelve la laminilla en papel bond o de estraza, junto con un trozo de cartón grueso,, un abatelenguas u cualquier otro material que ayude a darle soporte a la laminilla y se coloca una etiquet etiqueta a con los siguientes datos: • • • •

Unidad de salud que envía la laminilla Jurisdicción Sanitaria a la que pertenece dicha unidad Indicar si es para Diagnóstico o Control de Lepra Fecha de la toma de muestra

Posteriormente, se coloca oloca la laminilla dentro de una bolsa plástica y se engrapa ala la solicitud de estudio y/o el formato formatoTB-F-012FORMATO 012FORMATO SOLICITUD DE ESTUDIO BACILOSCOPICO PARA LEPRAutilizando el formato actualizado.

Figura 8. Preparación de la laminilla para su envió al Laboratorio.

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CONTROL DE CALIDAD DE TUBERCULOSIS Y LEPRA Deberán enviar al Laboratorio Estatal de Salud Pública “Dr. Galo Soberón y Parra”para evaluar la aplicación de la técnica baciloscópica baciloscópica: •

Para el diagnóstico y control de Tuberculosis el 100% de baciloscopias positivas y el 10% de baciloscopias negativas.

•

Para el diagnóstico y control de Lepra el 100% de baciloscopias positivas y 100% de baciloscopias negativas.

El informe mensual de bac baciloscopia iloscopia de Tuberculosis, Lepra y el control de calidad deberán enviarlo de forma mensual dentro de los primeros cinco días siguientes al corte. Transporte de laminillas Recomendamos atender las siguientes sugerencias antes de empaquetar las baciloscopias pias para él envió de control de calidad. Una vez concluida la lectura de la baciloscopia, se colocan con el extendido hacia abajo sobre un papel para retirar el exceso de aceite de inmersión, posteriormente se sumergen en xilol por 30 segundos y se dejan secar. Se ordenan según se relacionen en el formato TB-F-002RELECTURA RELECTURA DE LAMINILLAS DE TUBERCULOSISutilizando el formato actualizado o el formato TB-F13RELECTURA RELECTURA DE LAMINILLAS DE LEPRAutilizando el formato actualizado, separándolas en cuatro grupos para envolverlas (Baciloscopias de diagnóstico positivo, Baciloscopias de control positivo, Baciloscopias de diagnóstico negativo y Baciloscopias de control negativo). Las baciloscopias se envuelven con papel (estraza o de reciclaje) en forma de acordeón y a su vez se empaquetan en una caja de tamaño adecuado, asegurándolas con algún material de reciclaje (cartón, papel, unicel, etc.) para evitar que estas se deslicen dentro de la caja. Por último envolver el paquete con papel (estraza o de reciclaje) y rotularl rotularlo.

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Criterios de aceptación •

Las laminillas de baciloscopias que se envíen para control de calidad deberán cumplir los siguientes requisitos:

•

La caja que contiene las laminillas de baciloscopias debe estar envuelta con papel, para asegurar la integridad de las mismas.

•

El paquete debe contener un rotulo visible y legible, con los siguientes datos: Nombre de la unidad que envía: Jurisdicción Sanitaria: Periodo de supervisión upervisión (mes y año): Número de baciloscopias enviadas:

•

El paquete deberá estar acompañado por el formato TB-F-002 002RELECTURA DE LAMINILLAS DE TUBERCULOSISutilizando el formato actualizado o el formato TB-F-13RELECTURA RELECTURA DE LAMINILLAS DE LEPRAutilizando el formato actualizadoel cual debe ser llenado correctamente e en n su totalidad.

Criterios de rechazo

7.-

•

Laminillas de baciloscopias sueltas envueltas con gasa o solo con papel y sujetas con cinta adhesiva.

•

Paquetes sin envolver o con datos incompletos.

•

Paquetes que no vengan acompañados del formato formatoTB-F-002 002RELECTURA DE E LAMINILLAS DE TUBERCULOSISutilizando el formato actualizadoo el formato TB-F-13RELECTURA RELECTURA DE LAMINILLAS DE LEPRAutilizando el formato actualizado, según sea el caso.

•

Baciloscopias para control de calidad que no correspondan al mes de evaluación.

ANEXOS.

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