UNIVERSIDAD DE CUENCA FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS ESCUELA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

RESUMEN: “PREVALENCIA E IDENTIFICACION DE PROTOZOOS (Giardia canis, Ameba spp. y Coccidia spp.) EN CANINOS DE LA CIUDAD DE CUENCA” La presente investigación está dirigida al campo de la parasitología de pequeñas especies, cuyo título es: Prevalencia e identificación de protozoos (Giardia canis, Ameba spp. y Coccidia spp.) en caninos de la ciudad de Cuenca; estos microorganismos carecen de pared celular y su citoplasma contiene un núcleo bien definido. Poseen órganos de motilidad como: seudópodos, flagelos y cilios. Las formas vegetativas (trofozoítos) se transforman en quistes para sobrevivir en condiciones adversas del medioambiente. Se caracterizan por causar infección del tracto gastrointestinal especialmente del intestino grueso destruyendo el epitelio, ocasionalmente penetran la mucosa y se diseminan a otros órganos. La infección parasitaria se contrae por ingestión de los quistes maduros los mismos que salen al medio de la materia fecal de animales parasitados, la signología en el animal es gastroenterica llegando incluso a ocasionar la muerte. Para el diagnóstico, se ha utilizado la técnica de flotación con Sulfato de Zinc, la misma que permite identificar quistes y ooquistes de protozoos de esta manera emitir un buen diagnóstico y dar un tratamiento efectivo de acuerdo al animal y al grado de infestación. En esta investigación se obtuvieron los siguientes resultados En caninos machos y hembras en tres rangos de edad de las 4 áreas del cantón Cuenca de acuerdo a los grados de infestación tenemos para Giardia canis: Baja con 3,45%, Media con 1,25%, Alta con 0,37%. Ameba spp.: Baja con 1 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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11,58%, Media con 3,10%, Alta con 1,03%. y Coccidia spp.: Baja con 8,91%, Media con 3,25%, Alta con 1,31%. Palabras Claves: Prevalencia, técnica, flotación, centrifugación, protozoos, Giardia, Ameba, Coccidia, sulfato, Zinc. INDICE Contenido

Página

Introducción…………………………………..............….... 7 Objetivos……………………………………..………….….. 8 I REVISION DE LITERATURA………..………………... 9 1.1. PROTOZOOS………………………...……….....…. 9 1.1.1. CLASE RHIZOPODARIA: AMEBA………. 11 1.1.1.1. Historia……………….……….…………... 11 1.1.1.2. Taxonomía……………..…..…………...… 13 1.1.1.3. Morfología…………..……..……………… 13 1.1.1.4. Amebiasis………………………….….….. 15 1.1.1.4.1. Definición…………..………..….….. 15 1.1.1.4.2. Etiología……………..………..……. 16 1.1.1.4.3. Ciclo parasitario………………..…... 16 1.1.1.4.4. Epidemiología………………..…….. 20 1.1.1.4.5. Patogenia……………………..…….. 21 1.1.1.4.6. Cuadro clínico………………….…… 23 1.1.1.4.7. Diagnóstico….………………..…..… 25 1.1.1.4.8. Diagnóstico diferencial………..…… 26 2 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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1.1.1.4.9. Pronóstico……………….….….…… 27 1.1.1.4.10. Tratamiento……………….………27 1.1.1.4.11. Prevención…………………..…… 28 1.1.2. CLASE FLAGELADA: GIARDIA………...… 28 1.1.2.1. Historia.………..….……………...……… 29 1.1.2.2. Taxonomía..…………..…..………..….... 29 1.1.2.3. Morfología……………….….………..….. 30 1.1.2.4. Giardiasis…..…………….…………..….. 31 1.1.2.4.1. Definición…………….……….….…. 31 1.1.2.4.2. Etiología……………………..….……32 1.1.2.4.3. Ciclo parasitario………………..……32 1.1.2.4.4. Epidemiología…………............…… 34 1.1.2.4.5. Patogenia……….……………….….. 35 1.1.2.4.6. Cuadro clínico…...…………….…… 36 1.1.2.4.7. Diagnóstico…………….…..…….… 37 1.1.2.4.8. Diagnóstico diferencial……….…… 39 1.1.2.4.9. Tratamiento………………….……… 39 1.1.2.4.10. Prevención….......……….…… 40 1.1.3. CLASE ESPOROZOARIA: ISOSPORA…. 41 1.1.3.1. Taxonomía…………….…………...… 41 1.1.3.2. Morfología……..…………………...… 41 1.1.3.3. Coccidiosis………...…………….…… 42 1.1.3.3.1. Definición……………………….…… 42 1.1.3.3.2. Etiología………………..…………… 43 1.1.3.3.3. Ciclo parasitario………………...….. 43 1.1.3.3.4. Epidemiología……..…………....….. 45 1.1.3.3.5. Patogenia……………...........……… 46 1.1.3.3.6. Cuadro clínico………………….…… 47 1.1.3.3.7. Diagnóstico…….……..……….....… 48 1.1.3.3.8. Diagnóstico diferencial………..…... 49 3 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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1.1.3.3.9. Pronóstico…………………….…….. 49 1.1.3.3.10. Tratamiento……….……….….… 50 1.1.3.3.11. Prevención……………….……… 51 1.2. METODO DE FLOTACION CON SULFATO DE ZINC..51 1.2.1. Concentración por flotación...………….…………………….……… 52 1.2.2. Control de calidad del método…………… 52 1.2.3. Ventajas y desventajas…..………….……. 53 1.2.4. Materiales para preparar la solución de Sulfato de zinc……………………………..…… 53 1.2.5. Preparación de la solución de Sulfato de zinc…………………………….……………...…. 53 1.2.5.1. Ajuste de densidad………………….…… 54 1.2.6. Ejecución del método………………….….. 55 1.2.6.1. Pasos del método………...……………… 55 1.2.6.1.1. Filtrado y lavado de heces………… 55 1.2.6.1.2. Flotación en sulfato de zinc………. 56 1.2.6.1.3. Recuperación del flotante……….… 56 1.2.6.1.4. Observación al microscopio………. 56 1.2.7. Desinfección………………………..……….57 1.2.8. Puntos importantes……………….……….. 57 1.2.9. Interpretación………………………..…….. 57 II MATERIALES Y METODOS…………………….…… 58 2.1. MATERIALES…………………………………..….. 58 2.1.1. Materiales de campo………………..……. 58 2.1.2. Materiales de laboratorio…………….…… 59 2.1.3. Materiales de escritorio……………..….… 60 2.2. MÉTODOS………………………..…………..……. 61 2.2.1. Manejo del experimento……………….… 61 4 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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2.2.1.1. Métodos de campo………………….…… 61 2.2.2. Area de estudio………………...........…… 62 III RESULTADOS Y DISCUSION………………….…… 63 3.1. Análisis Estadístico……………………………….. 64 3.2. Métodos de evaluación y datos a tomarse……. 64 3.3. Análisis de las muestras………………….……… 64 3.4. Factores a estudiar……………….……….……… 65 3.5. Procedimientos estadísticos………………...…… 65 3.6. Cuadros y gráficos estadísticos……………..…… 67 IV CONCLUSIONES………….…………………...……. 115 V RECOMENDACIONES………….…….…………..…. 116 VIII BIBLIOGRAFIA………………….…………..…….… 118 IX ANEXOS…………..……………..……………..…..… 123

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“PREVALENCIA E IDENTIFICACION DE PROTOZOOS (Giardia canis, Ameba spp. y Coccidia spp.) EN CANINOS DE LA CIUDAD DE CUENCA”

Tesis de Grado, previa a la obtención del Título de Médico Veterinario Zootecnista

AUTORES:

Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

DIRECTOR:

Dr. MVZ. Fredi Carpio Alemán.

CUENCA – ECUADOR 2011 6 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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INTRODUCCION La Parasitología en Medicina Veterinaria de Pequeñas Especies ha evolucionado con el pasar de los años gracias al avance de la ciencia y la tecnología, en la actualidad es una rama fundamental del diagnóstico clínico veterinario, ya que los parásitos son los causantes de numerosas enfermedades en las mascotas, éstos se dividen en muchos géneros y especies. Es de trascendental importancia realizar esta investigación no solamente por su incidencia en los animales de compañía sino también por el impacto de estas enfermedades en la salud pública, las que pueden ser zoonósicas, es decir que se transmiten de los animales al hombre y viceversa, la clave para poder luchar contra estos parásitos intestinales de los animales menores es su identificación y reconocimiento, saber su comportamiento y cómo actúan sobre los mismos y finalmente su eliminación. Esta investigación está dirigida al tipo protozoos como son: Giardia canis, Ameba spp. y Coccidia spp., parásitos que colonizan y se reproducen en la mucosa del tracto gastrointestinal, llegando a causar cuadros clínicos severos e 7 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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incluso la muerte de los caninos. Por otra parte la Medicina Veterinaria también se ha visto afectada, por el lado de las patologías asociado al convivir con animales de compañía (caninos) que han permitido el intercambio de formas parasitarias que pueden afectar significativamente la salud de los animales y del ser humano. La presente

investigación está encaminada a estudiar la

prevalencia e identificación de protozoos por medio del método de flotación a través de la centrifugación de una suspensión de heces, con solución de sulfato de zinc al 33% con una densidad 1.180 y añadiendo una gota de lugol al 5%, la misma que permite colorear e identificar de mejor manera quistes y ooquistes de protozoos bajo microscopio.

Para la realización de esta investigación nos planteamos los siguientes Objetivos:

OBJETIVO GENERAL: 1. Determinar la prevalencia de protozoos (Giardia canis, Ameba spp. y Coccidia spp.), mediante la técnica de sulfato de zinc, en perros de la ciudad de Cuenca. 8 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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OBJETIVOS ESPECIFICOS:

1. Identificar los protozoos (Giardia canis, Ameba spp. y Coccidia spp.), mediante el método de centrifugación utilizando la técnica de sulfato de zinc en perros de la ciudad de Cuenca.

2. Cuantificar porcentualmente la presencia de Giardia canis, Ameba spp. y Coccidia spp., en caninos de la ciudad de Cuenca según la raza, edad y sexo.

3. Determinar cuáles son las áreas de la ciudad de Cuenca, donde existe mayor presencia de Giardia canis, Ameba spp. y Coccidia spp.

I REVISION DE LITERATURA

1.1. PROTOZOOS

Etimológicamente el estudio de los protozoos procede de tres palabras: Protos.- Primero, primitivo. Zoon.- Animal 9 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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Logos.- Estudio, tratado.

Los protozoos son microorganismos unicelulares eucariotas en los que todas las funciones vitales ocurren en el interior de una sola célula. Carecen de pared celular y su citoplasma contiene un núcleo bien definido y otros orgánulos.

Los

protozoos son capaces de producir enfermedades en el huésped humano y en animales10.

Algunos protozoos son móviles. Los órganos de motilidad varían

desde

simples

estructuras

como

pseudópodos

(proyecciones del citoplasma) hasta estructuras complejas como flagelos y cilios. Característico de algunos protozoos es que las formas vegetativas (trofozoítos) se transforman en formas de alta resistencia llamadas quistes cuando les falta alimento o se producen cambios hostiles en el hábitat. El ciclo vital de los protozoos presenta diferentes estadios, aunque no en todos ellos ocurren todos, unos presentan fases asexuadas y otros también sexuadas10.

El perro es hospedador de muchos géneros de protozoos entre los que se encuentran: Flagelados intestinales: (Giardia,

Trichomonas),

hemoflagelados

(Tripanosomas, 10

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Leishmania),

Rhizopodarios:

(Balantidium),

Esporozoarios:

Cryptosporidium,

Sarcocystis,

(Entamoeba),

ciliados

(Isospora,

Hammondia,

Neospora,

Toxoplasma,

Caryospora piroplasmas (Babesia), un hemogregarínido (Hepatozoon) y un microsporidio (Encephalitozoon)14.

1.1.1. CLASE RHIZOPODARIA: AMEBA

1.1.1.1.

Historia

Las enfermedades asociadas a infección por amebas parasitarias se conocen desde la antigüedad, en especial el cuadro colónico y la enfermedad diseminada cuyo agente causal, Entamoeba histolytica, fue descubierto en 1875 por Fedor Alexandrovich Lesh médico ruso21.

Lesh estudió el caso de un joven campesino que presentaba diarrea, malestar general y molestias rectales. Bajo el microscopio

observó

las

heces

del

enfermo

y

notó

formaciones en movimientos con pseudópodos. Eran células amibianas, a las cuales denominó “amibas del colon”, o sea Amoeba coli. Lesh asoció la presencia de las amebas con la enfermedad del joven y aplicó tratamiento. Por primera vez se 11 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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hacían ambas cosas en la Historia de la Medicina. No obstante el paciente murió. Lesh encontró en la autopsia ulceraciones en el colon. Luego introdujo material fecal del enfermo a unos perros y en uno de ellos apareció el cuadro disentérico. Pero Lesh dudó y no dijo que las amibas eran agente causal de la enfermedad. Simplemente pensó que empeoraban el cuadro clínico19.

En 1890 Willian Osler describió un absceso hepático. Encontró muchas amibas, pero no sacó conclusiones para inculparlas. Councilman y Lafleur, en 1891, acuñaron los términos disentería amibiana y absceso hepático. Además hablaron de la existencia de diferentes tipos de amibas en el intestino humano: unas patógenas y otras no. Dos médicos alemanes, Quincke y Ross, en 1938, establecieron las diferencias entre Entamoeba coli y Entamoeba histolytica. Describieron también el quiste como forma resistente de las amibas. En 1913, Walter y Sellar hicieron un experimento con prisioneros filipinos, quienes ingirieron material con varias especies de amibas. Los que ingirieron Entamoeba coli (30 % de las personas la tuvieron pero no enfermaron), al contrario del grupo que consumió la Entamoeba histolytica (25 % de

12 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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las personas que la tuvieron se enfermaron, el otro 75 % eran portadores sanos)19.

1.1.1.2 Taxonomía •

Phylum:

Sarcomastigophora

•

Sub-phylum:

Sarcodina

•

Clase:

Rhizopodaria

•

Orden:

Amoebida

•

Sub-orden:

Tubulina

•

Familia:

Entamoebidae

•

Géneros:

Entamoeba

•

Especies:

histolytica dispar coli hartmanii gingivalis polecki nana11.

1.1.1.3 Morfología

Las Amebas emiten pseudópodos a base de material 13 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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protoplásmico locomotor; tiene dos formas o fases de desarrollo bien establecidas, el trofozoíto y el quiste. El trofozoíto o forma vegetativa es irregular o ameboide. Los trofozoítos

al

microscopio

son

células

alargadas

con

lobopodios laterales y con frecuencia uvoide posterior. Presentan membrana citoplasmática, citoplasma dividido en dos porciones, una externa hialina y transparente, casi sin granulaciones, llamada ectoplasma y una porción interna muy granulosa que contiene los organelos celulares, denominada endoplasma. El núcleo es esférico con un acúmulo de cromatina pequeño y puntiforme en el centro, llamado endosoma o centrosoma. También presenta cromatina adherida a la cara interna de la membrana nuclear, distribuida en forma homogénea24.

FIGURA N° 1. Trofozoíto y quiste de Ameba spp10.

14 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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Si las condiciones ambientales no son propicias, el trofozoíto empieza a cambiar de forma, deja de emitir pseudópodos, el ectoplasma y el endoplasma ya no se diferencia, de manera que casi desaparece el primero, se pierde la forma irregular y se hace esférico, al tiempo que aparece una pared gruesa, llamada pared quística, también a expulsado al exterior todo el contenido de las vacuolas y empieza a formar material de reserva

como

vacuolas

de

glucógeno

y

barras

cromatoidales24.

1.1.1.4 AMEBIASIS

1.1.1.4.1

Definición

La amebiasis es una infección del intestino grueso producida por Ameba patógena spp., que ocasionalmente penetrará la mucosa y se diseminará a otros órganos 12.

Las infecciones causadas por amebas constituyen una de las infecciones

oportunistas

emergentes

de mayor

interés

médico. Aunque es poco frecuente, se han descrito en casi todo el mundo, su diagnóstico depende de un alto índice de

15 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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sospecha, sobre todo morfo-patológico y estudios de laboratorio21.

Es una enfermedad parasitaria que afecta fundamentalmente al hombre y que puede producir cuadros digestivos de mucho interés en el perro. Sus manifestaciones pueden variar desde portadores asintomáticos a enfermedad de grado variable1.

1.1.1.4.2

Etiología

Varias especies de amebas pueden habitar el tracto intestinal de los animales, pero de ellas sólo Entamoeba histolytica parece ser patógena. En la actualidad, se considera que la cepa caracterizada por tamaño pequeño y carente de virulencia es Entamoeba hartmanii y que la cepa de mayor tamaño corresponde a Entamoeba histolytica, que sería la ameba patógena para el hombre y los animales 1. 1.1.1.4.3

Ciclo parasitario

Entamoeba histolytica existe en dos formas:  El trofozoíto, forma móvil o forma tisular invasiva y 16 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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 El quiste, forma inmóvil o forma tubular o infectante para el hombre y los animales.

La forma vegetativa tisular denominada trofozoíto, habita en el lumen, pared o en ambos lugares del colon1. Los trofozoítos pueden habitar el lumen del colon como comensales

o

invadir

la

pared

colónica.

En

raras

oportunidades se diseminan hacia otros órganos como el hígado, pulmones, cerebro, la piel perianal y los genitales7.

Las bacterias y las células intestinales descamadas, además de los hidratos de carbono procedentes de los alimentos, le proporcionan los nutrientes necesarios para su metabolismo y confieren al medio intestinal cierto grado de anaerobiosis y un pH moderadamente bajo (6-6.5) condiciones óptimas para su subsistencia12. La infección parasitaria se contrae por ingestión de los quistes. Los trofozoítos se desenquistan en el intestino delgado pero se asientan en el intestino grueso donde colonizan la mucosa y se multiplican por fision binaria14. Cada uno de ellos mide de 15 – 60um de diámetro y está dotado de notable movilidad mediante pseudópodos. En su 17 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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centro se encuentra el núcleo de 4 -8um de diámetro, provisto de un nucléolo esferoide12. Una vez formados los quistes, éstos son eliminados al exterior con las heces para completar el ciclo14. A medida que avanza por el colon, algunos de los trofozoítos se redondean, pierden sus inclusiones y en su interior contienen una gran vacuola de glucógeno para nutrirlos, constituyendo los denominados prequistes12.

Cuando hay diarrea, los trofozoítos salen en el contenido fecal y presentan muchas veces eritrocitos fagocitados; cuando no hay diarrea, los trofozoítos suelen enquistarse antes de abandonar el intestino, rodeándose de una pared muy

resistente

a

los

cambios

ambientales,

a

las

concentraciones de cloro en agua potable y a la acidez gástrica. Los quistes maduros al ser ingeridos por un nuevo hospedero repiten el ciclo12.

18 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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FIGURA No 2. Ciclo parasitario de Ameba spp. 17.

El quiste es la forma infectante y predomina en las deposiciones de portadores asintomáticos o de formas leves de la enfermedad. Estos quistes sobreviven fuera del hospedero por días o semanas, en especial en condiciones de baja

temperatura y humedad, constituyen el estado

infectante en el ciclo de vida del parásito y así la infección se transmite de un hospedero a otro, con la ingestión de alimentos o agua contaminada con deposiciones 12.

Una vez ingeridos estos quistes, sus núcleos sufren una división adicional debido a la acción de las secreciones intestinales que digieren la pared del quiste, quedando en 19 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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libertad ocho formas amebianas o trofozoítos dispuestos a continuar el ciclo12.

1.1.1.4.4

Epidemiología

Aunque Entamoeba histolytica puede infectar el tubo digestivo de varios animales, el principal huésped y reservorio es el ser humano; la distribución de Entamoeba histolytica es mundial. Los trofozoítos no son capaces de enquistarse fuera del intestino y mueren en cuanto lo abandonan. Los transmisores son individuos infectados que eliminan quistes con las heces y se constituyen, así, en el principal problema epidemiológico. Los quistes eliminados se mantienen en el ambiente en cualquier situación climática. La transmisión se produce en forma fecal oral, ya sea por vía directa de animal a animal o indirecta a través de alimentos o aguas contaminadas12.

El quiste maduro es la forma infectante por cuanto es capaz de resistir a la cloración del agua y las condiciones ambientales, ya que los trofozoítos apenas sobreviven fuera del hospedador1.

20 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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1.1.1.4.5

Los

Patogenia

trofozoítos

de

Entamoeba

histolytica

dañan

el

intestino al adherirse y provocar lisis en las células huésped y secretar enzimas que rompen las conexiones intercelulares. La presencia de ciertas bacterias y una ingesta proteica deficiente por parte del huésped contribuyen a la virulencia del parásito. La propia respuesta inmunológica celular del huésped frente a las amebas que invaden el tejido puede exacerbar el daño. La diarrea secretora puede ser inducida por la serotonina y otros factores secretados por los trofozoítos7.

Una vez ingeridos, los quistes superan la barrera ácida del estómago. La pared quística se disuelve en el intestino delgado y los trofozoítos quedan en libertad, formándose microúlceras que luego crecen hasta constituir úlceras amebianas, que representan la lesión anatomopatológica fundamental de la amebiasis intestinal12.

Las úlceras alcanzan el colon, predominantemente en el ciego, el sigmoide y el recto. Estas úlceras presentan dos patrones claramente definidos: nodular e irregular. Las 21 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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ulceras nodulares son redondeadas, de un diámetro entre 1 y 5 mm, con áreas de mucosa ligeramente elevadas y áreas necróticas, deprimidas o hemorrágicas, rodeadas por un borde de tejido edematoso. A menudo estas áreas están llenas de

un material mucoso y amarillento denominadas

“úlceras en botón de camisa”, en las cuales pueden verse trofozoítos. En ocasiones, estas lesiones pueden llegar a cubrir la mayor parte de la mucosa del colon, causando edema y eritema en las áreas mucosas que no se encuentran comprometidas. Las úlceras irregulares tienen 1 a 5 cm de longitud y se encuentran habitualmente en el ciego y colon ascendente.

Sus

márgenes

suelen

ser

elevados

y

edematosos y la úlcera se llena de fibrina15.

A través de la vena porta, las amebas alcanzan el hígado, donde suelen destruirse y solo ocasionan una hepatitis reactiva de escaso significado clínico. Sin embargo, a veces originan la formación de un absceso hepático, que es la manifestación más frecuente e importante de la amebiasis extraintestinal y se asienta más a menudo en el lóbulo derecho del hígado debido a la distribución anatómica de la sangre portal 12.

22 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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1.1.1.4.6

Cuadro clínico

La mayoría de los pacientes infectados lo están por formas no patógenas o son simples portadores asintomáticos. Los síntomas se distinguen por manifestaciones intestinales que aparecen tras un periodo de incubación que oscila entre 7 y 15 días y se puede presentar en dos formas:

1.- Amebiasis intestinal crónica 2.- Amebiasis intestinal aguda

1.- Amebiasis intestinal crónica

Los síntomas comienzan paulatinamente con molestias vagas,

como

anorexia

y

astenia

moderadas,

dolores

abdominales difusos y tendencia a las deposiciones pastosas o semilíquidas. Poco a poco, en el curso de 1-2 semanas, las manifestaciones se vuelven más concretas y el número de deposiciones diarreicas pardo-amarillentas aumenta hasta 48 diarias en los casos leves; puede advertirse sangre o moco al defecar y no hay fiebre. Estos síntomas suelen cursar en brotes de unas semanas de duración, que recurren varias

23 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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veces al año y alternan con períodos de normalidad casi total o incluso de estreñimiento12.

En los casos más graves, en los que las úlceras tienden a difundir a lo largo de todo el colon, a menudo con afección preferentemente

rectosigmoidea,

los

dolores

son

más

intensos y difusos, el número de deposiciones se incrementa notablemente, encontrándose mezclado con sangre. En estos pacientes la afección rectal es casi constante, con tenesmo y pujos y las heces se acompañan de eliminación de moco abundante, a menudo mezclado con sangre. El examen microscópico de las heces en fresco demuestra abundantes trofozoítos y escasos leucocitos12.

2.- Amebiasis intestinal aguda

Denominada también forma fulminante, es poco frecuente y se caracteriza por un comienzo brusco, con fiebre, cólico, diarrea líquida profusa hemática con tenesmo12.

La presencia de lesiones ulceronecróticas en este segmento colónico se manifiesta por un cuadro de comienzo agudo con diarrea disentérica, deposiciones sanguinolentas y con 24 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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mucosidades, de alta frecuencia, alrededor de 7 a 10 evacuaciones al día, acompañada de dolor en hemiabdomen inferior o en la fosa iliaca izquierda1.

A

diferencia

de

la

forma

crónica,

las

pérdidas

hidroelectrolíticas son muy importantes y el paciente puede deshidratarse. El abdomen resulta tan doloroso a la palpación que sugiere una peritonitis. La hepatomegalia sensible es muy frecuente, puede haber además náuseas, vómitos y distención abdominal progresiva capaz de evolucionar hacia megacolon tóxico12.

1.1.1.4.7

Diagnóstico

Se basa en la observación del trofozoíto o de los quistes en las

heces.

En

heces

íntegras,

se

suelen

encontrar

únicamente quistes, pero en las heces diarreicas también se pueden ver trofozoítos. Se aprecian organismos muy móviles en heces en muestras diarreicas, recientes y mantenidas en condiciones templadas; pero, en otras ocasiones, los quistes se observan más fácilmente si se añade una gota de solución de yodo (solución saturada de yodo en yoduro potásico 1%).

25 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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Se pueden concentrar los quistes mediante flotación en solución de sulfato de zinc25.

El examen

directo es

necesario

para

la

detección

de trofozoítos en la fase de diarrea. La inspección debe hacerse de zonas de la muestra con moco y/o sangre. Se puede utilizar sonda rectal para obtención de muestras. Las pruebas

inmunológicas

(ELISA,

inmunofluorescencia

indirecta) se emplean en la enfermedad intestinal invasiva, extraintestinal y en estudios epidemiológicos. Las técnicas imagenológicas

(rayos

X,

computarizada,

proctoscopía)

ultrasonido, permiten

tomografía evaluar

las

dimensiones de los abscesos y su evolución3.

En los animales con afección clínica, un método más confiable para la detección de trofozoítos es el examen microscópico de una parte de mucosa colónica para biopsia7.

1.1.1.4.8

Diagnóstico Diferencial

La amebiasis intestinal crónica leve, con sus alteraciones de diarrea y estreñimiento en ocasiones, presencia de moco; se presenta al diagnóstico diferencial con el colon irritable. La 26 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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forma crónica más grave debe diferenciarse de la colitis ulcerosa. La colitis amebiana aguda debe diferenciarse de la shigellosis y de la salmonelosis, en las cuales las heces contienen abundantes leucocitos y la mucosa entre las úlceras está más afectada. La balantidiasis (Balantidium coli) produce un cuadro agudo muy similar con formación de microabscesos en las zonas ulceradas. El ameboma puede confundirse con un adenocarcinoma cecal o con procesos granulomatosos infecciosos de la misma localización12.

1.1.1.4.9

Pronóstico

El pronóstico de la forma intestinal crónica es benigno excepto que surjan complicaciones, la mortalidad es baja. La forma aguda es mucho más grave por la posibilidad de perforación colónica o de hemorragia masiva12.

1.1.1.4.10

Tratamiento

El objetivo de la terapia antiamibiana es erradicar los parásitos en su localización intestinal y extraintestinal. Los fármacos disponibles pueden actuar en diferentes sitios, en el lumen, en la pared intestinal o en forma sistémica. El 27 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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metronidazol es considerado por muchos como la droga de elección, tanto para la amibiasis invasora o como para la amibiasis luminal, sin embargo, es menos efectiva contra los parásitos del lumen intestinal1.

La dosis de metronidazol: 10mg/kg (TID) PO por 5 días. Existen otros fármacos de elección como: clortetraciclina, oxitetraciclina y tetraciclina, en dosis de 20 – 22 mg/kg (TID) PO. Por 5 días26.

La cirugía debe reservarse para casos de ruptura intestinal o hepática, siempre asociada con terapia antiamibiana1.

1.1.1.4.11

Prevención

El control de la parasitosis transmitidas directamente por vía fecal-oral es el saneamiento y la higiene. Sin embargo, los hábitos normales de los perros tienden a eludir todos los esfuerzos realizados en esta dirección y de hecho es una suerte que la amebiasis canina sea una enfermedad muy poco frecuente14.

1.1.2 CLASE FLAGELADA: GIARDIA 28 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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1.1.2.1 Historia

La Giardia lamblia fue nombrado en honor a Vilem Lambl (1824 – 1895), quien descubrió el organismo con más detalle después de que fue visto por primera vez por Leeuwenhoek en 1681. Sin embargo, la Giardia intestinalis es considerado por muchos como el nombre correcto de este protozoo. Las diferentes especies de Giardia son estructuralmente muy similares, por ejemplo, Giardia bovis, Giardia canis, Giardia cati. Por otro lado, Erlandsen (1990) ha sugerido una clasificación

basada

en

criterios

morfológicos

de

las

estructuras microtubulares presentes en los cuerpos medios de los trofozoítos se incluye tres grupos de especies:  Giardia agilis que se encuentra en anfibios  Giardia muris en roedores  Giardia duodenalis en humanos y muchos mamíferos24.

1.1.2.2 Taxonomía  Phylum:  Subphylum:

Sarcomastigophora Mastigophora

 Clase:

Flagelada

 Familia:

Hexamitidae 29

Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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 Género:

Giardia

 Especies:

agilis muris Intestinalis

(duodenalis,

canis,

cati,

lamblia)8.

1.1.2.3 Morfología

La Giardia es un protozoo flagelado de aspecto piriforme, con dos núcleos, ocho flagelos y un disco suctor en la parte ventral. Por medio de esta formación se adhieren a las microvellosidades del intestino delgado, así como del intestino grueso9.

La forma móvil que se aloja en la luz intestinal es el trofozoíto, tiene alrededor de 15um de largo y 8um de ancho. Esta forma se identifica con facilidad al microscopio óptico debido a su apariencia de “cara sonriente”, formada por los dos núcleos en el tercio anterior (los ojos), los axonemas que pasan en forma longitudinal por entre los núcleos (la nariz) y los cuerpos medios (la boca) ubicados en forma transversal al tercio posterior, cuatro pares de flagelos completan la apariencia un tanto cómica de esta forma7. 30 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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FIGURA No 3. Trofozoíto y quiste de Giardia canis10.

El segundo estadio es el quiste, responsable de la transmisión y de la supervivencia ambiental; tiene 12um de largo y 7um de ancho, dado que el quiste contiene dos trofozoítos formados pero con separación incompleta, se pueden observar dentro de éste los axonemas, fragmentos de discos ventrales y hasta cuatro núcleos7.

1.1.2.4

GIARDIASIS

1.1.2.4.1 Definición

Es un proceso parasitario causado por Giardia spp., que afecta principalmente a los animales jóvenes en el duodeno, yeyuno y ocasionalmente intestino grueso; caracterizado por un síndrome de malabsorción y diarrea. También se puede 31 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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considerar un síndrome gastrointestinal producido por un protozoo parásito que infecta a muchos vertebrados, incluidos gatos, perros y seres humanos9.

1.1.2.4.2 Etiología

El género Giardia contiene múltiples especies de protozoos flagelados morfológicamente distinguibles22.

Hay dos formas: trofozoítos móviles y quistes infectantes no móviles. Tienen distribución mundial, con prevalencia de por lo menos 5 % en la mayoría de las poblaciones. La tasa de ocurrencia es alta en animales jóvenes y en los que están confinados en grupos4.

El agente causal de la Giardiasis en perros es un protozoario del intestino delgado de los mamíferos, llamado Giardia canis. La Giardiasis es una enfermedad de los mamíferos, afecta a perros, gatos, animales silvestres y al hombre. Por lo tanto es una enfermedad zoonósica. (Transmitida de los animales al hombre)2.

1.1.2.4.3 Ciclo parasitario 32 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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Son parásitos de ciclo directo. La forma parásita, el trofozoíto, de 12-15 x 7-10 μm, se encuentra adherido a la mucosa intestinal, donde se divide por fisión binaria. A medida que se desprende y es arrastrado a lugares más distales del tubo digestivo, se va formando el quiste, de forma ovalada de 9-13 x 7-9 μm, con cuatro núcleos en su interior9.

FIGURA No 4. Ciclo parasitario de Giardia canis13. Expulsado al medio externo con las materias fecales, es la forma de resistencia, diseminación y transmisión. Al ser ingerido por un nuevo hospedador, en el estómago se inicia la enquistación, que se completa en el intestino por la acción de los componentes biliares, el ácido carbónico y las proteasas pancreáticas. De esta forma son liberados los trofozoítos,

33 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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fijándose a la mucosa y comenzando de nuevo su replicación. El ciclo completo dura de 4 – 5 días9.

1.1.2.4.4 Epidemiología

La Giardia parasita el intestino delgado de los mamíferos, como trofozoítos móviles residentes en el lumen, no requieren intermediarios para completar su ciclo vital. La principal fuente de transmisión es la oro-fecal, por contacto directo con materia fecal que contenga quistes, así como también por agua y comidas contaminadas con estos. Se adhiere al borde velloso de la mucosa intestinal mediante un disco adhesivo ventral. En perros, se cree que la transformación en una forma quística resistente ocurre sobre todo en el ciego6.

La fase quística o de resistencia sobrevive durante meses en el medio ambiente en condiciones de humedad y bajas temperaturas. El trofozoíto es incapaz de sobrevivir en condiciones medioambientales16.

Al excretar los quistes elipsoides, de inmediato son infectantes para otros huéspedes. Después que los quistes ingeridos se exponen a los líquidos gástricos y duodenales, 34 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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los trofozoítos emergen y colonizan la mucosa del intestino delgado. El período asintomático de las infecciones por Giardia varía de 5 a 12 días, en el perro la media es de 8 días. Cuando se inicia la enfermedad puede precederse de eliminación de quistes uno a dos días6. La prevalencia de Giardia es de alrededor del 10% en los perros con buena asistencia, del 36 – 50% en los cachorros y de hasta el 100% en los criaderos7.

1.1.2.4.5 Patogenia

Las diferencias apreciables en cuanto a virulencia de las cepas de Giardia, así como su estado inmune y genético del huésped determinan el resultado de la infección 6.

Tras la ingesta oral de quistes, las secreciones gástrica y duodenal inducen la liberación de trofozoítos22.

Formas de patogenicidad:  Por un mecanismo traumático-irritativo, sobre las células intestinales, esta ocasiona un acortamiento de las microvellosidades intestinales y destrucción del 35 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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borde en cepillo de las células. Como consecuencia hay alteraciones en la digestión y un cuadro general de malabsorción.  Acción Expoliadora.- Sobre los principales elementos nutricionales, tomando para su propio metabolismo proteínas, hidratos de carbono, grasas del hospedador e interfiriendo en el metabolismo de éste.  Acción Vectorial.- Ya que son capaces de transportar en su interior otros agentes patógenos (virus, bacterias, micoplasmas, hongos)9.

Las diferencias de virulencia entre las cepas de Giardia pueden determinar el desarrollo de la signología clínica, que puede ser potenciada por las respuestas inmunológicas frente al microorganismo. El estado de inmunidad del huésped puede condicionar el desarrollo o no de la signología clínica. Los animales que viven en grupo presentan un mayor riesgo de infección por Giardia22.

1.1.2.4.6 Cuadro Clínico 36 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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La Giardia puede presentarse de dos formas:  Asintomáticamente.- No se observan signos clínicos y los animales afectados actúan como reservorios.  De curso Agudo o Crónico.- Caracterizándose por diarrea mucosa con abundante grasa que aparece al 4to - 5to día post-infección, heces mal olientes, se alterna con periodos de estreñimiento o heces normales. Hay fiebre alcanzando hasta los 40 ˚C, anorexia, pérdida del apetito, distensión y dolor abdominal, pelo sin brillo e hirsuto, ojos hundidos, deshidratación en grado diverso, fatiga y ocasionalmente muertes en los animales afectados9. En general el cuadro se caracteriza por un proceso de malabsorción con un importante retraso en el crecimiento. Es frecuente la concomitancia con otros procesos de origen bacteriano, viral o parasitario que enmascaran y agravan el proceso. En el intestino se observa un fuerte proceso inflamatorio de tipo mucoide, con acortamiento y destrucción de

las

microvellosidades,

infiltración

con

linfocitos,

macrófagos y eosinófilos. En la sangre se aprecian hemoconcentración, linfocitosis y una ligera eosinofilia9.

1.1.2.4.7

Diagnóstico 37

Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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Los síntomas clínicos no son patognomónicos por lo que hay que recurrir al análisis coprológico16.

Los trofozoítos de Giardia se observan en heces recién recolectadas de perros y gatos o en moco duodenal obtenido por endoscopia en perros. Para obtenerlos vivos, una pequeña cantidad de muestra se mezcla con solución isotónica y se revisa bajo amplificación mínima de 200 X, con luz reducida6.

Para detectar quistes de Giardia por flotación fecal, se prefiere el método de centrifugación con sulfato de zinc. La solución acuosa de sulfato de zinc se prepara con gravedad específica de 1.18 a 1.20 6.

La técnica de elección es la flotación en sulfato de zinc ya que es la solución menos hipertónica y, por lo tanto, la que menos distorsiona los frágiles quistes16.

La mayoría de los animales que eliminan quistes en sus deposiciones son asintomáticos, mientras que en las heces de aquellos con diarrea suelen hallarse trofozoítos. Un frotis fecal, en especial en pacientes sintomáticos, pueden revelar 38 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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trofozoítos, fácilmente identificables por su motilidad de rotación errática y por su disco ventral cóncavo7.

Diversas pruebas basadas en la reacción antígeno-anticuerpo han sido desarrolladas, la inmunoflorescencia indirecta (IFI), las técnicas de ELISA aunque con estas los resultados son muy dispares y puede existir reacción cruzada con otros parásitos que asientan en el intestino9.

1.1.2.4.8

Diagnóstico Diferencial

Otras causas de diarrea de intestino delgado aguda, diarreas del intestino delgado crónicas, esteatorrea, enteropatías perdedoras de proteínas, pérdida de peso y falta de desarrollo, entre ellas la insuficiencia pancreática exocrina, las

infecciones

gastrointestinales

por

helmintos

y

las

enfermedades intestinales inflamatorias22.

1.1.2.4.9

Tratamiento

Se debe tratar todos los animales en los que el análisis coprológico sea positivo, independientemente presenten síntomas o no16. 39 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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Las opciones terapéuticas en perros comprenden:  Metronidazol, 15 – 25mg/kg VO (BID) durante 8 días.  Febendazol, 50mg/kg VO (SID) durante 3 -7 días.  Albendazol, 25mg/kg VO (BID) durante 2- 7 días.  Quinacrina, 9mg/kg VO (SID) durante 6 días; es frecuente la irritación gastrointestinal.  Tinidazol, 44mg/kg VO (SID) durante 3 días.  Ipronidazol.- 126mg / l de agua VO ad libitum durante 7 días.

El tratamiento combinado con metronidazol y quinacrina podría solucionar algunas infecciones resistentes. Dado que la signología clínica de la Giardia puede ser intermitente y se trata de una zoonosis, deben tratarse los animales con infección subclínica22.

1.1.2.4.10

Prevención

El control de la giardiasis canina en perreras generalmente se realiza eficazmente muestreando rutinariamente las heces y tratando a los individuos que eliminan quistes. Cuando es factible, el aislamiento y una rigurosa desinfección son una buena alternativa. Los desinfectantes eficaces son el Lisol (2 40 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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– 5%), el Sterinol (1%) o el Hipoclorito sódico (1%) y los compuestos de Amonio Cuaternario14.

1.1.3 CLASE ESPOROZOARIA: ISOSPORA

1.1.3.1 Taxonomía  Phylum:

Apicomplexa

 Clase:

Esporozoaria

 Subclase:

Coccidiasina

 Orden:

Eucoccidida

 Suborden:

Eimeriorina

 Familia:

Eimeriidae

 Género:

Isospora

 Especies:

canis belli felis suis28.

1.1.3.2 Morfología

Sus ooquistes son elipsoidales anchos y ligeramente ovoides, de 32- 42 por 27 – 33um, sin micrópilo, gránulo polar ni 41 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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residuo, pero con una diminuta burbuja adherida al interior del ooquiste en el extremo ensanchado. Sus esporoquistes miden de 18 – 24 por 15 – 18 um18.

FIGURA No 5. Ooquistes sin esporular y ooquiste esporulado de Isospora spp.13.

1.1.3.3

1.1.3.3.1

COCCIDIOSIS

Definición

Es la infección producida por un coccidio, Isospora spp. que invade el aparato digestivo, especialmente las células del epitelio de la mucosa del intestino delgado de todo vertebrado 42 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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y que desencadena un síndrome febril, diarrea aguda, deshidratación. Es un parásito de distribución cosmopolita. La infección se produce por fecalismo, es decir el hospedero susceptible contrae la infección por la ingestión de ooquistes eliminados al medio ambiente a través de las heces27.

Cuando invaden la mucosa intestinal Isospora canis al perro e Isospora felis al gato, provocan ruptura de las células parasitadas, irritación y lesiones erosivas, lo que origina diarrea24.

1.1.3.3.2

Etiología

Los miembros del género Isospora, los coccidios reconocidos con más frecuencia como causantes de infecciones en perros y gatos son especies específicas del huésped definitivo. Al menos cuatro especies Isospora canis, Isospora oihensis, Isospora burrowsi e Isospora neorivolta infectan a los perros y dos Isospora felis e Isospora rivolta a los gatos7.

1.1.3.3.3

Ciclo Parasitario

Todos los coccidios tienen un ciclo asexual y uno sexual. En 43 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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algunos géneros como en Isospora, se encuentran en el mismo huésped. En todos los coccidios, el oocisto representa el ciclo biológico la fase resistente al ambiente y se excreta en las heces del huésped definitivo6.

Después de exponerse al aire, temperaturas cálidas (20 a 37º C) y humedad los oocistos esporulan y forman dos esporocistos. Dentro de cada uno hay 4 esporozoitos23.

Después

que

los

perros

o

gatos

ingieren

oocistos

esporulados los esporozoítos salen del quiste en el lumen intestinal e inician la formación de esquizontes o merontes. Durante la esquizogonia o merogonia, el núcleo del esporozoíto se divide en dos, tres o más núcleos, según el parásito y fase del ciclo. Después de la división, cada núcleo se rodea de citoplasma para formar un merozoíto. Los merozoítos se liberan del esquizonte cuando la célula huésped se rompe. La

primera generación de merozoítos

repite el ciclo asexual y forma una segunda generación de esquizontes o se transforma en gamontes masculinos (micro) y femeninos (macro). El microgamonte se divide en muchos pequeños microgamentos. Uno de ellos fertiliza a un macrogamonte y se forma una pared del oocisto alrededor del 44 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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cigoto. El ciclo biológico se completa cuando los oocistos esporulados se excretan en heces6.

FIGURA No 6. Ciclo parasitario de Isospora spp.13.

1.1.3.3.4

Epidemiología

La edad es un factor importante en su presentación, que es más grave y dura más tiempo en los cachorros. Están asociadas

a

estrés,

enfermedades

concomitantes,

desnutrición16.

El ciclo vital de la Isospora, que afecta a perros y gatos es similar al ciclo intestinal coccidiano básico, excepto porque también puede ocurrir un ciclo asexual en el huésped definitivo o intermedio. En la ingestión por parte de los huéspedes definitivos o paraténicos (intermedios) apropiados, 45 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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los oocistos liberan los esporozoítos ante la presencia de bilis, y los esporozoítos libres invaden el intestino. Algunos esporozoítos penetran en la pared intestinal y entran en los ganglios

linfáticos

mesentéricos

u

otros

tejidos

extraintestinales, donde forman quistes unicelulares que aumentan de tamaño. Si no hay replicación, el huésped se denomina

huésped

paraténico

en

lugar

de

huésped

intermedio. Los quistes monozoicos de Isospora pueden permanecer en los tejidos extraintestinales de los huéspedes definitivos o paraténicos durante la vida de éste7.

En los perros y gatos, estos quistes pueden servir como focos de reinfección intestinal y recidivas de coccidiosis entérica. La ingestión

de

quistes

monozoicos

en

los

huéspedes

paraténicos produce infección en el huésped definitivo canino o felino. El ciclo vital posterior a la infección de un huésped paraténico es el mismo que el posterior a la ingestión de oocistos esporulados en las heces7.

1.1.3.3.5

Patogenia

Cada esquizonte y cada gametocito destruyen su célula hospedadora. La infección coccidiana asintomática pasa a 46 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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manifestarse como enfermedad (coccidiosis) cuando el número de células destruidas supera la capacidad del hospedador para regenerarla. Dado que el número de células destruidas es determinado por el número de células invadidas por los esporozoítos, la gravedad de la infección depende de la tasa de ingestión de ooquistes y del estado inmunitario del hospedador. En un cachorro sano la ingestión continua de un número reducido de ooquistes da lugar a una infección moderada que permite la producción de nuevos ooquistes para beneficio del parásito y el desarrollo de inmunidad frente a la reinfección para beneficio del hospedador7.

Por el contrario, la ingestión de un número de ooquistes elevado en un periodo de tiempo breve puede provocar una enteritis grave especialmente en individuos malnutridos, enfermos o muy estresados. La edad es un importante factor determinante de la gravedad y duración de la infección14.

1.1.3.3.6

Cuadro Clínico

La diarrea con coccidiosis en animales inmunocompetentes puede representar infecciones incidentales o concurrentes con coccidios y otros agentes infecciosos, ya que la infección 47 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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coccidiana puede existir en ausencia de enfermedad clínica. Las infecciones enzoóticas se encuentran con frecuencia en guarderías felinas o perreras donde se reúnen animales. Los signos clínicos son más evidentes en los neonatos7.

A nivel clínico, la diarrea grave se ha asociado con la coccidiosis natural en perros y gatos inmunosuprimidos. El principal signo atribuido a la coccidiosis en perros y gatos es la diarrea con pérdida de peso y deshidratación y hemorragia (aunque esta última es rara) 7.

En los animales con afección grave se puede observar anorexia, vómitos, depresión mental y por último la muerte. Los perros y gatos muy inmunosuprimidos pueden presentar etapas extraintestinales en los macrófagos de los ganglios linfáticos con depleción linfocitaria o en otros tejidos no intestinales. La coccidiosis intestinal puede manifestarse a nivel clínico cuando los perros y gatos son transportados, destetados o experimentan un cambio de dueño7.

1.1.3.3.7

Diagnóstico

La infección intestinal coccidiana en perros y gatos se 48 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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diagnostica por medio de la identificación de los oocistos con cualquiera de los métodos de flotación fecal usados con frecuencia para diagnosticar infecciones parasíticas. En los perros, sólo Isospora canis puede identificarse con seguridad por medio del tamaño y forma del oocisto7.

Aunque los oocistos de Isospora canis pasan sin formar esporas en las heces frescas, para el momento en que se realiza el examen fecal han esporulado parcialmente, los oocistos esporulados en forma parcial contienen dos esporocistos sin esporozoítos. Las especies de Isospora pueden esporular dentro de las 8 horas de la excreción, estas formas son muy infecciosas7.

1.1.3.3.8

Diagnóstico Diferencial

Deben considerarse todas las causas de diarrea de intestino delgado,

grueso

o

mixta,

entre

ellas

enfermedades

infecciosas por parvovirus o coronavirus, enfermedades inflamatorias

intestinales,

enteropatías

obstructivas

y

helmintiasis digestivas22.

1.1.3.3.9

Pronóstico 49

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Con frecuencia favorable de 8 a 10 días20.

1.1.3.3.10

Tratamiento

Cuando las infecciones coccidianas persisten por periodos extensos en animales mayores o cuando se asocian con diarrea

crónica,

debe

sospecharse

una

enfermedad

subyacente o inmunosupresión del huésped. El tratamiento se indica a menudo en las perras y sus cachorros recién nacidos debido a la gravedad de los signos clínicos a esta edad7.

Opciones terapéuticas en perros:  Trimetoprim-sulfonamida, 15 mg/kg VO (BID-SID) durante 5 días.  Sulfadimetoxina/ormetoprim

(55mg/kg

de

sulfadimetoxina y 11 mg/kg de ormetoprim) VO (SID) durante 23 días.  Sulfadimetoxina, 50-60mg/kg VO en una dosis, luego 25 mg/kg VO (SID) durante 5-20 días.  Furazolidona, 4-10mg/kg VO (BID-SID) durante 5 días. 50 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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 Amprolium, 200mg de dosis total VO (SID) durante 5 días22. Si la diarrea o la deshidratación son graves, se debe considerar la fluidoterapia parenteral como medida de apoyo. Cuando la hemorragia intestinal resulta en anemia, se puede necesitar transfusión sanguínea7.

1.1.3.3.11

Prevención

La coccidiosis tiende a ser un problema en los ambientes antihigiénicos. La excreción fecal de grandes cantidades de oocistos resistentes al ambiente hace más probable la infección bajo estas condiciones. Los animales deben estar alojados de manera que no permita la contaminación de los recipientes de agua y comida por medio del suelo sembrado de oocistos o de heces infectadas. Las heces deben ser recogidas a diario e incineradas. Los oocistos sobreviven a las temperaturas bajo cero. Los corrales, jaulas, utensilios de comida y demás elementos deben desinfectarse por medio de vapor o inmersión en agua hirviendo o con solución de amonio al 10% 7.

1.2 METODO DE FLOTACION CON SULFATO DE ZINC 51 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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La flotación con Sulfato de Zinc es una técnica útil, para recuperar quistes y ooquistes de protozoos y huevos de helmintos, con excepción de los operculados y los de alta densidad como el Toxocara canis1.

Cuando el examen directo de heces resulta negativo, se puede recurrir a métodos de concentración que aumentan probabilidad de un diagnóstico positivo.

1.2.1 Concentración por Flotación

El principio de este método consiste en usar líquido de más alta densidad que los elementos buscados. Los elementos menos densos flotarán a la superficie.

1.2.2 Control de calidad del método

Al probar un nuevo método en el laboratorio, es siempre recomendable comparar la muestra con una ya conocida. Para ello tener a mano muestras de

heces positivas por

huevos de nematodos y/o quistes de protozoos y ejecutar el método con controles positivos y pacientes.

52 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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1.2.3 Ventajas y Desventajas

La ventaja es que los elementos diagnósticos se recobran libres de detritus, lo cual facilita y acelera el tiempo de examinar la lámina. Tiene la desventaja de que la densidad de la solución encoge y deforma las larvas en poco tiempo.

1.2.4

Materiales para preparar la solución de Sulfato

de Zinc  Sulfato

de

 Hidrómetro

zinc

 Hornilla

(SO4Zn)  Agua Destilada

 Recipientes

 Papel filtro o gasas

 Papel aluminio

 Embudos

 Espátula

 Guantes

 Probeta de 1,000 mL

 Balanza

capacidad

 Vasos de precipitación

 Erlen Meyer de

 Varilla de vidrio

1,500mL capacidad

 Soporte universal 1.2.5 Preparación de la solución de Sulfato de zinc 53 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

2011

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 Pesar 330 gramos de SO4Zn.  Colocar en Erlen Meyer.  Medir 700 mL de agua destilada.  Verter y disolver SO4Zn.  Calentar para facilitar la disolución del SO4Zn.  Cuando la sal de sulfato se ha diluido completamente, adicionar 250-300mL de agua destilada y mezclar muy bien.  El volumen total será de acuerdo a la densidad 1.180.  Verter solución de SO4Zn en un cilindro de 1,500mL.  Medir la densidad de la solución de SO4Zn.  El hidrómetro debe flotar libre, sin tocar las paredes del cilindro.  La densidad debe leer 1.180.

1.2.5.1

Ajuste de densidad

Si la densidad es inferior a 1.180, agregar un poco más de sulfato de zinc. Si la densidad resultó mayor a 1.180, agregar un poco más de agua destilada, agregar más SO4Zn o más agua según lectura. Medir de nuevo a la densidad deseada, guardar en un frasco rotulado para evitar confusiones5. 54 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

2011

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1.2.6

Ejecución del método

Rotular vasos y tubos de ensayo con muestras.

1.2.6.1

Pasos del método

1. Filtrado y lavado de heces. 2. Flotación en sulfato de zinc. 3. Recuperación del flotante. 4. Observación al microscopio.

1.2.6.1.1

Filtrado y lavado de heces

 Mezclar 2 g de heces aproximadamente, en un vaso de plástico con 5 ml de agua destilada para el

primer

lavado, esto se puede lograr mezclando en forma manual con dos aplicadores.  Filtrar la suspensión de materia fecal a través de dos capas de gasa y pasarla a un segundo vaso de plástico, lavando con un pequeño volumen de agua.  Verter el filtrado en el tubo de ensayo.  Centrifugar a 2 500 rpm X 1 min.  Decantar el sobrenadante. 55 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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1.2.6.1.2

Flotación en sulfato de zinc

 Agregar aproximadamente 3 ml de solución de sulfato de zinc y volver a suspender con los aplicadores.  Llenar el tubo hasta 1 cm del borde.  volver a centrifugar a 2 500 rpm X 1 min.  Mientras centrifuga rotular porta-objetos. 1.2.6.1.3

Recuperación del flotante

 Al completar el centrifugado abra la tapa de la centrífuga con cuidado y sin tocar ni agitar los tubos.  Pipetear para recoger sobrenadante.  Colocar la muestra sobre los porta- objetos rotulado.  Agregar una gota de solución de Lugol para colorear quistes de protozoos.  Cubrir con cubreobjetos. 1.2.6.1.4

Observación al microscopio

 Se observan quistes y ooquistes de protozoos de diferente tamaño. 56 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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 Identificar bien su morfología, ya que con este método se puede visualizar huevos de otros parásitos que pueden ser objeto de confusión.

1.2.7 Desinfección  Descartar

materiales

utilizados

en

solución

desinfectante.  Lavado de manos cuantas veces sea necesario.  Descartar muestras de heces.  Desinfectar mesa de trabajo. 1.2.8 Puntos importantes  Realizar informe de resultados en el formulario de laboratorio.  Asegurar densidad de solución de SO4Zn: 1.180 o 1.200.  Mezclar bien el sedimento con solución de SO4Zn.  No tocar tubos hasta terminar operación5. 1.2.9

Interpretación

Una vez observada la muestra al microscopio en la cual 57 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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identificaremos quistes y ooquistes por campo de los protozoos en estudio, seguiremos el siguiente esquema para determinar el grado de infestación parasitaria:  Una cruz (+) si el campo presenta de 1 a 2.  Dos cruces (++) si el campo presenta de 3 a 4.  Tres cruces (+++) cuando en campo presenta más de 5.

II MATERIALES Y METODOS

2.1

MATERIALES

2.1.1 Materiales de campo

Biológicos:  Caninos Físicos  Mandil  Sonda

 Cajas de recolección rectal

de heces

para

 Guantes de examinación

heces

58 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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 Termo con material 2.1.2

refrigerante

Materiales de laboratorio:

Biológicos:  Heces de caninos

Químicos:  Sulfato de zinc

 Lugol al 5%

 Agua destilada

Físicos:

Para la solución:  Balanza

 Papel filtro

 Embudos

 Soporte universal

 Espátula

 Papel Aluminio

 Varilla de vidrio

 Hidrómetro

 Hornilla

 Recipientes

 Vasos de

 Matraz Erlen Meyer de

precipitación

1,500mL

 Probeta de 1,000 mL 59 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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Para la técnica:  Sulfato de zinc

 Vasos de plástico

(SO4Zn) de

 Aplicadores

densidad 1.800

 Coladores

 Agua destilada

 Tubos de ensayo

 Solución de Lugol al

 Gradillas  Centrífuga

5%  Microscopio

 Pipeta

 Mandil

 Portaobjetos

 Hojas de campo

 Cubreobjetos

 Hojas de laboratorio

 Cinta masking

 Guantes de examinación

2.1.3 Materiales de Escritorio  Computadora

 Cámara de fotos

 Impresora

 Memory flash

 Scanner

 Esferográficos

 CDs

 Hojas de papel bond

60 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

2011

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2.2 METODOS:

2.2.1 Manejo del experimento

2.2.1.1

Métodos de campo

a) Recolección de muestras:

Para la recolección de muestras se recomienda seguir el siguiente protocolo:  Preparar los materiales que se van a utilizar.  Toma de datos en la hoja de campo.  Recolección de heces recién evacuadas.  En caso de que no presente la defecación, sujetar al animal y tomar la muestra del recto.

b) Identificación de la muestra

La caja que va a contener la muestra debe tener una etiqueta numerada para su fácil identificación, y a la vez que concuerde con su respectiva hoja de campo, la misma 61 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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que poseerá

los datos ampliados de las características

individuales de cada animal.

c) Envío de la muestra

Se la debe enviar lo más pronto posible al laboratorio en termos con material refrigerante, para que llegue en buenas condiciones, de no ser así se obtendrá resultados falsos.

2.2.2

Area de estudio

a) Lugar

Esta investigación se realizará en las parroquias urbanas pertenecientes al Cantón Cuenca, provincia del Azuay, de la República del Ecuador.

b) Condiciones Topográficas El cantón Cuenca ubicado al sur de Ecuador es uno de los 15 cantones que conforman la provincia del Azuay de la cual

62 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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Cuenca es su capital.

Latitud sur

2°52’ – 2°54’

Longitud oeste

78°59’ – 79°01’

Altitud

2.550 msnm

Temperatura

15°C

promedio Pluviosidad anual

700 a 1100 mm

Humedad

75%

relativa Época

Febrero a mayo y de octubre a

lluviosa(meses)

noviembre

Época

Junio a septiembre y con menor intensidad de diciembre a enero

seca(meses) Velocidad media del viento

4m/s entre abril y mayo y 5,5m/s en dos periodos: diciembre-enero y julio-agosto

FUENTE: INAMHI (Instituto Nacional de Meteorología e Hidrología). 2010

III RESULTADOS Y DISCUSION 63 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

2011

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3.1. Análisis Estadístico

En este capítulo se registraron los datos de la investigación, del número de casos positivos y negativos en caninos machos y hembras de diferente raza registrados con 3 rangos de edad, con respecto al grado de infestación parasitaria: baja, media y alta causada por Giardia canis. Ameba spp. y Coccidia spp.

3.2. Métodos de evaluación y datos a tomarse

Las muestras de heces se tomaron de caninos de la Ciudad de Cuenca, de ambos sexos, diferente raza y con 3 rangos de edad, de una población de la ciudad de Cuenca de las parroquias urbanas según el Censo Canino del 2008, emitido por el Ministerio de Salud Pública. (Anexo 4)

3.3. Análisis de las muestras:

Las

muestras

recolectadas

fueron

analizadas

en

los

siguientes laboratorios:

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 Laboratorio de Parasitología de la Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad de Cuenca.  Laboratorio de la Clínica Veterinaria CLINICAN.

3.4. Factores a estudiar

La prevalencia de protozoos (Giardia canis, Ameba spp. y Coccidia spp.) en caninos de la ciudad de Cuenca mediante centrifugación con la técnica de sulfato de zinc. Determinar que protozoo entre (Giardia canis, Ameba spp. y Coccidia spp.) es más común en caninos de la ciudad de Cuenca, de acuerdo a edad, raza y sexo.

3.5. Procedimientos estadísticos

a) Población Universo: De acuerdo al plano del Ministerio de Salud Pública se registra la división en 4 áreas de salud de la ciudad de Cuenca, dentro de los cuales se incluyen 14 parroquias urbanas, la población se estimó en 111900 caninos.(Anexo 4)

65 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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b) Muestra: Se realizó un muestreo a la población del 1% en lo que se obtuvo una muestra de 1120 caninos, que fueron seleccionados al azar en un número de 80 muestras por cada una de las parroquias de las 4 áreas del cantón Cuenca.

c) Muestreo: En esta investigación se aplicó el Muestreo Aleatorio al Azar. d) Análisis estadístico: Se realizó los siguientes análisis y pruebas:  Medida de tendencia central y dispersión de datos.  Cuadros de frecuencias relativas (%).  Intervalo de confianza al 95%.  Prueba de X2 (Chi Cuadrado).  Prueba de Z.  Gráficos y figuras. e) Simbología utilizada en el análisis estadístico:  R = Rango  S2 = Varianza 66 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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 S = Desviación típica  IC = Intervalo de Confianza 

= Media

 ∑ = Sumatoria

3.6 CUADROS Y GRÁFICOS ESTADÍSTICOS

Giardia canis

CUADRO N° 1. Promedio del grado de prevalencia de Giardiasis en hembras, en las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

Giardia N° Area Area 1 Area 2 Area 3 Area 4 ∑Xi R S2

+ 7 2 6 2 17 4,25 5,00 6,92

++ 2 1 1 1 5 1,25 1,00 0,25

+++ 1 0 1 0 2 0,5 1,0 0,3

Negativo 230 157 72 77 536 134 158 5612,67

S

2,63

0,50

0,6

74,92

i

67 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

2011

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IC al 95%

2,28 µ 6,22

0,71 µ 1,79

0,18 µ 0,82

72,94 µ 195,06

El Intervalo de Confianza al inferir a la Muestra al 95 % de infestación de Giardiasis en hembras para las 4 áreas investigadas se obtuvo los siguientes resultados para los niveles de infestación: Baja (+) de 2,28 µ 6,22 con un

=

4,25 con un 0,38% de casos con respecto a la muestra. Media (++) de 0,71 µ 1,79 con una

= 1,25 con 0,11% de

casos con respecto a la muestra. Alta (+++) de 0,18 µ 0,82 con una

= 0,5 con un 0,04% de casos con respecto a la

muestra y Negativos de 72,94 µ 195,06 con una

= 134

con un 11,96% de casos con respecto a la muestra.

68 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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CUADRO N° 2. Promedio del grado de prevalencia de Giardiasis en machos en las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

N° Area Area 1 Area 2 Area 3 Area 4 ∑Xi i

R S2 S IC al 95%

+ 7 5 6 2 20 5 5 4,67 2,16 2,84 µ 7,16

Giardia ++ 3 2 0 0 5 1,25 3 2,25

+++ 0 1 1 0 2 0,5 1 0,33

Negativo 230 152 73 78 533 133,25 157 5464,92

1,5

0,58

73,93

0,49 µ 2,01

0,02 µ 0,98

72,63 µ 193,87

El Intervalo de Confianza al inferir a la Muestra al 95 % de infestación de Giardiasis en machos para las 4 áreas investigadas se obtuvo los siguientes resultados para los niveles de infestación: Baja (+) de 2,84 µ 7,16 con una

=

5 con un 0,45% de casos con respecto a la muestra. Media (++) de 0,49 µ 2,01 con una

= 1,25 con 0,11% de casos

con respecto a la muestra. Alta (+++) de 0,02 µ 0,98 con una .

= 0,5 con un 0,04% de casos con respecto a la muestra y 70

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Negativos de 72,63 µ 193,87 con una

= 133,25 con un

11,90% de casos con respecto a la muestra.

71 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

2011

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CUADRO N° 3.

Prueba de Chi Cuadrado de los casos

positivos de niveles (+), (++), (+++) y negativos de Giardia canis en caninos machos y hembras de la ciudad de Cuenca. Grado de infestación Positivos Negativos Total

X² Cal. 0,21NS

Machos oi ei 27 25,5 533 534,5 560 560

Hembras oi ei 24 25,5 536 534,5 560 560

Total 51 1069 1120

X² Tabular 0,05 0,01 3,84 6,63

El análisis de Chi Cuadrado de casos positivos y negativos de Giardia canis en caninos machos y hembras en las 4 áreas del cantón Cuenca se obtiene un valor de 0,21 que comparado con los valores tabulares al 5 y 1% de significación, resulta ser No significativo (NS) es decir que los casos positivos y negativos se presentan por igual en machos y hembras en los 3 niveles de prevalencia por lo que se debe implementar medidas sanitarias por igual.

73 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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CUADRO N° 4. Prueba de Chi Cuadrado del total de los casos positivos y negativos de Giardia canis registrados en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras de la ciudad de Cuenca.

Grado de infestacion Positivos Negativos Total

Giardia Edad en años 4

Total

oi ei 7 13,43 51 288 281,57 1069 295 295 1120

X² Cal. X² Tabular 0,01 19,84 0,05 ** 5,99 9,21 El análisis de Chi Cuadrado para determinar la prevalencia de Giardia canis en las edades investigadas en las 4 áreas de la ciudad de Cuenca se obtiene un valor calculado de 19,84 que comparado con los valores tabulares al 5% y al 1% de significación, resulta ser altamente significativo (**), por lo que rechazamos la Ho y aceptamos la Ha de que los casos positivos y negativos de Giardia canis se presentan de 74 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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diferente manera en los 3 rangos de edad en el cantón Cuenca.

75 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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76 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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0,36

1,25 Area 1

1,07

Area 2 Area 3 Area 4

0,63

GRAFICO N° 3. Porcentajes totales de la muestra estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con Giardia canis y prevalencia (+) en las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

0,09 0,09 0,45

Area 1 Area 2

0,27

Area 3 Area 4

GRAFICO N° 4. Porcentajes totales de la muestra estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con 77 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

2011

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Giardia canis y prevalencia (++) en las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca. 0 0,09 Area 1

0,18

Area 2 0,09

Area 3 Area 4

GRAFICO N° 5. Porcentajes totales de la muestra estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con Giardia canis y prevalencia (+++) en las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

78 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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13,84 41,07

12,95

Area 1 Area 2 Area 3 27,59

Area 4

GRAFICO N° 6. Porcentajes totales de la muestra estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con Giardia canis de los casos negativos en las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

CUADRO N° 6. Prueba de Z de los casos positivos y negativos de Giardia canis, en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras de las 4 áreas del cantón Cuenca.

Giardia N° Area

+

++

+++

Negativo

xi

xi

xi

xi

Area 1

14

5

1

460

Area 2

7

3

1

309 79

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2011

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Area 3

12

1

2

145

Area 4

4

1

0

155

Total

37

10

4

1069

9,25

2,50

1,0

267

Fórmula de la Prueba de Z

Positivo (+)

1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras registrados en 3 rangos de edad, que estén con Giardia canis y con una incidencia (+) mayor a 4.

80 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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GRAFICO N° 7. Porcentaje de la prueba de Z de Giardia canis en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con grado de infestación bajo.

El 84,38 % de los casos de los caninos de la ciudad de Cuenca esta con una curva de incidencia (+) mayor a 4 o sea 8 casos que representa el 0,71 casos que no llega a 1.

Positivo (++)

1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras registrados en 3 rangos de edad, que estén con Giardia canis y con una incidencia (++) mayor a 1.

81 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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GRAFICO N° 8. Porcentaje de la prueba de Z de Giardia canis, en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con grado de infestación medio.

El 82,64 % de los casos de los caninos de la ciudad de Cuenca esta con una curva de incidencia (++) mayor a 1 o sea 3 casos que representa el 0,27 casos que no llega a 1.

Positivo (+++) 1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras registrados en 3 rangos de edad, que estén con Giardia canis y con una incidencia (+++) mayor a 1.

82 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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GRAFICO N° 9. Porcentaje de la prueba de Z de Giardia canis, en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con grado de infestación alto.

El 50 % de los casos de los caninos de la ciudad de Cuenca esta con una curva de incidencia (+++) mayor a 1 o sea cero casos. Ameba spp.

CUADRO N° 7. Promedio del grado de prevalencia de Amebiasis en hembras en las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

R S2

+ 23 16 10 9 58 14,5 14 41,7

Amebas ++ 4 4 4 1 13 3,25 3 2,25

+++ 0 1 3 0 4 1 3 2

Negativo 213 139 62 70 484 121 151 4956,67

S

6,45

1,50

1,41

70,40

N° Area Area 1 Area 2 Area 3 Area 4 ∑Xi i

83 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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IC al 95%

8,20 µ 20,80

0,82 µ 4,68

0,30 µ 1,70

-55,40 µ 296,40

El Intervalo de Confianza al inferir a la Muestra al 95 % de infestación de Amebiasis en hembras para las 4 áreas investigadas se obtuvo los siguientes resultados para los niveles de infestación: Baja (+) de 8,20 µ 20,80 con una

=

14,5 con un 1,29% de casos con respecto a la muestra. Media (++) de 0,82 µ 4,68 con una

= 3,25 con 0,29% de

casos con respecto a la muestra. Alta (+++) de 0,30 µ 1,70 con una

= 1 con un 0,09 % de casos con respecto a la

muestra y Negativos de -55,40 µ 296,40 con una . = 121 con un 10,80 % de casos con respecto a la muestra.

84 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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CUADRO N° 8. Promedio del grado de prevalencia de Amebiasis en machos en las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

N° Area Area 1 Area 2 Area 3 Area 4 ∑Xi

Amebas ++ 8 3 5 1 17 4,25 7,00 8,92

R S2

+ 30 10 9 5 54 13,5 25 125,67

S

11,21

2,99

1

64,75

IC al 95%

0,47 µ 27,5

0,11 µ 8,39

0,07 µ 2,93

12,81 µ 229,19

i

+++ 1 1 3 1 6 1,50 2,00 1

Negativo 201 146 64 73 484 121 137 4192,67

El Intervalo de Confianza al inferir a la Muestra al 95 % de infestación

de Amebiasis en machos para las 4 áreas

investigadas se obtuvo los siguientes resultados para los niveles de infestación: Baja (+) de 0,47 µ 27,5 con una

=

13,5 con un 1,21 % de casos con respecto a la muestra. Media (++) de 0,11 µ 8,39 con una

= 4,25 con 0,42 % de

casos con respecto a la muestra. Alta (+++) de 0,07 µ 2,93 con una

= 1,50 con un 0,13 % de casos con respecto a la

86 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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muestra y Negativos de 12,81 µ 229,19 con una

= 121

con un 10,80 % de casos con respecto a la muestra.

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CUADRO N° 9.

Prueba de Chi Cuadrado de los casos

positivos de niveles (+), (++), (+++) y negativos de Ameba spp. en caninos machos y hembras de la ciudad de Cuenca.

Grado de infestación Positivos Negativos Total

X² Cal. 0,03NS

Machos oi ei 77 484 561

Hembras oi ei

76,14 484,86 561

75 484 559

75,86 483,14 559

Total 152 968 1120

X² Tabular 0,05 0,01 3,84 6,63

El análisis de Chi Cuadrado de casos positivos y negativos de Ameba spp. en caninos machos y hembras en las 4 áreas del cantón Cuenca se obtiene un valor de 0,03 que comparado con los valores tabulares al 5 y 1% de significación, resulta ser No significativo (NS) es decir que los casos positivos y negativos se presentan por igual en machos y hembras en los 3 niveles de prevalencia por lo que se debe implementar medidas sanitarias por igual.

89 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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CUADRO N° 10. Prueba de Chi Cuadrado del total de los casos positivos y negativos de Ameba spp. registrados en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras de la ciudad de Cuenca.

Grado de infestacion Positivos Negativos Total X² Cal. 13,19**

oi 66 314 380

Amebas Edad en años Total 4 ei oi ei oi ei 51,57 63 60,39 23 40,04 152 328,43 382 384,61 272 254,96 968 380 445 445 295 295 1120

X² Tabular 0,05 0,01 5,99 9,21

El análisis de Chi Cuadrado para determinar la prevalencia de Ameba spp. en las edades investigadas en las 4 áreas de la ciudad de Cuenca se obtiene un valor calculado de 13,19 que comparado con los valores tabulares al 5% y al 1% de significación, resulta ser altamente significativo (**), por lo que rechazamos la Ho y aceptamos la Ha de que los casos positivos y negativos de Ameba spp. se presentan de 90 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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diferente manera en los 3 rangos de edad en el cantón Cuenca.

91 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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92 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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1,25 1,70

4,73

Area 1 Area 2 Area 3

2,32

Area 4

GRAFICO N° 12. Porcentajes totales de la muestra estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con Ameba spp. y prevalencia (+) de las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

0,18 1,07

0,80

Area 1 Area 2 Area 3 Area 4

0,63

GRAFICO N° 13. Porcentajes totales de la muestra 93 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con Ameba spp. y prevalencia (++) de las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

0,09

0,09 0,18

Area 1 Area 2 Area 3

0,54

Area 4

GRAFICO N° 14. Porcentajes totales

de la muestra

estudiada en 3 rangos de edad en caninos

machos y

hembras con Ameba spp. y prevalencia (+++) de las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

94 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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12,77 36,96

11,25

Area 1 Area 2 Area 3

25,45

Area 4

GRAFICO N° 15. Porcentajes totales

de la muestra

estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con Ameba spp. de los casos negativos de las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

CUADRO N° 12. Prueba de Z de los casos positivos y negativos de Ameba spp., registrados en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras de las 4 áreas del cantón Cuenca.

Amebas N° Area

Area 1

+

++

+++

Negativo

xi

xi

xi

xi

53

12

1

414 95

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Area 2

26

7

2

285

Area 3

19

9

6

126

Area 4

14

2

1

143

Total

112

30

10

968

28

7,5

2,5

242

Positivo (+)

1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras registrados en 3 rangos de edad que estén con Ameba spp. y con una incidencia (+) mayor a 14.

96 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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GRAFICO N° 16. Porcentaje de la prueba de Z de Ameba spp., en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con grado de infestación bajo.

El 80,23 % de los casos de los caninos de la ciudad de Cuenca esta con una curva de incidencia (+) mayor a 14 o sea 23 casos que representa el 2,05 casos.

Positivo (++)

1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras registrados en 3 rangos de edad que estén con Ameba spp y con una incidencia (++) mayor a 2.

97 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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GRAFICO N° 17. Porcentaje de la prueba de Z de Ameba spp., en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con grado de infestación medio.

El 89,97 % de los casos de los caninos de la ciudad de Cuenca esta con una curva de incidencia (++) mayor a 2 o sea 7 casos que representa el 0,63 casos.

Positivo (+++)

1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras registrados en 3 rangos de edad que estén con Ameba spp y con una incidencia (+++) mayor a 1.

98 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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GRAFICO N° 18. Porcentaje de la prueba de Z de Ameba spp., en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con grado de infestación alto.

El 81,06 % de los casos de los caninos de la ciudad de Cuenca esta con una curva de incidencia (+++) mayor a 1 o sea 2 casos que representa el 0,18 casos que no llega a 1.

Coccidia spp. CUADRO N° 13. Promedio del grado de prevalencia de Coccidiosis en hembras en las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

N° Area Area 1 Area 2 Area 3 Area 4 ∑Xi R S2

+ 20 12 9 7 48 12 13 32,67

S

3,30

i

Coccidia ++ 7 8 3 1 19 4,75 7 10,92 3,30

+++ 4 1 1 2 8 2 3 2

Negativo 209 139 67 70 485 121,25 142 4528,25

1,41

67,29 99

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IC al 95%

6,72 µ 17,28

2,46 µ 7,04

1,01 µ 2,99

66,11 µ 176,39

El Intervalo de Confianza al inferir a la Muestra al 95 % de infestación de Coccidiosis en hembras para las 4 áreas investigadas se obtuvo los siguientes resultados para los niveles de infestación: Baja (+) de 6,72 µ 17,28 con una

=

12 con un 1,07% de casos con respecto a la muestra. Media (++) de 2,46 µ 7,04 con una

= 4,75 con 0,42 % de casos

con respecto a la muestra. Alta (+++) de 1,01 µ 2,99 con una .

= 2 con un 0,18 % de casos con respecto a la muestra y

Negativos de 66,11 µ 176,39 con una

= 121,25 con un

10,83 % de casos con respecto a la muestra.

100 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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101 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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CUADRO N° 14. Promedio del grado de prevalencia de Coccidiosis en machos en las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

R S2

+ 21 6 7 6 40 10 15 54

Coccidia ++ 6 2 2 3 13 3,25 4 3,58

+++ 3 0 2 0 5 1,25 3 2,25

Negativo 210 152 69 71 502 125,5 141 4668,33

S

1,89

1,89

1,5

68,33

IC al 95%

5,07 µ 14,93

1,75 µ 4,75

0,49 µ 2,01

68,67 µ 182,33

N° Area Area 1 Area 2 Area 3 Area 4 ∑Xi i

El Intervalo de Confianza al inferir a la Muestra al 95 % de infestación

de Coccidiosis en machos para las 4 áreas

investigadas se obtuvo los siguientes resultados para los niveles de infestación: Baja (+) de 5,07 µ 14,93 con una

=

10 con un 0,89% de casos con respecto a la muestra. Media (++) de 1,75 µ 4,75 con una

= 3,25 con 0,29% de casos

con respecto a la muestra. Alta (+++) de 0,49 µ 2,01 con una . = 1,25 con un 0,11% de casos con respecto a la muestra y 102 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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Negativos de 68,67 µ 182,33 con una

= 125,5 con un

11,21% de casos con respecto a la muestra.

103 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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104 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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CUADRO N° 15. Prueba de Chi Cuadrado de los casos positivos de niveles (+), (++), (+++) y negativos de Coccidia spp. en caninos machos y hembras de la ciudad de Cuenca. Machos oi ei

Grado de infestación Positivos Negativos Total X² Cal. 2,47 NS

58 502 560

Hembras oi ei

66,5 493,50 560

75 485 560

66,5 493,5 560

Total 133 987 1120

X² Tabular 0,05 0,01 3,84 6,63

El análisis de Chi Cuadrado de casos positivos y negativos de Coccidia spp. en caninos machos y hembras en las 4 áreas del cantón Cuenca se obtiene un valor de 2,47 que comparado con los valores tabulares al 5 y 1% de significación, resulta ser No significativo (NS) es decir que los casos positivos y negativos se presentan por igual en machos y hembras en los 3 niveles de prevalencia por lo que se debe implementar medidas sanitarias por igual.

105 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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CUADRO N° 16. Prueba de Chi Cuadrado del total de los casos positivos y negativos de Coccidia spp. registrados en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras de la ciudad de Cuenca.

Coccidia Edad en años Grado de Total infestacion 4 oi ei oi Ei oi ei Positivos 59 45,1 47 52,84 27 35,03 133 Negativos 321 334,9 398 392,16 268 259,97 987 Total 380 380 445 445 295 295 1120

X² Cal. 7,66*

X² Tabular 0,05 0,01 5,99 9,21

El análisis de Chi Cuadrado para determinar la prevalencia de Coccidia spp. en las edades investigadas en las 4 áreas de la ciudad de Cuenca se obtiene un valor calculado de 7,66 que comparado con los valores tabulares al 5% y al 1% de significación, aceptamos

resulta

ser

significativo

(*),

por

lo

que

la Ho al 1 % de que los casos positivos y

negativos de Coccidia spp. se presentan de igual manera en 106 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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los 3 rangos de edad y son diferentes al 5% en los caninos del cantón Cuenca.

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108 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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1,16 3,66

1,43

Area 1 Area 2 Area 3

1,61

Area 4

GRAFICO N° 21. Porcentajes

totales de la muestra

estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con Coccidia spp. y prevalencia (+) en las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

0,36 1,16

0,45

Area 1 Area 2 Area 3 0,89

Area 4

GRAFICO N° 22. Porcentajes

totales de la muestra

estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y 109 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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hembras con Coccidia spp. y prevalencia (++) en las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

0,18 Area 1

0,27

0,63

Area 2 Area 3

0,09

Area 4

GRAFICO N° 23. Porcentajes totales de la muestra estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con Coccidia spp. y prevalencia (+++) en las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

110 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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12,59 37,41

12,14

Area 1 Area 2 Area 3 25,98

Area 4

GRAFICO N° 24. Porcentajes

totales de la muestra

estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con Coccidia spp. de los casos negativos en las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

CUADRO N° 18. Prueba de Z de los casos positivos y negativos de Coccidia spp., en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras de las 4 áreas del cantón Cuenca.

Coccidia N° Area

Area 1

+

++

+++

Negativo

xi

xi

xi

xi

41

13

7

419 111

Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

2011

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Area 2

18

10

1

291

Area 3

16

5

3

136

Area 4

13

4

2

141

Total

88

32

13

987

22

8

3,25

246,75

Positivo (+)

1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras registrados en 3 rangos de edad que estén con Coccidia spp. y con una incidencia (+) mayor a 13.

112 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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GRAFICO N° 25. Porcentaje de la prueba de Z de Coccidia spp., en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con grado de infestación bajo.

El 76,12 % de los casos de los caninos de la ciudad de Cuenca esta con una curva de incidencia (+) mayor a 13 o sea 17 casos que representa el 1,52 casos. Positivo (++)

1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras registrados en 3 rangos de edad que estén con Coccidia spp. y con una incidencia (++) mayor a 4.

113 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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GRAFICO N° 26. Porcentaje de la prueba de Z de Coccidia spp., en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con grado de infestación medio.

El 81,33 % de los casos de los caninos de la ciudad de Cuenca esta con una curva de incidencia (++) mayor a 4 o sea 7 casos que representa el 0,63 casos.

Positivo (+++)

1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras registrados en 3 rangos de edad que estén con Coccidia spp y con una incidencia (+++) mayor a 1.

114 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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GRAFICO N° 27. Porcentaje de la prueba de Z de Coccidia spp., en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con grado de infestación alto.

El 85,77 % de los casos de los caninos de la ciudad de Cuenca esta con una curva de incidencia (+++) mayor a 1 o sea 3 casos que representa el 0,27 casos que no llega a 1.

IV CONCLUSIONES

De la investigación realizada conseguimos las siguientes conclusiones:  Se determinó la prevalencia de protozoos (Giardia canis, Ameba spp. y Coccidia spp.), mediante

exámenes

coprológicos con el método de centrifugación utilizando la técnica de sulfato de zinc, concluyendo que éstas parasitosis se presentan por igual en caninos machos y hembras.  Se comprobó que los protozoos (Giardia canis, Ameba spp. y Coccidia spp.), de acuerdo a los tres rangos de 115 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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edad, se encuentran con mayor predisposición

en

caninos de edades tempranas, menores a 2 años.  Se comprobó que estas parasitosis tienen mayor presencia en las áreas más lejanas, debido a que los caninos conviven con otras especies animales, y las condiciones medioambientales favorecen su desarrollo permitiendo el intercambio de formas parasitarias.  Según los datos estadísticos de esta investigación la mayoría de caninos se encontraron con grados de infestación bajos de esta manera consideramos que éstos se encuentran con mejor nivel de vida.  Se establecieron los porcentajes según el grado de infestacion para: Giardia canis: Baja con 3,45%, Media con 1,25% y Alta con 0,37%. Ameba spp.: Baja con 11,58%, Media con 3,10% y Alta con 1,03%. Coccidia spp.: Baja con 8,91%, Media con 3,25% y Alta con 1,31%.

V RECOMENDACIONES 116 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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En la presente investigación sugerimos las siguientes recomendaciones:  Concientizar a los propietarios la importancia de los exámenes coprológicos periódicos para prevenir la difusión elevada de estas enfermedades protozoarias y al mismo tiempo que no afecte su economía.  Por los resultados obtenidos en la investigación que se encaminan a una prevalencia baja de estos protozoos

a

nivel

de

la

ciudad

de

Cuenca,

recomendamos a los propietarios de las mascotas tener

presente

un

calendario

sanitario

de

desparasitaciones, con el fin de evitar que estas parasitosis alcancen niveles altos.  De igual manera recomendamos a los propietarios de las

mascotas

visitar

al

Médico

Veterinario

frecuentemente para que realice exámenes de heces y las desparasitaciones periódicas con la finalidad de mantener la salud del animal en perfecto estado.

117 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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 Realizar constantemente limpiezas del ambiente en el que habitan los caninos para mantener un nivel bajo de estas parasitosis.  Realizar investigaciones en el campo parasitario en otras especies domésticas ya que se trata de enfermedades

zoonósicas,

permitiendo

de

esta

manera la transmisión a nuestras mascotas.

VIII BIBLIOGRAFÍA 1. ATIAS A. Dr. 1998. Parasitología Mediterraneo. Chile. 119-128; 563- 564 p.

Médica.

2. BELLIGOTTI V. M.V. 2008. Giardiasis por Giardia lamblia. En línea. Consultado el 01/10/2010. Disponible en: 3. BERRUETA. URIBARREN T. DRA. 2010. Departamento de Microbiología y Parasitología, Facultad de Medicina, UNAM.. En línea. Consultado el 12/10/2011. Disponible en: 118 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

2011

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4. BIRCHARD S. D.V.M., M.S., DIPLOMATE, A.C.V.S.; SHERDING R. D.V.M., DIPLOMATE, A.C.V.I.M.; 1996. Manual Clínico de Pequeños animales. Interamericana Editores, S.A. México. vol 1-B: 829 p. 5. BOWMAN D. MS, P.H.D.; FOGARTY E.; 2003. Parasitología: Diagnósticos en perros y gatos. 1ª ed. Nestlé Purina Pet Care Company. Argentina. 12 14 p. 6. CASTRO MENDOZA I.; AGUILAR BOBADILLA J.; PÉREZ VILLANUEVA L.; 1996. Caninos y Felinos. 1ª ed. E&G Diseño. México. Vol 2: 51 - 54 p. 7. CRAIG E. GREENE, DVM, MS, DACVIM. 2008. Enfermedades infecciosas del perro y el gato. 3ª ed. Inter- Médica S.A.I.C.I. Buenos Aires. Vol 2: 808 – 816, 851- 854 p. 8. CONTRERAS G. MEVEPA. 2004. Giardiasis. En línea. Consultado el 02/10/2010. Disponible en: 9. CORDERO DEL CAMPILLO M.; ROJO VASQUEZ, F.; SANCHEZ ACEDO M.; HERNANDEZ RODRIGUEZ S.; NAVARRETE LOPEZ I.; et. al. 2002. Parasitología Veterinaria. 3ª ed. Mc Graw- Hill- Interamericana de España S.A.U. España. 620 - 623p. 119 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

2011

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10. DE LA ROSA M.; PRIETO PRIETO J. 2006. Microbiología en Ciencias de la Salud 2ª ed. Graficas Muriel S.A. España. 158-159 p. 11. DURÁN L. 2009. Las Amebas. En línea. Consultado el 29/09/2010. Disponible en: 12. FARRERAS VALENTI A. ROZMAN C. 2004. Medicina Interna. Elsevier S.A. España. Vol. 2: 2407- 2411 p. 13. FOREYT W. PH. D. 2001. Veterinary Parasitology. 5ª ed. Iowa State University Press, E.EU.U. 34 p. 14. GEORGI J., D.V.M., PH. D. 1994. Parasitología en clínica canina. 1a ed. Interamericana. México. 59-61, 72-85 p. 15. GOMES J.; CORTES J. A.; CUERVO S.; LOPEZ M. 2007. Amebiasis intestinal.. En línea. Consultado el 12/10/2011. Disponible en: 16. GUTIERREZ GALINDO F.; ORTUÑO ROMERO A.; CASTELLÁ ESPUNY J.; et al. 2006. Parasitología Clínica. Parasitosis digestiva del perro y del gato. Multimedica Ediciones Veterinarias. España. 3 – 4 – 11 p. 120 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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17. KONEMAN E.; ALLEN S. 2006 Diagnóstico Microbiológico Editorial Médica Panamericana. U.S.A. 127p 18. LEVINE N. 2003 Tratado de Parasitología Veterinaria. Acribia. España. 37p. 19. MALASPINA E. Dr. 2004. Guárico. Historia de las Amebas. En línea. Consultado el 29/09/2010. Disponible en: 20. MORAILLON R.; FOURRIER p.; LEGEAY Y.; LAPEIRE C. 1994. Diccionario Práctico de Terapéutica Canina y Felina. 3ª ed. Masson S.A. España. 106 p. 21. ODDO B. D. Infecciones por amebas de vida libre. 2006. Pontificia Universidad Católica de Chile. En línea. Consultado el 30/09/2010. Disponible en: 22. PATRICK TILLEY L. D.V.M.; SMITH F. (H) D.V.M.; MACMURRAY A.; 1998. Consulta Veterinaria en 5 minutos Canina y Felina. Inter-Médica S.A.I.C.I. Argentina. 103p.

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23. RODRIGUEZ R.; COLO GALERA L. 2007. Técnicas Diagnosticas en Parasitología. 2ª ed. Universidad Autonoma de Yucatan. México. 120p. 24. ROMERO CABELLO R.; HERRERA BENAVENTE F. 2002. Síndrome diarreico infeccioso. Medica panamericana S.A. México. 273, 285-286, 544 p. 25. SOULSBY J. L. 1982. Parasitología y Enfermedades Parasitarias en los animales domésticos. 7ª ed. México: Interamericana S.A. de C.V. México. 591 -596 p. 26. SUMANO H., OCAMPO L., CÁRDENAS P. 2004. Manual de Farmacología Clínica para Pequeñas Especies. Graphics. México. 218p. 27. SUAREZ M.; SANCHEZ T.; 2000-2004. Evaluación de coccidiosis en caninos registrados en el laboratorio clínico del Hospital Universitario de Veterinaria, en el quinquenio. En línea. Consultado el 12/08/2011 Disponible en: 28. UNAM. Facultad de Medicina Autónoma de México Parasitología En línea. Consultado el 27/09/2011. Disponible en: 122 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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IX ANEXOS Anexo N° 1 Cálculos de la Media aritmética, rango, varianza (S2), desviación típica (S)e intervalo de confianza (IC) por el grado de prevalencia de Giardiasis en hembras en las 4 áreas urbanas del cantón Cuenca.

N° Area

+

Area 1

7

Area 2

Giardia ++

+++

Negativo

2

1

230

2

1

0

157

Area 3

6

1

1

72

Area 4

2

1

0

77

∑Xi

17

5

2

536

i

4,25

1,25

0,5

134

Rango (R)

5,00

1,00

1,0

158

Varianza (S2)

6,92

0,25

0,3

5612,67

Desviación típica (S)

2,63

0,50

0,6

74,92

Intervalo de Confianza (IC) al 95%

2,28 µ

0,71 µ

0,18 µ

72,94 µ

6,22

1,79

0,82

195,06

Fórmula de la Media Aritmética 123 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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Positivo (+)

Fórmula del Rango R= Valor máximo – Valor mínimo Positivo (+) 7-2 = 5 Fórmula de la varianza

Positivo (+)

Fórmula de la desviación típica

Positivo (+) 124 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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Fórmula de la Desviación típica de la media

Positivo (+)

Fórmula del Intervalo de Confianza IC = (

- t 0,05 x S < µ > +

+ t 0,05 x S )

Positivo (+) IC = 4,25 - (3,182 x 0,62) 4,25 + (3,182 x 0,62) IC = 2,28 6,22 Anexo N° 2

Cálculos del Chi cuadrado de los casos positivos de niveles (+), (++), (+++) y negativos de Giardia canis en caninos machos y hembras de la ciudad de Cuenca. 125 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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Grado de infestación Positivos Negativos Total X² Cal.

Machos Oi Ei 27 25,5 533 534,5 560 560

Hembras oi ei 24 25,5 536 534,5 560 560

Total 51 1069 1120

X² Tabular 0,05 0,01 3,84 6,63

0,21NS

Formula de Chi Cuadrado (Xi2) X2= [(oi – ei) – 0,5]2+……………+ [(oi – ei) – 0,5]2 ei ei X2= [(27-25,5)-0,5]2+ [(24-25,5)-0,5]2+ [(533-534,5)-0,5]2 + [(536-534,5)0,5]2 25,5

25,5

534,5

534,5

X2= (0,04) + (0,16) + (0,01) + (0,002) X2= 0,21 Grados de libertad (g.l.) g.l. =(C-1) (H-1) (2-1)(2-1) 1*1 g.l. = 1 126 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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Anexo N° 3

Cálculos de la Prueba de Z del total de los casos positivos y negativos de Giardia registrados en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras de la ciudad de Cuenca.

N° Area Area 1 Area 2 Area 3 Area 4 Total

+ xi 14 7 12 4 37 9,25

Giardia ++ +++ xi xi 5 1 3 1 1 2 1 0 10 4 2,50 1,0

Negativo xi 460 309 145 155 1069 267

Fórmula de la Prueba de Z

Positivo (+) 1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras registrados en 3 rangos de edad que estén con Giardia canis y con una incidencia (+) mayor a 4. Z = 4 - 9,25 = -1,01 127 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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5,2 Area entre 0 y - 1,01 = 0,3438 1/2 Curva = 0,5000 Area entre 0 y - 1,01 = + 0,3438 0,8438 0,8438 x 100 =

84,38%

Número de casos del total de las muestras = 0,8438 * 9 = 7,6 = 8 casos Número de casos del total de la población = (100* 8)/1120 = 0,71 casos.

GRAFICO Nº 7. Porcentaje de la prueba de Z de Giardia canis en 3 rangos de edad en machos y hembras con grado de infestación bajo.

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El 84,38 % de los casos de los caninos de la ciudad de Cuenca esta con una curva de incidencia (+) mayor a 4 o sea 8 casos que representa el 0,71 casos que no llega a 1.

Anexo N° 4 AREAS Y SECTORES INVESTIGADOS AREAS MUESTRA

N° 1

N° 2

N° 3

N° 4

PUMAPUNGO

YANUNCAY

MIRAFLORES

TOMEBAMBA

480

320

160

160

Machangara Totoracocha San Blas

PARROQUIAS

Cañaribamba

Yanuncay

Bellavista

Huayna Cápac

San Sebastián

El Vecino

Monay

El Batán Sucre

El Sagrario Gil Ramírez D.

Fuente: Ministerio de Salud Pública.2008 Mapa de la distribución de las parroquias urbanas del cantón Cuenca PARROQUIAS DE LA CIUDAD DE CUENCA

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FUENTE: Ilustre Municipalidad de Cuenca. 2010

Anexo N° 5 FORMULARIO DE CAMPO UNIVERSIDAD DE CUENCA FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS ESCUELA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA N° DE MUESTRA

Nombre del propietario

Nombre del paciente

Área o Sector

Parroquia

Raza del paciente

Edad del paciente

Sexo del paciente

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Anexo N° 6 FORMULARIO DE LABORATORIO UNIVERSIDAD DE CUENCA FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS ESCUELA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA Giardia N° DE MUESTRA

POSITIVOS (+)

(++) (+++)

NEGATIVO

Ameba POSITIVOS (+)

(++) (+++)

NEGATIVO

Coccidia POSITIVOS

NEGATIVO

(+) (++) (+++)

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Anexo N° 7 PREPARACIÓN DE LA MUESTRA Paso 1 Preparación de la muestra con Agua Destilada y rotulación de los tubos

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Paso 2 Primera centrifugación con agua destilada

Paso 3 Eliminación del sobrenadante y recuperación del sedimento

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Paso 4 Preparación de la muestra con Sulfato de zinc

Paso 5 Segunda centrifugación con SO4Zn

Paso 6 134 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez

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Preparación de las placas con una gota de Lugol

Paso 7 Observación al microscopio

Anexo N° 8 Protozoos observados en la investigación.

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Quistes de Giardia canis

Quistes de Ameba spp.

Ooquiste sin esporular y ooquiste esporulado de Coccidia spp.

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