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Curso 2011 – 2012. Grupo 16
Paloma Fernández Freire Rocío Gómez Lencero Unidad Docente de Biología Celular
Práctica
Fecha
1
10 noviembre*
2
28, 29, 30 noviembre
Mitosis
3
12, 13, 14 diciembre
Meiosis
4
7, 8, 9 febrero
5
14, 15, 16 febrero
Epitelios 1
6
21, 22, 23 febrero
Epitelios 2
7
13, 14, 15 marzo
Tejido óseo y osificación
8
26, 27, 28 marzo
Sangre y tejido linfoide
9
10, 11, 12 abril
Tejido muscular
10
16, 17, 18 abril
Tejido nervioso
11
23, 24, 25 abril
Histología Vegetal: raíz, tallo y hoja
12
7, 8, 9 mayo
*
TEMA Metodología
Gametogénesis
Repaso y examen
La primera práctica se realizará en el aula 111 del edificio de Biología para todos los grupos de 11:30 a 13:30 h.
NORMATIVA Y EVALUACIÓN DE LAS PRÁCTICAS 1. La asistencia a las sesiones prácticas es obligatoria. No es necesario aportar material ni bata de laboratorio. 2. Cada alumno quedará encuadrado en uno de los tres grupos de prácticas en que se divide el grupo de teoría. Los cambios de grupo deberán ser aprobados previamente por el profesor. 3. Se realizarán 12 sesiones prácticas cuya duración será de 2 horas cada una. Cada alumno asistirá al grupo al cual esté asignado. El horario de las prácticas para el Grupo 16 será de 9:30 a 11:30 horas. 4. Las sesiones de prácticas consistirán fundamentalmente en la observación microscópica de preparaciones cito/histológicas. 5. Habrá un examen de prácticas al final del curso que consistirá en la descripción pormenorizada de cuatro muestras de entre las estudiadas a los largo de las sesiones prácticas. Cada muestra bien descrita tendrá un valor de 2,5 puntos en ele examen. 6. Será necesario superar las prácticas para poder aprobar la asignatura. La nota de prácticas computará un 20% de la nota global de la asignatura.
Según la Normativa de Seguridad de la Universidad Autónoma de Madrid de septiembre de 2008 en la cual se indican la organización, normas y recomendaciones de seguridad e higiene para el trabajo experimental, el profesor de prácticas les indicará al principio de la primera sesión dicha normativa. En este sentido el profesor les informará sobre los riesgos y peligrosidad de las sustancias y experimentos a realizar durante las diferentes sesiones, los medios de autoprotección disponibles en el laboratorio (campana extractora, lavaojos y extintores) y aledaños (bocas de incendio y pulsadores de emergencia), y
los que debe aportar el alumno, los procedimientos para la eliminación de residuos, los teléfonos de contacto para casos de emergencia, la localización y composición del botiquín, y las vías de evacuación para casos de emergencia. Los alumnos deberán asistir a las prácticas provistos de bata, gafas de seguridad homologadas con protección lateral de los ojos, y guantes de látex según indicación previa del profesor. La bata debe de permanecer en todo momento cerrada. Los alumnos con pelo largo deberán tenerlo recogido en todo momento. En el laboratorio de prácticas está prohibido fumar, comer y beber alimentos. Cualquier percance se informará inmediatamente al profesor presente en la sala de prácticas.
1.- Observación de diapositivas y vídeos que muestran los distintos tipos de microscopía utilizados en Citología e Histología.
1.- Estructura del microscopio de prácticas y manejo del mismo.
Oculares Anillo de ajuste de dioptrías
Estativo Interruptor
Revolver
Potenciómetro
Objetivos
Tornillo macrométrico
Platina Tornillo micrométrico
Condensador
Mandos control de platina
• Oculares: Proporcionan un aumento fijo de 10x • Anillo de ajuste de dioptrías: Permiten ajustar el microscopio para aquellas personas que necesitan usar gafas. En caso contrario, la marca debe de estar en la posición 0. • Revolver: Es la estructura en la cual se anclan los objetivos y que desplazaremos para utilizar el objetivo deseado. • Objetivos: Juego de objetivos del microscopio. Nos proporcionan unos aumentos variables. En los microscopios de prácticas tenemos objetivos de 4x, 10x, 40x y 100x (¡¡necesita aceite!!) • Platina: Es la región en la cual se coloca la preparación para ser observada. • Condensador: Estructura que permite concentrar la luz para poder observar la muestra. Tiene posiciones para campo claro (0), contraste de fases (10, 40) y campo oscuro (B). • Interruptor: Para encender la luz del microscopio. • Estativo: Estructura que constituye el armazón del microscopio. • Tornillo macrométrico: Primer tornillo de enfoque. Permite hacer un primer enfoque de la muestra. • Tornillo micrométrico: Segundo tornillo de enfoque. Permite reajustar el enfoque durante la observación. • Mandos de control de la platina: Permiten el desplazamiento de la muestra. • Potenciómetro: Permite regular la intensidad de luz que atraviesa el preparado.
2.-Observación mediante microscopía de campo claro, contraste de fase y campo oscuro de aplastados de meristemos radiculares de ajo (Allium sativum) (2n _ 16) fijados con etanol:ácido acético 3:1, teñidos con la técnica citoquímica de Feulgen para demostrar ADN.
Aplastado de células meristemáticas de Allium sativum (2n = 16) Tinción : reacción de Feulgen
Interfases
Profase
Metafase
Anafase
Telofase
1.- Visualización de las distintas etapas de la espermatogénesis en aplastados de testículo de ortóptero.
Primera división meiótica
Profase I
Leptotena
Cigotena
Paquitena
Diplotena
Diacinesis
Prometafase I
Metafase I
Anafase I
Telofase I
Segunda división meiótica Intercinesis
Profase II
Prometafase II
Metafase II
Anafase II
Telofase II
Espermátidas tempranas
Espermátidas maduras
Espermatozoides
Esquema representativo de la meiosis de un individuo macho 2n=4. Los cromosomas de una pareja de homólogos aparecen en verde y rojo, y los cromosomas de otra pareja de homólogos en azul y amarillo. Todos los cromosomas son telocéntricos. Nota: Las espermátidas medias y tardías que aparecen en el esquema no corresponden con la espermiogénesis de ortópteros.
Observación de aplastados permanentes de testículos de saltamontes de la especie Locusta migratoria (2n=11 + XO) fijados en metanol:acético 3:1 y teñidos con la técnica de Feulgen.
Prepaquitene (Leptotene o Cigotene)
Paquitene
Diplotene
Diacinesis
1.- Visualización del proceso de espermatogénesis en cortes de testículo humano y de ratón, teñidos con tricrómico de Masson.
TESTÍCULO
EPITELIO SEMINÍFERO
Arterias Vena Conducto deferente Cabeza del
dimo
bulos feros
nica albugínea Cola del dimo TÚBULOS SEMINÍFERO
Espermatogonias
Espermatocito
Lumen del bulo fero
Fibras de geno
Núcleos de los espermatozoides
Epitelio seminífero
cleos de los fibroblastos
Tejido conjuntivo denso ( nica nea)
Flagelos de los espermatozoides
lulas de Leydig
2.- Visualización del proceso de oogénesis en cortes de ovario de rata, teñidos con hematoxilinaeosina.
Ovario n de los
Folículo primordial
Folículo primario
culos
Folículo primario multilaminar
Folículo secundario
Folículo maduro o de Graaf
1.- Observación los diferentes tipos de epitelios presentes en el riñón. Se utilizarán cortes de riñón de conejo y ratón teñidos con tricrómico de Masson .
rulo
Epitelios de la nefrona
Túbulo contorneado proximal
Túbulo contorneado distal Asa de Henle
2.- Observación del epitelio cilíndrico simple con microvellosidades (ribete en cepillo) en el epitelio de revestimiento del intestino delgado. Se usarán cortes de parafina de intestino delgado de ratón teñidos con tricrómico de Masson.
Epitelio cilíndrico simple con microvellosidades
lula caliciforme
Glándula tiroides
Tráquea
Esófago
Mucosa
Muscular de la mucosa
Epitelio
Luz Epitelio
Submucosa
Adventicia Luz
Túnica muscular
Cartílago
1.- Observación del epitelio pseudoestratificado cilíndrico ciliado en la tráquea,. Se emplearán cortes de tráquea y esófago de conejo teñidos con tricrómico de Masson
Músculo liso
Epitelio
Adventicia Cartílago hialino
Cilios
lula caliciforme
Célula caliciforme Célula epitelial
Célula basal
Conjuntivo subyacente
2.- Observación del epitelio plano estratificado queratinizado en el esófago. Se emplearán cortes de tráquea y esófago de conejo teñidos con tricrómico de Masson
Epitelio
Luz
Mucosa
Submucosa
Muscular
Estrato córneo Estrato granuloso
Estrato espinoso
Estrato basal
Serosa
3.- Análisis de acinos serosos, mucosos y mixtos en cortes de glándulas salivales teñidos con hematoxilina/eosina. Visualización de glándulas endocrinas de tipo folicular en cortes de tiroides teñidos con hematoxilina/eosina.
Folículo tiroideo
1.- Visualización del proceso de osificación endocondral en la placa epifisaria. Se emplearán cortes de tibia de rata teñidos con tricrómico de Masson.
EPÍFISIS
METÁFISIS (PLACA EPIFISARIA)
METÁFISIS (PLACA EPIFISARIA)
Hueso largo adulto
Osteoclasto
Osteocitos
Osteoblasto s
TIPOS CELULARES
EPÍFISIS
2.- Visualización del proceso de osificación endocondral en la placa epifisaria. Se emplearán cortes de tibia de rata teñidos con tricrómico de Masson.
Placa epifisaria
Placa epifisaria Cartílago hialino en reposo
Cartílago hialino en proliferación (columnar)
Cartílago hipertrófico Cartílago calcificado
Espículas óseas (hueso esponjoso)
2.- Observación de la estructura del hueso maduro en cortes obtenidos por la técnica de devastación.
Periostio
Hueso esponjoso Cavidad medular Hueso compacto
Osteonas
Capilar Vénula Laminillas
Vena Arteria
Trabéculas de hueso esponjoso
Canal central Endostio
Canal perforante
1.- Observación de los elementos formes de la sangre en frotis de sangre humana y de pollo, fijadas en metanol y coloreadas según la técnica de May-Grünwald-Giemsa.
Elementos formes de la sangre
5 4
1
1. Eritrocitos
3
4
2. Neutrófilo 6 7
2
6
3. Basófilo
5. Plaquetas
7. Eosinófilo
6. Linfocito
4. Monocito
2.- Visualización de tejido linfoide en cortes de timo teñidos con hematoxilina/eosina.
Cápsula de tejido conjuntivo
Linfocitos
Célula reticular
Zona cortical Zona medular Corpúsculo de Hassall
Corpúsculo de Hassall
Corteza
Médula
Corpúsculo de Hassall
Fibra Núcleo
Miofibrillas Núcleos Sarcómero
Disco intercalar
Fibra
Músculo cardíaco Músculo esquelético
Núcleo Fibras Músculo liso
1.- Observación de tejido muscular liso en la túnica muscular del intestino delgado.
Corte longitudinal
Capa circular interna
Capa longitudinal externa
Corte transversal
2.- Observación de músculo estriado esquelético en cortes de lengua de hamster fijada en Bouin acuoso e incluida en parafina, y teñidos con tricrómico de Masson.
Epitelio
Capa músculo estriado
Células musculares estriadas esqueléticas Corte longitudinal
Corte transversal
Fibras musculares en corte transversal Núcleos Núcleos
Fibra muscular en corte longitudinal
Fibras musculares
Capas del epitelio plano estratificado queratinizado de la lengua
Papila filiforme Estrato córneo
Estrato lúcido Estrato granuloso
Estrato espinoso
Estrato basal o germinativo
Fibra muscular cortada longitudinalmente Fibra muscular cortada transversalmente
Nervios
Arteria
Tejido conjuntivo
3.- Análisis de músculo cardíaco en cortes corazón.
Corte longitudinal
Corte transversal
Núcleo
Fibra cardíaca
Discos intercalares
1.- Observación de cortes de cerebelo de rata y humano, fijados con Bouin e incluidos en parafina, teñidos con hematoxilina/eosina. 2.- Observación de cortes de cerebelo de humano, fijados con Bouin e incluidos en parafina, teñidos con plata.
Corte transversal de
Corte transversal de
Pliegues cerebelosos
falo humano
falo de rata
Piamadre Vaso sanguíneo
Capa molecular Células de Purkinje
Capa granular
Sustancia blanca
Capa granular
Células de Purkinje
Capa molecular
Sustancia blanca
Capa molecular Dendrita Soma Núcleo
Axón
Células de Purkinje Capa granular
Sustancia gris
2.-
Visualización de secciones transversales de médula espinal de ratón teñidas con hematoxilina/eosina. Asímismo se observarán cortes transversales semifinos de médula espinal de rana, fijada en glutaraldehído, contrastada mediante osmio-parafenilendiamina y posteriormente incluida en Epón.
Región dorsal Asta posterior
Sustancia gris
Sustancia blanca
Canal del epéndimo
Cuerpos de motoneuronas
Asta anterior
Piamadre
Región ventral
3.- Observación de cortes de nervio periférico teñidos con hematoxilina/eosina.
Nervio
rico
1.- Observación de secciones transversales de raíz de lirio (Iris germanica, monocotiledónea) teñidas con azul de toluidina.
Epidermis Exodermis Parénquima cortical
Cilindro cortical
Endodermis
Floema
Endodermis
Periciclo
Parénquima medular
Cilindro medular
Xilema
Floema
Célula de paso
Periciclo
Xilema
2.- Observación de secciones transversales de tallo de lirio (Iris germanica, monocotiledónea) teñidas con azul de toluidina.
Epidermis Parénquima clorofílico Colénquima
Parénquima intersticial Haz vascular
Epidermis
Parénquima clorofílico Campo de poros primarios
Haz vascular
Floema Colénquima
Parénquima intersticial
Xilema
3.- Observación de cortes transversales de hoja de adelfa (Nerium oleander, dicotiledónea) teñidos con safranina o azul de toluidina.
Haz
Envés
Nervio central
Epidermis
Xilema
Epidermis
Parénquima lagunar
Haces vasculares
Criptas estomáticas
Cutícula
Estoma
100 μm
Parénquima
Floema
Parénquima en empalizada
Tricomas