Manejo anestésico de fauna silvestre.

Silvia Villaverde Morcillo Veterinaria de Fauna Silvestre

INTRODUCCIÓN • Importancia del manejo peri operatorio «Todo acto anestésico supone una agresión sobre el equilibrio fisiológico y bioquímico de un ser vivo»

Cirugía

Procesos patológicos

Anestesia

Estrés quirúrgico

INTRODUCCIÓN • Factores de estrés: relacionados o independientes • Si suma de factores de estrés > capacidad de respuesta compensadora del paciente → se comprometerá la supervivencia del mismo • Sólo deberían anestesiarse aquellos pacientes cuyos posibles perjuicios debido a dicho acto médico sean superados por los beneficios

MORTALIDAD/MORBILIDAD • MORTALIDAD ANESTÉSICA: Fallecimiento que se presenta antes de la recuperación completa de los efectos del fármaco/s administrados o que se presenta como un accidente cuando todavía el paciente se encuentra bajo los efectos de los fármacos. Esta mortalidad puede estar ligada o no a la anestesia.

• MORBILIDAD ANESTÉSICA: Consecuencia inesperada e indeseable de la administración anestésica  MENOR: alteraciones moderadas, no causan modificaciones permanentes ni alargan su estancia en el centro  MEDIA: alteraciones importantes con posible alargamiento de la estancia  MAYOR: alteraciones graves con secuelas permanentes Clasificación establecida en el Symposium Internacional de el asa, Boston 1984

VALORACIÓN PREANESTÉSICA

Ausencia de historia previa

Examen detallado y completo del paciente

Clasificación del nivel de riesgo

INTRODUCCIÓN • EVALUACIÓN CLÍNICA

Evaluación general del paciente

Hematología

Bioquímica

VALORACIÓN PREANESTÉSICA • EVALUACIÓN DEL ESTADO NUTRICIONAL ↓niveles glucógeno

Déficit nutricional

• Capacidad limitada de superar el estrés • Liberación corticosterona plasmática glicopenia

↓niveles de calcio

↑riesgo en el manejo

• ↓Calidad del hueso • Corticales mas finas y frágiles • ↓contractibilidad muscular

• Peor capacidad de respuesta frente al estrés • Fracturas iatrogénicas • ↓temperatura corporal

VALORACIÓN PREANESTÉSICA –HEMATOLOGÍA Hemograma completo Hematocrito Proteínas totales Bajo coste Máxima información

VALORACIÓN PREANESTÉSICA –BIOQUÍMICA

Función hepática

Función renal

Otras patologías

• Agentes anestésicos detoxicados por el hígado • Daño muscular o hemólisis en la muestra pueden alterar los resultados

• Eliminación productos de desecho y homeostasis • Difícil medir valores en orina • Ac. Úrico plasmático muy variable depende, estudio continuado

• Proteinogramas, detección de procesos infecciosos • Presencia de hemoparásitos (filarias y microfilarias)

VALORACIÓN PREANESTÉSICA • EVALUACIÓN DE LA FUNCIÓN CARDIOPULMONAR  Vital importancia para la evaluación de riesgos  Traumatismos, suelen llevar asociado alteraciones que suponen una disminución en la capacidad pulmonar y de sacos aéreos

Frecuencia cardiaca

Calidad del pulso

Presión arterial

(Doppler)

Calidad de la perfusión tisular

(no invasiva)

(pulsioximetría)

Frecuencia respiratoria

Calidad flujo de aire en vías respiratorias

CLASIFICACIÓN ASA • ¿Qué es? – Herramienta internacional de clasificación de los pacientes según su riesgo, estandarizado por la American Society of Anesthesiology, 1963. – Establece cinco clases

CLASE

DESCRIPCIÓN

CLASE I

Sin alteraciones orgánicas, fisiológicas, bioquímicas o psicológicas en un paciente para el que se ha programado un procedimiento que involucra un proceso patológico localizado.

CLASE II

Enfermedad sistémica de leve a moderada. Procesos patológicos compensados; pacientes que no muestra signos clínicos.

CLASE III

Alteraciones sistémicas graves; Procesos patológicos no compensados.

CLASE IV CLASE V CLASE E

Alteraciones sistémicas que ponen en peligro la vida. Paciente en shock, no se espera que sobreviva más de 24h. Operación de emergencia. La E se puede añadir a cualquiera de las clasificaciones anteriores.

CLASIFICACIÓN ASA • Clasificación en especies domésticas • ¿Valida para fauna silvestre? • Factores específicos de la fauna silvestre – ↑ en el estrés – ↑ presencia traumatismo – ASA I-II poco frecuentes – Normalmente ASA IV acompañados por la E

ANESTESIA AVES SILVESTRES • Una anestesia segura y eficaz requiere: – Conocimiento de la fisiología de la especie a anestesiar – Conocimiento de los diferentes tipos de anestésicos, sus propiedades y modo de empleo – Estabilización y soporte del paciente – Equipo apropiado – Práctica

ANESTESIA AVES SILVESTRES • FISIOLOGÍA AVIAR  Características del sistema respiratorio

o Sacos aéreos I. II. III. IV.

Avasculares, no hay intercambio gaseoso Actúan en termorregulación y humidificación del aire Reducen y distribuyen el peso en el vuelo Constituyen una reserva de gases

o Doble ciclo respiratorio o Huesos neumatizados o Características fisioanatómicas de los pulmones I. II.

Poco distensibles Localizados en la pared dorsal

o Localización glotis y anatomía de la traquea

ANESTESIA AVES SILVESTRES

ANESTESIA AVES SILVESTRES • FISIOLOGÍA AVIAR Fisiología cardiovascular o Frecuencia cardiaca, gran variedad entre especies o Elevado gasto cardiaco o Presión arterial I. Control no muy estudiado II. Valores mas elevados que en mamíferos

ANESTESIA AVES SILVESTRES CARACTERÍSTICAS ANATOMOFISIOLÓGICAS  Espacio muerto elevado (x4,5 comparación con los mamíferos)  Tráquea no distensible  Intercambio gaseoso en parabronquios y capilares aéreos  Inspiración y espiración activas o o o

No hay diafragma Flujo del aire facilitada por la musculatura respiratoria Flujo continuo de gas en capilares desde los sacos aéreos

 Posición dorsal de los pulmones  Decubito supino dificulta la ventilación o o

Visceras abdominales bloquean el ostium y comprimen sacos aéreos caudales Se produce una disminución en el volumen corriente y la ventilación pulmonar

CONSECUENCIAS ANESTESICAS  Mayor necesidad de flujo de O2  Uso de tubos endotraqueales sin balón  Intercambio gaseoso muy eficiente

 Posibles sobredosificaciones  Recuperaciones prolongadas por efecto acumulativo en sacos aéreos: menor renovación del aire  Menor tolerancia a apneas e hipoxias

MONITORIZACIÓN  Objetivos de la monitorización: 1) Conocer el estado del paciente durante la anestesia 2) Controlar el plano anestésico

MONITORIZACIÓN MONITORIZACIÓN CARDIACA ECG DOPPLER MONITORIZACIÓN RESPIRATORIA Visualización movimientos respiratorios

Auscultación directa de flujo de aire / Capnometría

OXIGENACIÓN Y PERFUSIÓN SANGUÍNEA Pulsioximetría TEMPERATURA Termómetro REFLEJOS Escala analógica visual

ANESTÉSICOS VIAS DE ADMINISTRACIÓN o Vía endovenosa, vena cefálica o vena tarsiana o Vía intraósea No muy popular Requiere menos equipación Fácil realizar en el campo Menos contaminante No exposición del personal al anestésico

ANESTÉSICOS  Parasimpaticolíticos • Historia previa de bradiarritmia • No en uso rutinario  Ketamina • Amplio margen de seguridad • Inducción rápida • Respuesta variable entre individuos • Mantiene estables FR/FC • Procedimientos cortos/cirugía menor/premedicación • Excitación en recuperación

ANESTÉSICOS  Xilacina + Ketamina ó Ketamina + medetomidina • Protocolos que proporcionan analgesia • Buenas inducción y recuperación • No para todas las especies • Antagonización  Propofol • Gran incidencia de apneas • Buenos resultados en acuáticas

ANESTÉSICOS o Vía inhalada La mas empleada Requiere equipos específicos/circuitos Intubación traqueal o en saco aéreo No proporciona analgesia Pueden darse cambios bruscos de plano Tener en cuenta las particularidades de las aves y de las diferentes especies (acuáticas) ISOFLUORANO SEVOFLUORANO DESFLUORANO

ANALGESIA FISIOLOGIA DEL DOLOR o No muy conocida en aves o Asignatura pendiente  Reconocimiento del dolor o Bases de la analgesia, modulación respuesta endógena frente al dolor o Presencia de dolor afecta a la homeostasis y a la cicatrización de los tejidos

ANALGESIA

FÁRMACOS ANALGÉSICOS

FACTORES AMBIENTALES

ANALGESIA TIPOS DE ANALGESIA o ANALGESIA PREVENTIVA O ANALGESIA EQUILIBRADA  Administrada antes de la cirugía, evita la sensibilización central  Si hay una lesión previa, administrar lo antes posible  Disminuye los requerimientos de anestesia  Al combinar varios fármacos disminuimos las dosis y los riesgos de sobredosificación

ANALGESIA OPIOIDES o Acción sobre receptores del SNC y SN periférico o Receptores µ, δ, y κ o En la bibliografía encontramos opiniones diversas o Buprenorfina, • Sobre receptores µ, tambien sobre los κ • ↓ CAM • Solo para dolor moderado

o Butorfanol, • Puede producir bradicardia/bradipnea • Agonista receptores κ • Últimos estudios sugieren una duración en sangre de 20’

o Fentanilo, • En los estudios realizados no se ha encontrado diferencias entre administras fentanilo o suero salino

ANALGESIA AINES o Inhiben ciclooxigenasa y previenen producción de prostaglandinas o Farmacocinética no puede ser extrapolada entre especies y no es buena indicadora de la acción analgésica de los AINES o Útil en periodo postoperatorio o Ojo con nefrotixicidad o Meloxicam (0,5-1mg/kg q 12h) • Oral or IM, oral tiene menos biodisponibilidad • No se han descrito efectos adversos

o Carprofeno (2mg/kg q 12h) • No está suficientemente estudiado

o Ketoprofeno • Se ha descrito necrosis tubular renal

ANALGESIA CORTICOSTEROIDES o Reducen el dolor mediante supresión en la respuesta inflamatoria o Alteran la acción de opioides tanto endógenos como exógenos o Inmunosupresión o Extremar precauciones al emplearlos

PRIMEROS AUXILIOS  Emergencias durante la anestesia o Parada cardiorrespiratoria • Retirar anestésico • Vaciar los sacos aéreos • Ventilación forzada a través de tubo endotraqueal o en saco aéreo (30-60 v/min) CUIDADO CON EL EXCESO DE PRESIÓN • Doxapram 20mg/kg IM o directamente en lengua • Masaje torácico (60 compresiones/min) • Adrenalina 0,1mg/kg, dilución 1:10 • Si hay bradicardia Atropina 0,04-0,1mg/kg • Asegurar aporte de calor

REPTILES

Anestesia en reptiles. • Características fisiológicas particulares • Poiquilotermia • Corazón tricavitario, excepto cocodrilianos • Sistema porta-renal • Adaptaciones físicas específicas

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Anestesia en reptiles.

• • • • •

Características fisiológicas particulares Poiquilotermia Corazón tricavitario, excepto cocodrilianos Sistema porta-renal Adaptaciones físicas específicas

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Anatomía respiratoria •

Glotis • En la base de la lengua: intubación sencilla • Quelonios: lengua es más gruesa que dificulta la intubación • Cocodrilos: epiglotis desarrollada y disponen del pliegue gular que debe ser deprimido para permitir la intubación

•

Tráquea • Saurios y los ofidios: anillos traqueales incompletos • Cocodrilos y quelonios: anillos completos • Quelonios: traquea pequeña que se bifurca al entrar en la cavidad celómica. 35

Administración de sustancias • Intramuscular – en extremidades anteriores o posteriores. – Ofidios, a lo largo de los paquetes musculares, preferentemente de los dorsales.

• Intravenosa

IM, extremidad posterior

– Ofidios, vena ventral de la cola, o por punción intracardiaca – Quelonios y saurios: venas yugular, dorsal de la cola, femoral y longitudinal del caparazón IV, dorsal de la cola

IC

IV, dorsal de la cola

IV, yugular

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Administración de Fármacos

• Intraósea – En tortugas y lagartos, en húmero y fémur, en tortugas además en puente del caparazón

• Intracelómica

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Inducción Anestésica Fases de la inducción anestésica en reptiles: • • • • • •

Excitación. Pérdida del reflejo de enderezamiento. Relajación muscular. Pérdida del reflejo de retirada. Reflejo de la membrana nictitante, en las especies que la tienen, se mantiene.. Disminución de la frecuencia cardiaca, nunca por debajo del 80%.

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Inducción Anestésica e Intubación •

Inducción – Con mascarilla con isofluorano, halotano y sevofluorano – Reptiles acuáticos y semiacuáticos son capaces de permanecer en apnea largos periodos de tiempo: se emplean sedantes inyectados

•

Intubación – La glotis se situa en la base de la lengua. – Dificultades: Abrir el pico de los quelonios, – En tortugas y cocodrilos los anillos traqueales son completos

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Mantenimiento • Anestésico de elección – Isoflurano 1-2%

• Flujo de O2 – 5kg , sistema con absorción de CO2, 2-4 l/min para inducir, y 1-2 l/min para mantener

• Ventilación  Frecuencia respiratoria normal 10-20 resp/min  En ventilación asistida: 2-6 resp/min, presión pico < 12 cm H2O 41

Recuperación • Según anestésico – Isoflurano: 20-30 min para intervenciones de REPETICIÓN DE DOSIS => RECUPERACIONES POTENCIALMENTE L A R G A S

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Fármacos • Inducción parenteral – Propofol – Tiopental sódico – Alfaxalona (Alfaxan ©)

• Inducción Inhalatoria – Administración de anestésico en cámara de inducción – Tras la perdida del reflejo de estación se continua con mascarilla 48

Mantenimiento anestésico • La anestesia inhalatoria presenta ventajas fundamentales – Control dinámico de la profundidad anestésica – Recuperación rápida en caso de complicaciones

• Necesitamos – Intubar – Maquina y circuito anestésico – Monitorizar

• Mantenimiento de la TEMPERATURA – Mantas eléctricas (Ojo) – Agua circulante – Aire caliente 49

Monitorizar • El control e integración de – Parámetros circulatorios – Cardiacos – Respiratorios – Tª

• Nos permite “ver” como está de “deprimido” el paciente y actuar en consecuencia

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Recuperación • De anestesia “Parenteral” – Generalmente mas largas. Hay que esperar que el paciente filtre y elimine los fármacos administrados – Algunos tienen antagonistas • Atipamezol – Alfa-2agonistas adrenergicos

• De anestesia Inhalatoria – Es rápida. Pocos minutos despues de cerrar el vaporizador, el animal ha expulsado el anestesico via respiratoria 51

ANESTESIA EN UNGULADOS SALVAJES. • • • • • •

Especies : ciervos, corzos, kudús, arruís… Extremadamente sensibles al estrés. Difícil aproximarse a ellos. Cocean. Miopatía de captura. Fallo cardíaco.

ANESTESIA EN UNGULADOS SALVAJES. • MIOPATÍA DE CAPTURA. – Patofisiología, • Distrofia muscular.

• Rabdomíolisis • Enfermedad del músculo blanco. • Aumenta el ac. Láctico • Deplección del Ca y K intracelular. • Daño tisular = mioglobina a torrente sanguíneo = fallo renal.

ANESTESIA EN UNGULADOS SALVAJES. • • • • • •

PREVENCIÓN DE LA MIOPATÍA DE CAPTURA. Evitar tiempos de captura prolongados. No sobredosificar si usamos opioides. Reducir el manejo al mínimo. Zona de recuperación tranquila y en penumbra. No repetir el manejo del animal en, al menos, 1 semana. • No manejar hembras preñadas o lactantes. • Aportar Selenio y complejo vit B.

ANESTESIA EN UNGULADOS SALVAJES. • La técnica de inmobilización mas frecuente es mediante dardos. • Se usan drogas potentes y de acción rápida. • Importante conocer el tiempo del que disponemos, cuando se trabaja en el campo.

ANESTESIA EN UNGULADOS SALVAJES Farmacos

Induccion(min)

Duracion(min)

Antagonistas

Opioides: *Etorfina *Fentanilo *Carfentanil

2.0-12.0 3.0-5.0 2.0-10.0

360-480 60-120 360-600

Diprenorfina Diprenorfina Naltrexona

Ciclohexaminas *Ketamina *Zoletill®

2.0-5.0 1.5-4.0

45-120 180-300

Ninguno

Alpha-agonistas *Xylacina *Medetomidina *Detomidina

10.0-15.0 2.0-8.0 2.0-10.0

120-240 120-240 120-360

Yohimbina Atipamezol Atipamezol

Fenotiacinas *Acepromacina

10.0-20.0

240-480

Ninguno

Benzodiacepinas *Diacepam *Midazolan *Zolazepam

1.0-2.0 1.0-2.0 (comb. con Tiletamina)

60-120 60-120

Flumazenil Flumazenil Flumazenil

CUIDADOS POST ANESTÉSICOS • • • • •

Tan importantes como los realizados antes y durante Vigilar: hipotermia, hipertermia, lesiones traumáticas Importante máxima tranquilidad, sin ruidos Mantener la analgesia No precipitarse a la hora de ofrecer comida/bebida

RESUMEN • Claves de una anestesia segura en fauna silvestre – Conocimientos fisiología de cada especie – Buena evaluación preanestésica – Vigilancia constante y cercana durante y después de la anestesia – Mantener equilibrio entre estrés y manejo