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La sangre y la salud Dr. Jose Mª Moraleda Departamento de Medicina 22, Marzo 2011
Frotis de sangre periférica normal
J M Moraleda Marzo 2011
Principios básicos
J M Moraleda Marzo 2011
Funciones de las células de la sangre
Hematíes
Plaquetas Leucocitos
Trasporte de Oxígeno
Defensa contra Infecciones J M Moraleda Marzo 2011
Evitar Hemorragias
Hematopoyesis Y
Y
Y
Producción y desarrollo de las células sanguíneas Objetivo: mantener un número estable de células a lo largo de toda la vida (homeostasis) Lugar: médula ósea espacios intertrabeculares de huesos axiales Y epífisis de huesos largos. Y
Y
Cambia a lo largo del desarrollo embrionario J M Moraleda Marzo 2011
Hematopoyesis. Lugares
Bm.jpg
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Hematopoyesis. Lugares
J M Moraleda Marzo 2011 Metcalf D. Stem cells. 2007;25:2390-2395
Hematopoyesis fetal y del adulto FETO
ADULTO Esqueleto Axial
Saco Yolk
Higado y Bazo
Huesos Largos
Meses
Años
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Esquema de la Hematopoyesis Granulocitos neutrófilos
Monocitos - macrófagos
C. Stem Mieloide C. Stem Pluripotente
Eosinófilos
Celula Stem Pluripotente
C. Stem Pluripotente
GLOBULOS ROJOS
PLAQUETAS
C. Stem Linfoide
Sistema inmune: Linfocitos B y T
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Hematopoyesis: Elementos Fundamentales 1. Células stem (células madre, tronco, germinales) 1. Células Stem à Progenitores H. à células maduras.
2. Micromedioambiente hematopoyético: Nicho + Células del estroma: Producen matriz extracelular y citocinas a) Matriz extracelular: Laminina, fibronectina, colágeno a) Laminina, fibronectina, colágeno (oporte físico de las células stem). b) Moléculas de adhesión (selectinas, integrinas)
b) Citocinas: producidas por c. del estroma, linfocitos y monocitos a) Factores de crecimiento: EPO, G-CSF, Trombopoyetina b) Interleucinas: IL-1, IL-3, IL-6, etc. J M Moraleda Marzo 2011
Microambiente Hematopoyético
Yin T. et al The Journal of Clinical Investigation, 2006
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Células Stem Hematopoyéticas Métodos de identificación
1. Los Trasplantes de MO 2. Cultivos de colonias “in vitro”: LTC-IC CFU-GM BFU-E
3. Anticuerpos monoclonales J M Moraleda Marzo 2011
Factores de Crecimiento Promueven la proliferación, diferenciación y maduración celular • Multipotenciales: – Stem-cell factor (c-kit), IL3, GM-CSF
• Monopotenciales: – Serie roja: Eritropoyetina (EPO) – Serie blanca: • Granulocitos: G-CSF • Monocitos: M-CSF
– Serie plaquetaria: Trombopoyetina J M Moraleda Marzo 2011
Hematopoyesis SCF FL G-CSF TPO IL-3 IL-6 IL-11
C. Madre Mieloide
FL TPO SCF
C. Madre Pluripotente
SCF FL IL-7
C. Madre Linfoide
G-CSF IL-11 IL-6
Pro-B
Pro-T
TPO IL-3 FL IL-3
CFU-Meg
BFU-E
SCF IL-3 GM-CSF
SCF IL-3 IL-9 GM-CSF
CFU-E TPO EPO IL-6 IL-11
Plaquet.
CFU-GM
Epo
G. Rojos
CFU-Eo
IL-3 IL-6 GM-CSF
CFU-G G-CSF
Neutrófilos
IL-5
CFU-Ba
IL-3
CFU-Mast SCF IL-3 IL-4
CFU-M
Pre-B
M-CSF
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Monocitos
Eosinóf.
Basófilos
Mastocitos
Pre-T
SCF IL-17
Célula B
IL-3
IL-1 IL-2 IL-4 IL-5 IL-6 IL-9 IL-12
C. Plasmáticas
IL-2 IL-6 IL-7 IL-8 IL-9 IL-12
Células T
Eritropoyesis • Proceso fisiológico de maduración de la serie roja en la M.O. • Representa 30 a 35% de la hematopoyésis.
• Tiempo de maduración de proeritoblasto a reticulocito: 5 - 7 días. • La Eritropoyetina es fundamental para la maduración J M Moraleda Marzo 2011
Eritropoyesis. Fisiopatología - Factor de crecimiento que se produce en las células peritubulares del riñon - Necesaria para la proliferación y maduración eritroide - En la patología renal se produce anemia como consecuencia de la falta de EPO - El exceso de EPO produce poliglobulia
Eritrocito = Hematíe = Globulo rojo Célula anucleada. Forma de disco biconcavo. Diámetro: 7,5-8 µm Espesor: 2 µm. Volúmen: 80 a 100 fL Alta flexibilidad y deformabilidad Estructura: Proteinas, lípidos, enzimas intracitoplasmáticas. Alto contenido de Hb, proteina especializada en el intercambio de gases (02 C02)
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Anemia. Signos clínicos
Coiloniquia
Palidez de piel y mucosas
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Queilitis, glositis, rágades
Granulopoyesis Mieloblasto Alta relación N/C, nucléolo No gránulos
Promielocito* Tiene nucléolo, granulos 1º (lisosomas)
Caracteristicas generales granulpoyesis • Disminución progresiva del tamaño • Aparición de gránulos (1ºs y después gránulos específicos) • Condensación y lobulación del núcleo
Mielocito neutrófilo Granulos específicos Nucleo oval, no nucleolo Neutrófilo madurol Metamielocito neutrófilo Nucleo indentado
Cayado / bastonado Nucleo condensado, Aún sin segmentaciones
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Maduración mieloide Mieloblasto
Promielocito
Mielocito
Metamielocito
MADURACION J M Moraleda Marzo 2011
Cayado
Segmentado
CINÉTICA Y DISTRIBUCIÓN GRANULOCITOS Pool medular mitótico: Mieloblastos (1 mitosis) Promielocitos (1-2 mitosis) Mielocitos (2 mitosis)
6 días
Pool medular postmitótico o madurativo: Metamielocitos Cayados Segmentados
6 días adicionales de permanencia en médula ósea
Pool periférico marginal Pool periférico circulante
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Trastornos de los leucocitos Infecciones
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Trastornos de los leucocitos Leucemias
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Trombopoyesis. Citocinas
J M Moraleda Marzo 2011 N Engl J Med 1998; 339:746-754
Trombopoyesis. Diferentes estadios
Promegacariocito Megacariocito basófilo Megacariocito granular y liberador de plaquetas.
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Trombopoyesis
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Trastornos de la Hemostasia
Gingivorragias
Hematomas
Purpura petequial
Equímosis
Hemorragia retiniana
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Hemartrosis
Linfopoyesis
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Trastornos de los linfocitos Linfomas
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El estudio de la sangre en el laboratorio J M Moraleda Marzo 2011
Extracción de sangre periférica
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Estudio de la sangre periférica l
Hemograma e índices hematimétricos
l
Frotis sanguíneo
l
Reticulocitos
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Hemograma. Contador automático
Hemograma automatizado
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Serie roja. Indices hematimétricos Número de glóbulos rojos: 5.5 ±1, 4.8 ± 1 x1012/l Hematócrito (Hct): 0.47 ±0.07, 0.42 ±0.05 - l/l (%) Hemoglobina (Hb): 15±2.5, 14 ±2.5 - g/dl Volumen Corpuscular medio (VCM) – Volumen medio de los GR: Hcto/GR: 80 -100 fl • Hemoglobina Corpuscular media (HCM) – Hb media en GR: Hb/GR: 28-32 pg/l • Concentración HB corpuscular media (CHCM) – Síntesis de Hb dentro del GR: Hb/Hcto: 30-36 - g/dl • Anchura distribución de GR (ADE) – Indice de variación del tamaño: 13 • • • •
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Anemia microcítica
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Serie blanca. Leucocitos l
Fórmula leucocitaria: Proporción de cada subtipo al contar 100 leucocitos en la sangre periférica
l
Nº absoluto: % celulas x total leucocitos (es más importante que la fórmula)
l
Rango de referencia – basados en poblacion normal de edad, sexo y etnia similar J M Moraleda Marzo 2011
Hemograma. Valores normales de leucocitos Leucocitos: 4500 - 11500 / mL = 4,5 - 11,5 x 109/ L
Leucocitos Neutrofilos Linfocitos Monocitos Eosinofilos Basofilos
%
Nº Absoluto mL
Rango mL
100 50 – 70 20 – 45 4 – 10 1–4 0–1
7500 4500 3000 500 300 80
4500 - 11500 2500 - 7500 1300 - 4000 150 - 800 50 - 600 10 - 150
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Frotis de sangre periférica
A. Hematíes; B. Linfocito grande granular; C. Leucocito Neutrófilo; D. Eosinófilo; E. Segmentado; F. Monocito; G. Plaquetas; H. Linfocito; I. Cayado; J. Basofilo J M Moraleda Marzo 2011
Frotis de sangre periférica normal
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Interpretación de frotis sp (GR) A. Normal B. Micro/hipo C. Macrocito D. Dianocito E. Esferocito F. Heinz G. Esquizocito H. Eritroblasto I. Policromat J. Dacriocito
A
B
C
D
E
F
G
H
I
J J M Moraleda Marzo 2011
Anemia microcitica hipocrómica (deficiencia de Fe)
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Esferocitosis Hereditaria /AHAI
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Drepanocitosis
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Infección por Plasmodium (Malaria)
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Reticulocitos Tinción de azul cresilo
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Otras pruebas de sangre para el estudio de las anemias J M Moraleda Marzo 2011
Metabolismo del Hierro Sideremia y Capacidad total de fijación del Hierro Capacidad Total
= Transferrina No Saturada + Sideremia
Fijación de Hierro
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Hemosiderina en orina Tinción de Perls
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origen
A2
C
S
F
NORMAL HB S HB C Talasemia Maior Talasemia Minor NORMAL
ELECTROFORESIS DE HEMOGLOBINAS J M Moraleda Marzo 2011
A
+
Electroforesis de Hemoglobinas Gel de agarosa
Hb A Hb F Hb S Hb C
HbA
HbA
HbA
HbF
HbS
HbS
HbC
HbC
HbA
HbF HbS
HbA
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HbA
HbS
HbS
HbC
Test de Coombs directo Anemia Hemolítica Autoinmune
GR PACIENTE (cubiertos con Ig)
SUERO DE COOMBS (anti-Ig humana) J M Moraleda Marzo 2011
PRUEBA POSITIVA (aglutinación)
Estudio de la médula ósea
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Evaluación de la MO – Morfología convencional • Forma y estructura elemental de la célula – Citoquímica: • Basada en la identificación de componentes celulares en el citoplasma o el núcleo mediante reacciones químicas específicas. – Inmunofenotipo • Se basa en la identificación mediante anticuerpos monoclonales de moléculas en la membrana o el citoplasma celular – Citogenética • Estudio de los cromosomas – Estudios de biología molecular • Identificación de anomalías en los genes y/o las proteínas J M Moraleda Marzo 2011
Aspirado y biopsia de Médula ósea
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Aspirado de médula ósea Normal
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Aspirado de médula ósea infección por Leishmania
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Biopsia de médula ósea
La BMO permite estudiar arquitectura medular y el micromedioambiente J M Moraleda Marzo 2011
Hipocelular Anemia aplásica
Normal
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Hipercelular Neoplasias SMD SMP Deficit B12 Hemólisis Otros
Médula ósea citoquímica
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Aspirado MO. Tinción de Perls (para ver depositos de hierro – en azul-)
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Aspirado MO. Tinción esterasas Leucemia monocítica
Blastos + (en rojo)
Control negativo
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Médula ósea Inmunofenotípo
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Inmunofenotipo Citometría de flujo
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Inmunofenotipo. Citometría de flujo. Leucemia aguda
0
256
512
768
1024
FSC-H -> RABADAN SP.011
10 0
10 1
10 2
CD15-FITC -> RABADAN SP.005
10 0
10 1
10 2
10 3
10 4
10 4
0 10 JM
1
2
3
10 10 Moraleda Marzo10 2011
HLA.DR-FITC -> RABADAN SP.007
10 1
10 2
10 3
10 4
CD33-PE -> RABADAN SP.005
CD11b-FITC -> RABADAN SP.011
10 3
10 0
10 4
10 0
10 1
10 2
10 3
10 4
MPO-PE -> RABADAN SP_SUP+CITO.003
Médula ósea Citogenética y Biología molecular J M Moraleda Marzo 2011
Aspirado MO. Estudio citogenético Leucemia mieloide crónica t(9;22)
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Citogenética Citogenética molecular
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¿Qué impacto tiene la biotecnología….? Biomarcadores y estudios de Microarray
• La colección de genes alterados constituye una firma molecular • Mediante el uso de estas firmas es posible: – clasificar molecularmente los tumores – estratificar los pacientes en grupos:pronóstico, mayor o menor susceptibilidad a fármacos, etc. J M Moraleda Marzo 2011
Perfiles de expresión génica por microarrays
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Otras pruebas utilizadas en Hematología J M Moraleda Marzo 2011
Imágenes de Radiografía simple
Rx de tórax de un paciente con Linfoma de Hodgkin
Imágenes líticas en un Mieloma múltiple
Imágenes de TC
TAC craneal con imagen infiltrativa
TAC abdominall con imagen infiltrativa
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Imágenes de PET
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Técnicas de Aféresis celular
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Características de las Células Madre Hematopoyéticas 1. Auto-replicación 2. Diferenciación en las tres líneas hematopoyéticas 3. Capacidad de reconstituir la hematopoyesis e inmunidad a largo plazo J M Moraleda Marzo 2011
Antígenos de membrana de la célula Stem CD133
VLA
CD34
CD177
CXCR4
Célula Stem
Moléculas de superficie que pueden servirnos para identificar la célula stem y seleccionarla. – Ac monoclonales:
• Anti CD34 • Anti CD117 • Anti CD133
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Fuentes de células stem. Médula ósea
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Fuentes de Células Stem. Sangre periférica S t e m
FR
a
CS
Pr
as e t o
G-
4
kit
RC CX ti ec
SDF-1
na
kitL
on br
VC AM -1
IL-8
Fi
VLA -4
Flt3-L
Matriz extracelular J M Moraleda Marzo 2011
G-CSF
Fuentes de Células Stem. Cordón Umbilical
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Máquinas de aféresis
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• Células mononucleadas • Plaquetas • Granulocitos • Plasmaféresis
Nuevos Tratamientos
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Trasplante de Medula ósea PH: Medula ósea, SP, CU
INFUSION Donante Inmunosupresion
Paciente Quimioterapia
Radioterapia
Metotrexate Ciclosporina
APLASIA ACONDICIONAMIENTO INJERTO J M Moraleda Marzo 2011
Terapia dirigida o Terapia de “dianas” CD19
slg
CD20
DR
CD22
Linfocito B
Proteínas de superficie posibles dianas para IT: – Anticuerpos monoclonales (Ac) desnudos
– Ac conjugados • radioisótopos • drogas • toxinas
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Press O, et al. Cancer J Sci Am. 1998:4(suppl 2):s19–s26.
Rituximab: Ac monoclonal quimérico Ratón / Humano Región variable de ratón, se une específicamente al Ag CD20 en las células B
Región constante k de origen humano
Región Fc de la IgG1 de origen humano que trabaja en sinergia con mecanismos efectores
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Anticuerpos Monoclonales Radiomarcados Anticuerpos no marcados
Anticuerpos radioactivos
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Cromosoma 9
Cromosoma 9 Cromosoma Filadelfia
Cromosoma 22 Gen Bcr
Translocación
Gen fusión Bcr-Abl
Gen Abl
PROGENITOR HEMOPOYÉTICO TRANSFORMADO
Proteína de fusión Bcr-Abl
Transcripción del gen de fusión Bcr-Abl
RNAm Bcr-Abl
Región Tirosín quinasa
Proteína de fusión Bcr-Abl
Unión DNA
Adhesión celular anómala Supervivencia celular prolongada Proliferación celular descontrolada
Cromosoma Filadelfia Fisiopatología de la LMC
STI: Mecanismo de Acción Estructura química del STI571
Substrato Fosforilación
Proteína Bcr-Abl
STI571 Substrato No fosforilación
Unión al sitio de unión de ATP
Transformación maligna
Proteína Bcr-Abl
Molly Nash fue trasplantada con las células de la sangre del cordón umbilical de su hermano seleccionado tras diagnóstico preimplantacional No AF P = 3/4
Posible donante P = 1/16
HLA compatible P = 1/4
Preimplantation Diagnosis for Fanconi Anemia Combined with HLA Matching. Verlinsky et al. JAMA, 285:3130, 2001. J M Moraleda Marzo 2011 27
Futuro Þ Podríamos usar una simple firma molecular para asignar el riesgo y poner el tratamiento? Þ El uso de la Terapia celular. Medicina Regenerativa
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Plataformas de microarrays
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El futuro: Terapia celular. Medicina Regenerativa
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Terapia celular en el miocardio 1. Obtención Células Stem Hematopoyéticas
2. Selección de Poblaciones
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3. Implante intracardíaaco
Terapia celular en SNC Celulas Madre Hematopoyeticas Neuroesfera Celulas Madre Neurales
in vitro proliferacion
SVZ
VZ
migracion
in vivo Células Neurales: Neuronas Astroglía J M Moraleda Marzo 2011 Oligodendroglía
Diferenciación Madur-Func.
Programa de TPH y Terapia celular HUVA
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Programa TPH • Primer Alo-TPH el 2/5/07 • Desde entonces (a 31/12/10): Pacientes
Tipo de Trasplante
Niños
Adultos
Alogénico
32
31
63
Autólogo
16
96
112
TOTAL
48
127
175
TOTAL
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Terapia celular • Ensayo ELA finalizado • Ensayos isquemia crítica (D/noD) • Ensayo membrana amniótica y heridas • Terapia celular en Traumatología • Terapia celular en Odontología Becas y Proyectos. Curso U.Mar en Mazarrón Pacientes Tipo de Ensayo
Realizados
Pendientes
ELA
11
0
11
Isquemia crítica EEII
2
18
20
Heridas y membrana amniotica
2
8
10
TOTAL
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GRACIAS POR SU ATENCIÓN MUCHAS GRACIAS POR SU ATENCIÓN
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