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SUMARIO V VII
AUTORES
PRÓLOGO
El virus rábico: morfología, morfogénesis y crecimiento en cultivos celulares E. HERNÁNDEZ BAUMOARTEN, M.V.Z., M.S., Ph.D. l. Introducción 11. Morfología y morfogénesis 111.Crecimiento del virus rábico en cultivos celulares Referencias
1 2 22 34
La rabia, los murciélagos y el control de los hematófagos R. FLORES CRESPO, Biol. l. Introducción 11. La Rabia y los murciélagos 111. Los murciélagos hematófagos IV. El control de los murciélagos hematófagos V. Discusión y conclusiones Referencias
38 38
40 45
6 3 67
Patogenia de la rabia E. HERNÁNDEZ BAUMOARTEN, M.V.Z., M.S., Ph.D. I. Introducción
II. Penetración del virus en animales III. Patogénesis para el sistema nervioso central
IX
72 72 7 8
x
CIENCIA VETERINARIA 2-1978
IV. Infectividad y patogenicidad: efecto en el sistema nervioso central V. Rabia abortiva
82 94
VI. Modo de acción de las vacunas y terapia antiviral post-
exposición Referencias
96 100
Epidemiología de la Estomatitis Vesicular JOHN MASON, DV.M., M.P,R. 1. Introducción
104
II. Características clínicas
104
III. Agentes virales
105
IV. Diferencias entre los serotipos New Jersey e Indiana
de Estomatitis Vesicular 105 V.
Características epidemiológicas de la Estomatitis Ve-
sicular 106 VI. Patogenia y transmisión de la Estomatitis Vesicular 108 VII. Producción de anticuerpos e inmunidad a la Estomatitis Vesicular 112 VIII. Vacunación contra la Estomatitis Vesicular 113 IX. Estomatitis Vesícular en poblaciones de animales siI~ vestres. 114 X. Estomatitis Vesicular en humanos 116 XI. El papel de los artrópodos en la transmisión de la Estomatitis Vesicular XII. El virus de .la Estomatitis Vesícular como virus de
plantas XIII. Un' mecanismo alternativo de transmisión
117
121 122
XIV. Sobrevivencia interepidémica del virus de la Estomatitis
Vesícular.
125
XV. Preguntas a ser resueltas en relación. a la epidemiología
de la Estomatitis Vesicular XVI. Propuestas para estudios ulteriores de campo Referencias
127 129 130
SUMARIO
XI
Estomatitis Vesicular en México
J. MASON, D.V.M., M.P.ll., A· HERRERA, M.V.Z., W. J. TURNER, D.V.M., y J. GAY, M.V.Z., Dip. I. Introducción II. Estomatitis Vesicular en México III. Discusión Referencias
138 138 151 154
Arbovirus y arbovirosis en México MARÍA LUISA ZÁRATE, M.C., Ph.D. l. Introducción n. Antecedentes In. Arbovirus aislados en México IV. Arbovirosis en México Referencias
157 159 160
171 180
Experimentación con vacunas ribosomales de Salmonella typhimurium y de Salmonella typhi Ty2
J. 1.. MOLlNARI, M.C. I. Introducción
II. Material y métodos III. Resultados IV. Discusión Referencias
183 184 189
209 211
Infecciones mixtas del aparato respiratorio C. PIJOAN AGUADE, M.V.Z., Dip. Bact. (Lond.), Ph.D. l. Introducción 216 11. Mecanismos de defensa de las vías respiratorias profundas 216 nI. Mecanismos de patogenicidad de los microorganismos 219 IV. Los microorganismos secundarios y su patogenicidad
223
V.Conclusiones Referencias
227 228
XII
CIENCIA VETERINARIA 2-1978
Ciclo biológico de Babesia en la garrapata R. D. SMITH, M.V.z., M.S., Ph.D. I. Introducción II. Clasificación de Babesia III. Ciclo evolutivo en la garrapata IV. Relación vector-parásito-huésped V.
234235 236 249
Mantenimiento de B. argentina en Boophilus microplus
bajo condiciones de laboratorio Referencias
257 260
Efectos del stréss térmico sobre la fertilidad del ganado bovino H. ROMÁN PONCE, M.V.Z., M.S., Ph.D. 1. Introducción
265
Ir. Asociaciónde los parámetros cIimáticos ambientales con
la eficiencia reproductiva In. Modificaciones ambientales para reducir los efectos del stréss térmico
266 272
IV. Mecanismos fisiológicos responsables de la reducción de
la fertilidad bajo condiciones de stréss térmico Referencias
277 288
La aparición de la pubertad en vaquilIas E. GONZÁLEZ PADILLA, M.v.Z., M.S., Ph.D. 1. Introducción n. Factores que afectan la aparición de la pubertad en vaquillas
293 295
III. Mecanismos fisiológicos que determinan la aparición de
la pubertad IV. Inducción de la pubertad en vaquillas Referencias
298 314316
SUMARIO
XIII
Fuentes de energía y proteínas para la alimentación de las aves M. CUCA G., Ing. Agr., M.S., Ph.D. yE. AVILA G.,.M.V.Z., M.S. 1. Introducción n. La avicultura es una industria dinámica y tecnificada In. Fuentes de energía IV. Fuentes de proteína Referencias
326 326 328 337 352
Métodos de contención y manejo de los animales de zoológico M. CABRERA VALTIERRA, M.V.Z.
I. Introducción II. Descripción de métodos III. Complicaciones y accidentes Referencias
359 361 369
371
XIV
CIENCIA VETERINARIA 2-1978
LISTA DE CUADROS Vampiros muertos por día subsiguiente al tratamiento de I entre 20 con 2 mI de Vampirinip II, en una colonia cautiva Resultados del tratamiento con Vampirinip II, de 20 vampiros con 2 mI c/u. Porcentaje acumulativo de mortalidad en una colonia cautiva de 10 vampiros cuyas mordeduras en los dos bovinos de que se alimentaban fueron tratados por 3 días consecutivos con 1 mI de Vampirinip II. Resultados del tratamiento tópico de las mordeduras de vampiro en el ganado de tres ranchos de Yucatán, con Vampirinip II. 58 Resultado del tratamiento al ganado por vía intramúscular con Vampirinip III {Rancho San Carlos, Y ucatán) .
53 53
56
60
Resultado del tratamiento al ganado por vía intrarnuscular con
Vampirinip III (Rancho San Pedro, Yucatán)
60
Resultado del tratamiento al ganado por vía intramuscular con
Vampirinip III (Rancho Kanto, Yucatán) 61 Resultado del tratamiento al ganado por vía intramuscular con Vampirinip III (Rancho Ojo de Agua, S.L.P.) 61 Arbovirus aislados en México 161 Porciento de sobrevida y tiempo leta1 a! 50% en ratones inmunizados subcutáneamente con preparación ribosomal de 1 día, obtenida de Salmonella typhimurium y desafiados 30 días después por vía intraperitoneal con 100 DL50 de Salmonella virulenta. 189 Porciento de sobrevida y tiempo letal al 50% en ratones inmunizados subcutáneamente con preparación ribosomal almacenada durante 90 días, obtenida de Salmonella typhimurium y desafiados 30 días después intraperitoneaImente con 100 DL50 de Salmonella virulenta 190 Porr:iento de sobrevida y tiempo letal al 50% en ratones inmuniw zados subcutáneamente con diferentes dosis de preparación ribosomal
obtenida de Salmonella typhimurium y desafiados 75 días después intraperitonealmente con 10 DL50 de Salmo191 nella virulenta Porciento de sobrevivientes de ratones vacunados por vía subcutánea con 2 dosis de fracción ribosomaI de Salmonella typhimurium str y desafiados por vía ora! con 5.5 x lO' UFC de Salmonella typhimurium strr; siete días después de la 2a.
inmunización.
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XIV
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LISTA DE CUADROS Vampiros muertos por día subsiguiente al tratamiento de I entre 20 con 2 mI de Vampirinip II, en una colonia cautiva Resultados del tratamiento con Vampirinip II, de 20 vampiros con 2 mI c/u. Porcentaje acumulativo de mortálidad en una colonia cautiva de 10 vampiros cuyas mordeduras en los dos bovinos de que se alimentaban fueron tratados por 3 días consecutivos con 1 mI de Vampirinip II. Resultados del tratamiento tópico de las mordeduras de vampiro en el ganado de tres ranchos de Yucatán, con Vampirinip II. 58 Resultado del tratamiento al ganado por vía intramúscular con Vampirinip III (Rancho San Carlos, Yucatán) .
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Resultado del tratamiento al ganado por vía intrarnuscular con
Vampirinip III (Rancho San Pedro, Yucatán)
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Resultado del tratamiento al ganado por vía intramuscular con
Vampirinip III (Rancho Kanto, Yucatán) 61 Resultado del tratamiento al ganado por vía intramuscular con Vampirinip III (Rancho Ojo de Agua, S.L.P.) 61 Arbovirus aislados en México 161 Porciento de sobrevida y tiempo leta1 a! 50% en ratones inmunizados subcutáneamente con preparación ribosomal de 1 día, obtenida de Salmonella typhimurium y desafiados 30 días después por vía intraperitoneal con 100 DL50 de Salmonella virulenta. 189 Porciento de sobrevida y tiempo letal al 50% en ratones inmunizados subcutáneamente con preparación ribosomal almacenada durante 90 días, obtenida de Salmonella typhimurium y desafiados 30 días después intraperitoneaImente con 100 DL50 de Salmonella virulenta 190 Porciento de sobrevida y tiempo letal al 50% en ratones inmuniw zados subcutáneamente con diferentes dosis de preparación ribosomal
obtenida de Salmonella typhimurium y desafiados 75 días después intraperitonealmente con 10 DL50 de Salmonella virulenta 191 Porciento de sobrevivientes de ratones vacunados por vía subcutánea con 2 dosis de fracción ribosomaI de Salmonella typhimurium strs y desafiados por vía ora! con 5.5 x lO' UFC de Salmonella typhimurium strr; siete días después de la 2a.
inmunización.
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XVI
CIENCIA VETERINARIA 2-1978
Concentraciones séricas de hormonas en muestras colectadas a
intervalos de 6 horas en seis vaquillas prepúberes. 310 Peso de pollos alimentados con diferentes niveles de pulido de
arroz. 331 Composición química de 30 variedades de yuca. 333 Efectos de la utilización de la melaza de caña de azúcar en la dieta de las aves en crecimiento, a las 20 semanas de edad. 334 Efectos de la utilización de la melaza de caña de azúcar, en la dieta de aves en postura. 335 Efectos de la harina de pescado anchoveta peruana, en dietas de pollos de engorda. 338 Disponibilidad biológica de lisina en cuatro harinas de pescado mexicanas. 339 Composición nutritiva de algunas fuentes proteicas de origen vegetal. 340 Efecto de someter a la pasta de soya cruda" la autoclave, en la ganancia de peso, el peso del pancreas de pollos de 7 a 20 dias de edad y la actividad ureásica. 341 Respuesta de los pollos de 7 a 21 dias de edad a la suplementación de DL- metionina con raciones de pasta de soya cruda y pasta de soya cocida al 20% de proteina. 343 Efecto de la suplementación de sulfato ferroso en la coloración de la yema de huevo. 344 Efecto de la suplementación de lisina en pollos alimentados con dietas semipurificadas a base de pasta de cártamo tamizada .. 348 Especies animales, equipo y procedimientos generalmente usados para su contención y manejo en cautiverio ..
Dosificación del Rompún en Rumiantiae Dosificación del Rompún en carnívoros.
Dosificación del Rompún en équidos. Dosificación del Rompún en primates. Dosificación del Sernylan y Promazina .. 368
362
365 366
367 367
SUMARIO
XVII
LISTA DE FIGURAS Modelos de las subunidades del virus rábico. 4 Cuatro modelos de Rhabdovirus. 5 Vista de núcleoproteínas a las que se les han removido 106 peplomeros. 7 Vista tridimensional de un Rhabdovirus en formación con un
cuadrante seccionado.
8
Células BHK-21, trece horas después de la infección con virus
V-319, 15000X. 10 Célula 13S infectada con virus V-319, 16 horas después de la infección. 15 000X. 11 Célula 13S infectada con virus cepa ERA, 52500X. 12 Parte de dos células 13S infectadas con cepa ERA. Punto medio de la infección, 48 horas después de iniciada. 22 500X. 13 Parte de una célula 13S infectada con virus Mazatán, 22 500X. 17 Células 13S infectadas con virus V-319, 120 horas después de la infección. 30000X. 18 Células BHK-21 infectadas con virus ERA, 148 horas después de la infección. 22 500X. 19 Ciclo de infección del virus rábico (representación esquemática). 26 Corteza cerebral normal de rat60, 9 000X. 84 Corteza cerebral normal de ratón. 9 000X. 85 Citoplasma de una neurona de la corteza cerebral del ratón
infectada con virus V-319. 45000X.
86
Neurona de corteza cerebral de ratón infectada con virus Ma-
zatán. 30000X. Célula de Purkinje de cerebelo de ratón infectado con V-319. 15000X.
87 90
Célula de Purkinje en estado avanzado de degeneración.
15000X. Estomatitis Vesicular en México. 1962-1975. , Distribución de Estomatitis Vesicular (Tipo Nueva Jersey) en México. 1949-1975.
91 141
142
Distribución de Estomatitis Vesicular (Tipo Indiana) en Mé-
xico. 1949-1976.
143
Relación entre precipitación pluvial y número de investigaciones
de campo positivas a Estomatitis Vesícular. Investigaciones sobre enfermedades vesiculares. Arbovirus y arbovirosis en México:, Mapa de su distrioución
geográfica actual.
145 148
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SUMARIO
XVII
LISTA DE FIGURAS Modelos de las subunidades del virus rábico. 4 Cuatro modelos de Rhabdovirus. 5 Vista de núcleoproteínas a las que se les han removido 106 peplomeros. 7 Vista tridimensional de un Rhabdovirus en formación con un
cuadrante seccionado.
8
Células BHK-21, trece horas después de la infección con virus
V-319, 15000X. 10 Célula 13S infectada con virus V-319, 16 horas después de la infección. 15 000X. 11 Célula 13S infectada con virus cepa ERA, 52500X. 12 Parte de dos células 13S infectadas con cepa ERA. Punto medio de la infección, 48 horas después de iniciada. 22 500X. 13 Parte de una célula 13S infectada con virus Mazatán, 22 500X. 17 Células 13S infectadas con virus V-319, 120 horas después de la infección. 30000X. 18 Células BHK-21 infectadas con virus ERA, 148 horas después de la infección. 22 500X. 19 Ciclo de infección del virus rábico (representación esquemática). 26 Corteza cerebral normal de rat60, 9 000X. 84 Corteza cerebral normal de ratón. 9 000X. 85 Citoplasma de una neurona de la corteza cerebral del ratón
infectada con virus V-319. 45000X.
86
Neurona de corteza cerebral de ratón infectada con virus Ma-
zatán. 30000X. Célula de Purkinje de cerebelo de ratón infectado con V-319. 15000X.
87 90
Célula de Purkinje en estado avanzado de degeneración.
15000X. Estomatitis Vesicular en México. 1962-1975. , Distribución de Estomatitis Vesicular (Tipo Nueva Jersey) en México. 1949-1975.
91 141
142
Distribución de Estomatitis Vesicular (Tipo Indiana) en Mé-
xico. 1949-1976.
143
Relación entre precipitación pluvial y número de investigaciones
de campo positivas a Estomatitis Vesícular.· Investigaciones sobre enfermedades vesiculares. Arbovirus y arbovirosis en México:, Mapa de su distribución
geográfica actual.
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LISTA DE FIGURAS Modelos de las subunidades del virus rábico. 4 Cuatro modelos de Rhabdovirus. 5 Vista de núcleoproteínas a las que se les han removido 106 peplomeros. 7 Vista tridimensional de un Rhabdovirus en formación con un
cuadrante seccionado.
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Células BHK-21, trece horas después de la infección con virus
V-319, 15000X. 10 Célula 13S infectada con virus V-319, 16 horas después de la infección. 15 000X. 11 Célula 13S infectada con virus cepa ERA, 52500X. 12 Parte de dos células 13S infectadas con cepa ERA. Punto medio de la infección, 48 horas después de iniciada. 22 500X. 13 Parte de una célula 13S infectada con virus Mazatán, 22 500X. 17 Células 13S infectadas con virus V-319, 120 horas después de la infección. 30000X. 18 Células BHK-21 infectadas con virus ERA, 148 horas después de la infección. 22 500X. 19 Ciclo de infección del virus rábico (representación esquemática). 26 Corteza cerebral normal de rat60, 9 000X. 84 Corteza cerebral normal de ratón. 9 000X. 85 Citoplasma de una neurona de la corteza cerebral del ratón
infectada con virus V-319. 45000X.
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Neurona de corteza cerebral de ratón infectada con virus Ma-
zatán. 30000X. Célula de Purkinje de cerebelo de ratón infectado con V-319. 15000X.
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Célula de Purkinje en estado avanzado de degeneración.
15000X. Estomatitis Vesicular en México. 1962-1975. , Distribución de Estomatitis Vesicular (Tipo Nueva Jersey) en México. 1949-1975.
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Distribución de Estomatitis Vesicular (Tipo Indiana) en Mé-
xico. 1949-1976.
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Relación entre precipitadón pluvial y número de investigaciones
de campo positivas a Estomatitis Vesícular.· Investigaciones sobre enfermedades vesiculares. Arbovirus y arbovirosis en México:, Mapa de su distribución
geográfica actual.
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LISTA DE FIGURAS Modelos de las subunidades del virus rábico. 4 Cuatro modelos de Rhabdovirus. 5 Vista de núcleoproteínas a las que se les han removido 106 peplomeros. 7 Vista tridimensional de un Rhabdovirus en formación con un
cuadrante seccionado.
8
Células BHK-21, trece horas después de la infección con virus
V-319, 15000X. 10 Célula 13S infectada con virus V-319, 16 horas después de la infección. 15 000X. 11 Célula 13S infectada con virus cepa ERA, 52500X. 12 Parte de dos células 13S infectadas con cepa ERA. Punto medio de la infección, 48 horas después de iniciada. 22 500X. 13 Parte de una célula 13S infectada con virus Mazatán, 22 500X. 17 Células 13S infectadas con virus V-319, 120 horas después de la infección. 30000X. 18 Células BHK-21 infectadas con virus ERA, 148 horas después de la infección. 22 500X. 19 Ciclo de infección del virus rábico (representación esquemática). 26 Corteza cerebral normal de rat60, 9 000X. 84 Corteza cerebral normal de ratón. 9 000X. 85 Citoplasma de una neurona de la corteza cerebral del ratón
infectada con virus V-319. 45000X.
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Neurona de corteza cerebral de ratón infectada con virus Ma-
zatán. 30000X. Célula de Purkinje de cerebelo de ratón infectado con V-319. 15000X.
87 90
Célula de Purkinje en estado avanzado de degeneración.
15000X. Estomatitis Vesicular en México. 1962-1975. , Distribución de Estomatitis Vesicular (Tipo Nueva Jersey) en México. 1949-1975.
91 141
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Distribución de Estomatitis Vesicular (Tipo Indiana) en Mé-
xico. 1949-1976.
143
Relación entre precipitación pluvial y número de investigaciones
de campo positivas a Estomatitis Vesícular. Investigaciones sobre enfermedades vesiculares. Arbovirus y arbovirosis en México:, Mapa de su distribución
geográfica actual.
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