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METODOLOGÍA GENERAL PARA EL ESTUDIO DE MICROORGANISMOS
MEDIOS DE CULTIVO DEFINICIÓN
Es una preparación artificial, sólida, semisólida o líquida que suministra los requerimientos nutricionales y energéticos a los microorganismos para su crecimiento y multiplicación, y se debe aproximar lo más posible a su habitat natural o nicho ecológico.
REQUERIMIENTOS NUTRICIONALES Y ENERGÉTICOS DE LOS MICROORGANISMOS FUENTE ENERGÍA: ATP y poder reductor (NADH, NADPH) Fototrofos: luz Quimiotrofos: reacciones de oxido-reducción de compuestos orgánicos e inorgánicos
FUENTE DE CARBONO: moléculas con destino a estructuras, multiplicación, etc Autotrofos: CO2 Heterotrofos: moléculas orgánicas (azúcares, ác. grasos, aminoácidos, etc)
ELECTRONES: para reducir la fuente de carbono Litotrofos: compuestos inorgánicos reducidos Organotrofos: compuestos orgánicos reducidos
Microorganismos
Fuente de
Fuente de
Ejemplos de
energía
carbono
microorganismos
________________________________________________________________________
Fotolitotrofos o
luz
CO2
Fotoautotrofos
Algas, bacterias verdes y azules cianobacterias
Fotoorganotrofos o
luz
Fotoheterotrofos
Quimiolitotrofos o
comp orgánicos simples
redox
CO2
redox
comp orgánicos
Bacterias verdes y rojas
Bacterias y Archeae
Quimioautotrofos
Quimioorganotrofos o quimioheterottrofos
Hongos, Bacterias protozoos, Archeae
complejos
COMPOSICIÓN QUÍMICA DE LOS MEDIOS DE CULTIVO 1.- ELEMENTOS ENERGÉTICOS Y CONSTITUTIVOS 1.1.- MACRONUTRIENTES (carbono, nitrógeno, P, S, Ca, Mg, K, Na) 1.2.- MICRONUTRIENTES
-Frecuentemente esenciales: Mn, Fe, Co y Cu -Esenciales en casos especiales: B, Al, Si, V, Ni, Se - Inhibidores de crecimiento: As, Au, Pb, Cr, Ag
1.3.- FACTORES DE CRECIMIENTO 2.- AGENTES SOLIDIFICANTES: agar, silicagel, agarosa, gelatina, albúmina de huevo, suero
3.- AGUA DESTILADA 4.- CONDICIONES FÍSICAS: temperatura, oxígeno, pH, presión osmótica, humedad, luz
Fuente: Brock Biología de los Microorganismos 10ª ed.
Fuente: Brock Biología de los Microorganismos 10ª ed.
FACTORES DE CRECIMIENTO Compuestos orgánicos específicos requeridos en muy bajas concentraciones La célula no los puede sintetizar La causa del problema: mutaciones afectan las vías de síntesis del compuesto. INDISPENSABLES: deben ser adicionados al medio de cultivo Ej. * vitaminas del grupo B * algunos aminoácidos * purinas y pirimidinas Gen1 S1
Gen2 S2
S3
MEDIOS DE CULTIVO: CLASIFICACIÓN A. BACTERIAS 1.- SEGÚN SU CONSISTENCIA a.- Líquidos: ej. caldo nutritivo, caldo tioglicolato, agua peptonada b.- Sólidos agar ej. agar nutritivo sílicagel
colonia
albumosos: huevo ej. Lowestein Jensen suero c.- Semisólidos ej. agar blando agar SIM Hugh y Leifson
COLONIA: población de bacterias que provienen de una única célula madre, todas con el mismo genotipo y fenotipo. Cada colonia tiene morfología específica.
2.- Según su composición a.- Medios comunes b.- Medios enriquecidos
3.- Según su origen a.- Medios sintéticos ( o definidos) b.- Medios complejos (o naturales)
4.- Según su función
► Medios de conservación y transporte ► Medios de enriquecimiento ► Medios selectivos ► Medios diferenciales
EJEMPLOS DE MEDIOS DE CULTIVO PARA MICROORGANISMOS CON REQUERIMIENTOS NUTRICIONALES SIMPLES Y COMPLEJOS
Fuente: Brock Biología de los Microorganismos. 12ª ed. 2009
MEDIOS DE CULTIVO
B.- Para RICKETSIAS Y CLAMIDIAS a.- Cultivo celular (células animales) b.- Cultivo en embrión de pollo
C.- PARA VIRUS a.- Cultivo celular b.- Cultivo en embrión de pollo c.- Cultivo en bacterias (bacteriófagos) D.- MEDIOS DE CULTIVO PARA HONGOS E.- MEDIOS DE CULTIVO PARA PROTOZOOS F.- MEDIOS DE CULTIVO PARA ALGAS
MEDIOS DE CULTIVO PARA HONGOS:
-Agar Sabouraud glucosa - Agar oxitetraciclina glucosa extracto de levadura (OGY) - Agar Czapek Dox - Agar-patata-glucosa
Agar OGY
Agar Sabouraud Glucosa
QUÉ ES UNA BACTERIA ANAEROBIA? ANAEROBIA? Es una bacteria que carece de sistema respiratorio aerobio, no puede utilizar oxígeno como aceptor final de electrones.
Zona óxica
Zona anóxica
Fuente: Brock Biología de los Microorganismos. 12ª ed. 2009
POR QUÉ EL O2 ES LETAL PARA LOS ANAEROBIOS ? Reducción del oxígeno hasta agua mediante la incorporación secuencial de electrones
Todos los compuestos intermediarios que se forman son altamente reactivos y tóxicos para la célula.
ENZIMAS QUE DESTRUYEN FORMAS TÓXICAS DERIVADAS DEL OXÍGENO: sólo presentes en microorganismos aerobios
LOS MICROORGANISMOS ANAEROBIOS CARECEN DE ESTAS ENZIMAS.
MEDIOS DE CULTIVO PARA BACTERIAS ANAEROBIAS
No selectivos Sólidos: Agar sangre (AS) Agar infusión cerebro corazón (BHI) Agar tripticase soja (TSA)
Líquidos:
Caldo Tioglicolato Carne picada (para aislar Clostridium, conservar cultivos)
Recomendación: trabajar con medios de cultivo frescos, recién preparados.
Selectivos
► agar sulfito-polimixina-sulfadiacina (SPS) ► agar sangre paramomicina-vancomicina desarrollan anaerobios obligados Gram – inhibe Gram + (vancomicina) - Inhibe facultativos Gram – ► agar sangre vancomicina-canamicina desarrollan anaerobios obligados Gram – inhibe Gram + (vancomicina) – Inhibe facultativos Gram – ► agar yema de huevo neomicina ayuda al aislamiento de especies de Clostridium por las reacciones : lipasa y lecitinasa – inhibe algunas bacterias facultativas Gram -
SI NO DISPONE DE UN MEDIO DE CULTIVO PRAS, QUE PRECAUCIÓN DEBE TENER EN CUENTA ANTES DE SEMBRAR UN ANAEROBIO?
Hervir a Baño María durante 15 minutos antes de sembrar para eliminar el oxígeno disuelto en el medio de cultivo y enfriar rápidamente bajo canilla para evitar que se reoxigene. Sembrar inmediatamente.
TÉCNICAS PARA GENERAR ANAEROBIOSIS (o condiciones anóxicas)
● Jarra anóxica con generador de Gas Pak ● Evacuación y reemplazo (ER) ● Sistema de Bio Bag (sobre generador de CO2) ● Medios prepre-reducidos anaeróbicamente esterilizados (PRAS) ● Cámara anóxica ● Capa de vaselina – parafina (3:2) ● Sistemas comerciales: Anaerocult A Anaerocult P Anaerocult C
Vas-Par
JARRA ANÓXICA (TÉCNICA DE GAS PAK) TABLETA 1: BH4Na+ H2O
H2
TABLETA 2: C6H8O7 + HCOO3Na + H2O
CO2
¿Cómo consume el O2? H2 + O2
Paladio
H2O
JARRA ANÓXICA
JARRA ANÓXICA
POR QUÉ PUEDE FRACASAR GAS PAK?
► Catalizador no activo ► Generador de gas defectuoso ► Mal mecanismo de cierre de la tapa de la jarra ► Que el agua no llegue a las tabletas del sobre generador de gas pak
Evacuación – Reemplazo (ER) Desecador
Cámara anóxica
Anaerocult
Cámara anóxica
VAS-PAR
Sistema Bio-Bag
(3:2)
Vaselina-parafina
ANAEROCULT COMPOSICIÓN
Polvo de hierro Ácido cítrico Sodio carbonato Tierra silícea
La adición de agua en el interior de la plancha inicia la reacción: Fe 2+
O2
Fe 3+ ANAEROCULT
CONSERVACIÓN DE CEPAS MICROBIANAS
LOS TRES OBJETIVOS PARA UNA CORRECTA CONSERVACIÓN:
1.- Que el cultivo se mantenga puro (PUREZA)
2.- Que el cultivo se mantenga viable (VIABILIDAD)
3.- Que el cultivo este genéticamente estable (ESTABILIDAD)
MÉTODOS DE CONSERVACIÓN DE LOS MICROORGANISMOS
A.- Métodos de conservación a largo plazo - congelación - liofilización
B.- Métodos alternativos - Conservación por transferencia periódica - Conservación por suspensión en agua destilada estéril
Conservación de los microorganismos por congelación Las células se congelan en suspensión en un líquido con un agente crioprotector y, se almacenan a temperaturas inferiores a cero grados centígrados (de – 70 a 196º C).
Los factores que influyen en la viabilidad y estabilidad de las células: □ Edad de las células □ Velocidad en la congelación y descongelación □ Temperatura de almacenamiento □ Acondicionamiento de los microorganismos □ Empleo de crioprotectores
AGENTES CRIOPROTECTORES Estos solutos penetran dentro de las células y las protegen de los efectos de la deshidratación (el agua disponible esta congelada), a la vez que evitan la formación de cristales de hielo.
Características
Ejemplos
- No tóxico para la célula
-Glicerol (10-20%) -Leche descremada
-Penetrar fácilmente en la membrana celular
- Dimetilsulfóxido (DMSO) -Inositol
-Unirse a los electrolitos o a las moléculas de agua
-Glucosa -Lactosa -Sacarosa
Tubos crioprotectores por duplicado
CONSERVACIÓN DE LOS MICROORGANISMOS POR LIOFILIZACIÓN
- Es un método de conservación a largo plazo. -Se basa en la paralización del metabolismo celular por falta de agua: congelación y deshidratación (al vacío).
Congelar el agua libre de las células
Eliminación del agua por vacío
Agua congelada
Vapor de agua
SUBLIMACIÓN
1ra.fase de la desecación
2da. fase de la desecación
Apto para envío de cepas
Tema: Cultivo celular. Cultivo Cultivo de ricketsias,, clamidias y virus. ricketsias Inoculación en embrión de pollo. Animales de experimentación.
Objetivos Definir y caracterizar cada tipo de cultivo celular, obtención, requerimientos y aplicaciones. Caracterizar el uso de células de embrión de pollo para el cultivo de Clamidias, Clamidias, Rikettsias y virus. Establecer los conceptos básicos del uso de animales de experimentación en el laboratorio.
CULTIVO DE RICKETSIAS, CLAMIDIAS y VIRUS Debido a que estos microorganismos son parásitos intracelulares obligados, es necesario cultivarlos en células vivas.
Rickettsias - cocos o bacilos Gram – -Fiebre Moteada y del tifus (Artrópodos)
Rickettsias creciendo dentro de las células hospedadoras
Clamidias -Cocos Gram -Patógenos del aparato respiratorio y de transmisión sexual
PAP al microscopio mostrando Chlamydia en vacuolas.
CULTIVO PRIMARIO: cultivo celular establecido a partir de un tejido u órgano animal o humano. Se obtienen por separación quirúrgica aséptica y disgregación enzimática Las células se lavan, se cuentan en cámaras cuenta glóbulos (tipo Neubauer) y se siembran
Cultivos primarios
- Se siembran en tubos, botellas , placas o policubetas de vidrio o de plástico estériles -Se cubren con medio de cultivo nutritivo con antibióticos a 37°C en cámara de cultivo celular
Incubadoras para cultivo celular
Monocapa epitelial del embrión o de riñón de mono verde africano.
CULTIVOS PRIMARIOS Cultivos en monocapa
-Las células sedimentan, se adhieren y se multiplican formando islotes que van cubriendo toda la superficie: monocapa
Epitelial (poligonales)
-Cuando dos islotes se unen se inhibe su crecimiento: inhibición por contacto Los medios de cultivo se deben cambiar 2 o 3 veces por semana. Fibroblastico (irregular)
Infección con virus
Obtener nuevos cultivos: pasaje o subcultivo
CULTIVO PRIMARIO:
Crecimiento limitado: al cabo pocos pasajes (cultivos secundarios) las células mueren y se debe obtener un nuevo cultivo primario (costoso)
Fibroblastos de riñón de mono, células embrionarias de pollo o de riñon humano o células amnióticas.
Fibroblastos de riñón de mono
CULTIVO CELULAR PRIMARIO:
CEPA DE CÉLULAS DIPLIODES : Seleccionar células con morfología intacta, numero diploide de cromosoma y capacidad de crecimiento limitado
Pasajes: 50 a 100 Sin perder la sensibilidad Envejecen y mueren Vacunas Sin virus latentes
MRC-5: riñon de mono Rhesus Wi 38 (Winster Institute) de humano Aislamiento de citomegalovirus, varicela y rinovirus
CULTIVO CELULAR PRIMARIO: adaptar célula a crecer in vitro durante un numero ilimitado de pasajes
LINEAS CELULARES:
Características similares: tipo epitelial Numero de cromosomas es variable (aneuploídia) Se repican un numero ilimitado, por múltiples pasajes: líneas inmortales
Origen normal: Vero, fibroblastos de riñón de mono africano, LLC-MK 2 de riñón de mono, BHK de riñón de hamster o las RK de riñón de conejo Origen neoplásico: Hela, carcinoma de cervix , las HEP-2 de un carcinoma de laringe.
Aislamiento del virus sinsitial respiratorio, herpes, rubeola, poliovirus, adenovirus etc.
Una de las primeras líneas celulares humanas, obtenida de Henrietta Lacks, quien falleció de cancer de útero a partir del cual se obtuvieron estas células. El cultivo de célulasHeLa que se muestra en la imagen fue teñido con Hoeschtque se une al ADN coloreando de azul el núcleo.
LÍNEAS CELULARES continuas inmortales neoplasicas Inmortales
Características de las células transformadas • Independencia de sustrato • Pérdida de inhibición por contacto (multicapas) •Alta eficiencia de plaqueo: capacidad de formar clones • Bajo requerimiento de suero •Corta tasa de duplicación •Aneuploidía y heteroploidía • Tumorigenicidad
Pierden funciones
Patología
Transformación : cambio en el genotipo celular: -Virus transfomante -Sust cancerigena -Espontanea
ABAC - Asociación Banco Argentino de Células Línea Celular Descripción
Especie
Tipo celular
Origen
Monocapa de fibroblastos
ATCC
BHK-21
Riñón de hamster dorado Hamster
CHO-K1
Ovario de hamster chino
Hamster chino
Monocapa epitelial
ATCC
MRC-5
Pulmón fetal humano(diploide)
Hombre
Monocapa de fibroblastos
ATCC
Wish
Amnion humano
Hombre
Monocapa epitelial
Hep-2
Carcinoma humano(órgano)
Hombre
Monocapa epitelial
ATCC
Vero C-76
Riñón de mono verde africano
Mono
Monocapa de fibroblastos
ATCC
Vero E-6
Riñón de mono verde africano
Mono
Monocapa de fibroblastos
ATCC
L-929
Tejido conectivo de ratón Ratón
Monocapa de fibroblastos
MDBK
Riñón bovino
Vaca
Monocapa epitelial
RK13
Riñón de conejo
Conejo
Monocapa epitelial
CRFK
Riñón de gato
Gato
Monocapa de fibroblastos
ATCC
HeLa
Carcinoma de cervix humano
Hombre
Monocapa epitelial
ATCC
Raji
Linfoma de Burkitt humano
Hombre
Linfoblastos en suspensión
ATCC
IIBMel J
Melanoma humano
Hombre
T24
Carcinoma de vejiga humano
Hombre
Monocapa epitelial
ATCC
E. Derm
Dermis de caballo
Caballo
Monocapa de ATCC fibroblastos
ATCC
3T3 L1
Embrión de ratón
Ratón
Monocapa de fibroblastos
ATCC
ATCC
ATCC ATCC ATCC
ARGENTINA
Requerimientos del crecimiento celular - Medios de cultivo frescos y de composición adecuada. - Permitir el intercambio gaseoso -Cantidad de suero en el medio, pH, temperatura optima, cantidad de células sembradas, etc.
Requerimientos nutricionales
Requerimientos fisiológicos
-Aminoácidos -Carbohidratos -Vitaminas -Iones inorgánicos -Antibióticos -Suero -Indicador de pH
-Temperatura: 37°C - pH: 7,2-7,4. Buffer -Tensión de dióxido de carbono: > 5% Presión osmótica: 7.6 atmosferas. ClNa Humedad del incubador Ejm: MEM: medio esencial mínimo Dubelco’s MEM
MEDIOS DE CULTIVO CELULARES
Cuando es necesario de un cambio en el medio de cultivo?
-Caída del pH: < 6,5, pierden viabilidad -Alta concentración celular -Característica celular : las células transformadas deben ser subcultivadas con mayor frecuencia -Morfología celular: deterioro celular, granulación perinuclear, vacuolas citoplasmaticas etc .
Como se conservan las líneas celulares? - En glicerol y dimetil sulfóxido en ampollas cerradas herméticamente en estado de congelación . Pueden mantenerse en nitrógeno liquido durante años
DETECCIÓN DE LA REPLICACIÓN DE LOS VIRUS
1.- Por su acción citopática (ECP): o acción citopatogénica (ACP):
redondeamiento celular, con desprendimiento de la monocapa y liberación de las células alteradas al medio
EFECTO CITOPÁTICO
Herpes virus y polovirus
Tinciones histológicas o métodos inmuno histoquímicas Virus sincitial respiratorio : proteínas de fusión
DETECCIÓN DE LA REPLICACIÓN DE LOS VIRUS
2.- Por la aparición de componentes del virus en el medio de cultivo, en especial de hemaglutininas o de antígenos fijadores de complemento.
3.- Por inmunofluorescencia, detectando la presencia de virus o sus antígenos en las células mediante el empleo de un suero inmune marcado con sustancias fluorescentes.
Aplicaciones Productos biotecnológicos 1-Producción de virus
Tecnología del ADN recombinante en cultivo celular
Vacunas Antígenos virales para diagnostico Virus entomopatógenos para plagas 2- Produccion de moléculas bioactivas Terapéutica y en el diagnostico Anticuerpos monoclonales Fármacos naturales (Interferon alfa) Fármacos recombinantes Evaluaciones toxicológicas infecciosas y nutricionales
enzimas, hormonas, anticuerpos mononoclonales, interleucinas, linfoquinas y agen tes anticancerígenos. Eritropoyetina Activador tisular del plasminogeno
Otras aplicaciones : Generación de hibridomas linfocito aislados del bazo o médula ósea de un ratón inmunizado
Se fusionan células normales con una línea celular inmortalizada. anticuerpos monoclonales.
Los hibridomas productores del anticuerpo deseado se seleccionan a partir de grupos hasta llegar a colonias individuales. una línea celular de mieloma inmortalizada (células del linaje B)
solo las células fusionadas sobreviven
HUEVOS EMBRIONADOS -Fuente de tejido vivo fácil de manipular y económica, estéril, posee escasos virus latentes y no posee respuesta inmunitaria. -Mayor susceptibilidad para aislamiento y propagación de ciertos virus. Ejm: virus de la gripe -Detección y cuantificación de anticuerpos neutralizantes y producción de vacunas y antígenos de diagnostico.
HUEVOS EMBRIONADOS Selección y cuidados de los huevos antes de la inoculación: -
Edad: huevos viables jóvenes, recogidos inmediatamente después de su postura.
-
Almacenamiento a 10 °C (estado estacionario), por no mas de una semana antes de incubar (fertilidad).
-
Huevos blancos (transiluminación (transiluminación)) y de cáscara integra, provenientes de gallinas que carecen de enfermedades y de anticuerpos con dieta equilibrada y exenta de antibióticos.
HUEVOS EMBRIONADOS Condiciones de incubación
-
Incubadores de laboratorio o incubadores automáticos de criaderos de pollos.
-
Temperatura y tiempo de incubación: 37 37°°C, 60% de humedad, O2: 21% y CO2: 0.5%.
-
Extremo abultado hacia arriba.
Examen visual de HUEVOS EMBRIONADOS: Antes de la inoculación: determinación de su desarrollo normal Luego de la inoculación: comprobar su supervivencia
Trasluz Ovoscopio
Ovoscopio industrial
HUEVOS EMBRIONADOS: examen visual Huevos fértiles, mas de 4 días: Vasos sanguíneos (telaraña) Movimiento intermitente de punto negro (ojo) Embrión: sombra móvil (a parte superior) Vena umbilical
Embriones muertos
Vías de inoculación:
-Membrana corioalantoidea -Cavidad anmiotica -Cavidad alantoidea -Saco vitelino
Selectividad de virus por determinados tejidos
Intraperitonial o intracerebral
Como se realiza la inoculación : A través de un orificio en la cascara, previa antisepsia y se inyecta el inoculo con aguja y jeringa, luego se tapa el orificio y se incuba. Uso de colorantes Cantidad y dilución del inoculo: depende del tipo de virus Con medidas de bioseguridad adecuadas y personal entrenado: mascaras, guantes, ropa protectora, gabinetes de seguridad biológica II y III, acceso restringido y corrientes de aire controladas.
Cavidad alantoidea Cavidad anmiótica
Saco vitelino
Membrana corioalantoidea
-Herpes virus o poxvirus producen pústulas (cuantificación)
-Aislamientos de virus (viruela)
-Virus de la gripe
Vademecum 2013 Influvac Antígenos inactivados del virus de la Influenza (hemaglutininas y neuraminidasas propagadas huevos fertilizados de gallina de pollos sanos.
-Virus de la Influenza y el virus de la parotiditis Se necesita una gran cantidad de virus: vacunas o antígenos
Cultivo de clamidias y ricketsias Corpúsculos y cuerpos de inclusión
El desarrollo del virus se detecta por: - Muerte del embrión: desaparecen los vasos sanguíneos y embrión inmóvil (herpes y parotiditis) -Daño de las células del embrión o lesiones focalizadas (poxvirus y herpes virus)
-Formación de típicas pústulas (herpes virus) o lesiones en las membranas del huevo.
-No inducir lesiones aparentes, con producción de antígenos virales (hemaglutininas).
ANIMALES DE EXPERIMENTACION cualquier especie animal que se mantiene bajo condiciones determinadas y se utiliza con fines científicos, con el correcto cumplimiento de los principios éticos y de
bienestar animal.
Las pruebas biológicas se deben realizar según normas éticas del Comité Institucional para el Cuidado y Uso de los Animales de Laboratorio (CICUAL-UNSL) y legislación de SENASA, ANMAT, CDC/NIH, FDA, EPA, y OMS para evitar que padezcan dolores o sufrimientos innecesarios.
EL PRINCIPIO DE LAS 3 R REEMPLAZO : sustitución de animales vivos por métodos alternativos como modelos matemáticos, simulación en computadora, tests serológicos, cultivos celulares, etc. . REDUCCIÓN : usar el mínimo número de animales necesario para obtener resultados válidos. REFINAMIENTO: incluye todos los procedimientos para minimizar y eliminar el dolor, así como todos los métodos para asegurar el bienestar animal.
Animales de experimentación: Factores que influyen en la experimentación animal: -Instalaciones y condiciones ambientales -Nutrición -Comportamiento y bienestar animal: homeostasis y estrés. - Patología y control sanitario. -Diseño experimental -Estandarización genética de la especie: Cepas endocriadas: generaciones consecutivas de cruza hermano x hermana. Estos animales se caracterizan por: - idéntico perfil genético - estables por largos periodos de tiempo; -fenotípicamente uniformes. Ejm: en ratones: BALB/c , en ratas: Wistar
BIOTERIO Alojamiento cómodo, higiénico y de dimensiones suficientes, así como agua y comida de buena calidad y en cantidad suficiente.
Propósitos generales para la utilización de animales de experimentación:
-obtención de suero, plasma, tejidos -estudio de enfermedades infecciosas y de otros tipos: metabólicas, tumorales, etc. -desarrollo de vacunas - estudios bioquímicos, farmacológicos, inmunológicos, toxicológicos, nutricionales.
ANIMALES DE LABORATORIO Animales más frecuentemente empleados: - Rata blanca - Ratón -Hámster -Cobayo -Conejo -Cabras -Aves -Artrópodos Con fines seroterápicos: - caballo - oveja - bovino
Principales vías de inoculación Vía enteral: vía oral/intragastrica Vía parenteral: -Intramuscular (IM) -Endovenosa (EV) -Subcutánea (SC) -Intraperitoneal (IP) -Intradérmica (ID) Otras vías: -Vía tópica -Vía inhalatoria --Via retroorbital
IV
VO
IP
SC
IM
Se han logrado animales sanitariamente definidos: -animales libres de gérmenes (axénicos) -con flora bacteriana o vírica conocida (gnotobióticos) -libres de gérmenes patógenos específicos
controlar y estandarizar las experiencias
Animales transgénicos 1-aislamiento del gen de interés (transgén): clonado y manipulado para que pueda ser expresado por el organismo blanco. 2-Dicho gen se inyecta en un embrión en estadio de cigoto. 3-Se implanta el embrión en un animal receptivo, que actúa como madre (fertilización in vitro). Conducen a la expresión de un nuevo gen o a la sobre-expresión de un gen ya existente.
Vacas Pampa: que producen en su leche hormona de crecimiento humano
Ratones knockout Son ratones en los que se inactiva un gen determinado en el genoma (deleción) analizando el fenotipo que resulta de la pérdida de su función. “gene targeting”:los genes modificados se introducen en las células madre embrionarias del ratón.
Ratones knockin: Un gen es reemplazado por una versión modificada del mismo, que produce una variación en su función.
Algunas publicaciones actuales donde se utilizan animales de experimentación para estudios microbiológicos: -Cerdos desafiados con Mycoplasma en vías aéreas (Wodley y col. 2013) -Hámsters inoculados por vía intrahepática con Entamoeba dispar (Guzmán-Silva y col. 2013) -Ratones para caracterización de variantes de priones (Takeuchi y col. 2013) -Conejos tratados con distintos antimicrobianos por meningitis causada experimentalmente por Staphylococcus aureus meticilino resistente (Tas y col. 2013).
NIVELES DE BIOSEGURIDAD PARA TRABAJAR CON ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN
1
Acceso restringido, ropa y guantes protectores
2
Procedimientos del NBSA-1, más señales de advertencia del riesgo. CSB de clase I o II para las actividades que producen aerosoles. Descontaminación de desechos y jaulas antes del lavado.
3
Procedimientos del NBSA-2, más acceso controlado. CSB y ropa protectora especial para todas las actividades.
4
Procedimientos del NBSA-3, más acceso estrictamente restringido. Muda de ropa antes de entrar. CSB de clase III o trajes de presión positiva. Ducha a la salida. Descontaminación de todos los desechos antes de su salida de las instalaciones.