QUANTA LiteTM H. pylori IgG

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Para Diagnóstico In Vitro Complejidad de CLIA: Alto

Aplicación QUANTA LiteTM H. pylori IgG es un ensayo basado en la técnica ELISA (Enzyme-Linked Immunosorbent Assay) para la detección semi cuantitativa de anticuerpos anti-H. pylori (Helicobacter pylori) IgG en suero humano. La presencia de anticuerpos anti-H. pylori IgG puede ser utilizada en conjunción con hallazgos clínicos y otras pruebas de laboratorio como ayuda en el diagnóstico de las infecciones de H. pylori en pacientes adultos con evidencias y síntomas clínicos de enfermedad gastrointestinal.

Sumario y Explicación de la prueba La relación causal entre las infecciones de H. pylori y la úlcera péptica ha sido bien establecida desde que se planteó por primera vez en 1983.1 Las infecciones de H. pylori aparecen en más del 95% de los pacientes con úlceras duodenales, en un 80% de los pacientes con úlceras gástricas, y está asociada con el carcinoma y el linfoma gástricos.2-5 La erradicación del H. pylori reduce la reaparición de las úlceras.2-5 Se ha recomendado el tratamiento de las infecciones de H. pylori en los pacientes con úlcera duodenal o gástrica y, más recientemente, para la dispepsia funcional.5,6 La diagnosis de las infecciones de H. pylori incluye tanto métodos invasivos como no invasivos. Los tests invasivos incluyen la endoscopia para la observación directa de la mucosa gástrica antral y para obtener biopsias para el test de ureasa, tinciones histológicas (Warthin-Starry) y cultivos.5,7 Los cultivos se consideran la regla de oro; sin embargo, se trata del método menos sensible (sensibilidad del 70-80%). Los tests histológicos y de ureasa tienen una sensibilidad y especificidad por encima del 90%.5 Las principales desventajas de los métodos invasivos son el riesgo y la incomodidad que implican para el paciente, su elevado coste, y la aparición de falsos negativos debida a la distribución irregular del H. pylori en el estómago. Los tests no invasivos incluyen la espirometría utilizando urea marcada en el 14C o 13C, y los tests serológicos. La espirometría es sensible y específica, pero más costosa. La serología constituye una alternativa más barata, sensible y específica a los procedimientos invasivos y/o costosos como la endoscopia y la espirometría con urea marcada en el 14C.2,3,5,8,9 El kit QUANTA LiteTM H. pylori IgG es parte de la familia de kits ELISA de QUANTA LiteTM. Los ensayos ELISA para la detección de los anticuerpos anti-H. pylori han demostrado ser sensibles y específicos.

Procedimiento de trabajo Los pocillos de la microplaca contienen antígeno H. pylori IgG altamente purificado que se ha unido en condiciones que mantienen su estado nativo. Se añaden controles y muestras convenientemente diluidas en pocillos separados, uniéndose durante la incubación los anticuerpos anti H. pylori IgG al antígeno que los recubre. El resto de componentes no unidos se elimina mediante lavado y se añade conjugado anti IgG humana a cada pocillo. Un segundo paso de incubación permite que el conjugado se una a los anticuerpos presentes. Tras un lavado que elimina el conjugado sobrante, se añade un sustrato cromogénico y tras incubación la actividad enzimática presente en el pocillo es proporcional a la intensidad de color desarrollado. El ensayo puede ser evaluado fotométricamente comparando la intensidad de color en las muestras con la de los controles.

Reactivos 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9.

Microplaca ELISA de poliestireno con pocillos recubiertos con antígeno H. pylori IgG purificado (12-1 x 8 pocillos), envasada en su soporte en una bolsa de aluminio con desecante Control negativo ELISA, 1 frasco de tampón conteniendo conservante y suero humano ausente de anticuerpos humanos anti H. pylori IgG, prediluido, 1.2 ml Control ELISA H. pylori IgG Positivo Débil, 1 frasco de tampón conteniendo conservante y suero humano con anticuerpos anti H. pylori IgG, prediluido, 1.2 ml Control ELISA H. pylori IgG Positivo Fuerte, 1 frasco de tampón conteniendo conservante y suero humano con anticuerpos anti H. pylori IgG, prediluido, 1.2 ml Diluyente de Muestra HRP, 1 frasco color rosado conteniendo tampón con Tris, Tween 20 y conservante, 50 ml Solución de Lavado Concentrada HRP, 1 frasco de concentrado 40x color rojo conteniendo tampón con Tris y Tween 20, 25ml. Referirse a la Sección “Metodología” para instrucciones de dilución. Conjugado HRP IgG, con anti- IgG humana de cabra, 1 frasco - color azul conteniendo tampón, estabilizante de proteína y conservante, 10ml Cromógeno TMB, 1 frasco conteniendo estabilizantes, 10ml Solución de Parada HRP, Acido Sulfúrico 0.344 M, 1 frasco, incolora, 10 ml

Advertencias 1. 2.

Aviso: Este producto contiene cloramfenicol al 0.02% en el Diluyente de muestras, controles y conjugado considerado en el estado de California como causante de cáncer. Todo material de origen humano usado en la preparación de los controles para este producto se ha examinado resultando negativo para anticuerpos contra HIV, HbsAg, y HCV por métodos aprobados por la FDA. Ningún método puede sin embargo ofrecer garantía completa que HIV, HBS, HCV o otros agentes contagiosos estén ausentes. Por lo tanto, los controles H. pylori IgG ELISA positivo fuerte, H. pylori IgG ELISA positivo débil y ELISA negativo deben manejarse como si fueran material potencialmente contagioso.10 1

3.

4. 5. 6.

7. 8.

Dado que se utiliza azida sódica como conservante, este producto puede ser tóxico por ingestión o absorción a través de piel o mucosas. La azida sódica puede reaccionar con el plomo o cobre de las tuberías para formar azidas metálicas potencialmente explosivas. Si se utilizan desagües para la eliminación de reactivos se recomienda lavarlos con abundante agua para prevenir la formación de dichas azidas metálicas. El Conjugado HRP contiene diluido un producto químico venenoso y corrosivo que puede ser tóxico si se ingiere. Para impedir quemaduras, evitar el contacto con piel o ojos. El Cromógeno TMB contiene un irritante. Puede ser dañino si es inhalado, ingerido o absorbido por la piel. Evitar la inhalación, ingestión o contacto con piel y ojos. La Solución de parada HRP consiste de una solución diluida de ácido sulfúrico. Evitar exposición a bases, metales, u otros compuestos que puedan reaccionar con ácidos. El ácido Sulfúrico es venenoso y corrosivo, puede ser tóxico si ingerido. Para impedir quemaduras, evitar contacto con piel y ojos. Se recomienda utilizar el equipo protector apropiado al trabajar con este kit. Los reactivos derramados deben limpiarse inmediatamente. Siga las normas aplicables en su laboratorio acerca de la eliminación de residuos.

Precauciones 1. 2. 3. 4.

5.

6. 7. 8.

9.

Este producto es para ser usado en el Diagnóstico In Vitro. La sustitución de componentes diferentes de los incluidos en el sistema puede generar resultados inconsistentes. Un lavado incompleto o ineficiente y una eliminación insuficiente de líquido de los pocillos puede dar lugar a una pérdida de precisión y/o un fondo elevado. La adaptación de este ensayo para su uso en procesadores automáticos u otros dispositivos, totalmente o en parte, puede producir diferencias en los resultados en comparación con el procedimiento manual. Es responsabilidad de cada laboratorio de validar sus procedimiento automatizado y comprobar que produce resultados dentro de los límites aceptables. Existe una variedad de factores que influyen en la realización del ensayo. Esto incluye la temperatura inicial de los reactivos, la temperatura ambiente, la exactitud y reproducibilidad de técnica de pipeteo, la calidad de la técnica de lavando, el fotómetro que se utiliza para medir los resultados, y los tiempos de incubación durante el ensayo. Es necesario un exquisito cuidado y un trabajo consistente para obtener resultados exactos y reproducibles. Se recomienda seguir estrictamente el protocolo. El sellado incompleto de la bolsa “zip-lock” que contenga tiras sin usar y desecante provocará la degradación del antígeno que se apreciará en un empeoramiento de la precisión de resultados. Pueden observarse absorbancias inaceptablemente bajas tras dos o más usos separados de un conjugado HRP. Es importante seguir todas las recomendaciones de manipulación específicas para este producto para evitar que esto ocurra. La contaminación química del conjugado HRP puede ocurrir como resultado de una limpieza o secado inadecuados del equipo o instrumentos. Residuos de productos químicos comunes en el laboratorio como formalina, lejía, etanol, o detergente causan la degradación del conjugado HRP con el tiempo. Enjuague bien todo equipo o instrumentos después de usar dichos productos.

Condiciones de Almacenaje 1. 2. 3.

Guardar todos los reactivos del kit en nevera a 2-8°C. No congelar. Los reactivos son estables hasta la fecha de caducidad si son almacenados y manipulados correctamente. Las tiras sin utilizar deben volverse a guardar en la bolsa de aluminio que contiene desecantes cerrándola herméticamente y almacenándola a 2-8ºC. La solución de lavado diluida es estable 1 semana a 2-8°C.

Recolección de Muestras Este kit requiere suero como muestra. La adición de azida u otros conservantes a las muestras puede afectar adversamente los resultados. No deben utilizarse muestras contaminadas, tratadas por calor o que contengan partículas visibles. Deben asimismo evitarse las muestras lipémicas o hemolizadas. Tras la recolección de las muestras de sangre, el suero debe ser separado del coágulo. El documento NCCLS H18-A2 recomienda las siguientes condiciones de almacenaje para muestras: 1) Guardar las muestras a temperatura ambiente no más de 8 horas. 2) Si el ensayo no se va completar en 8 horas, refrigerar la muestra a 2-8°C. 3) Si el ensayo no se va completar entre 48 horas, o para enviar las muestras, congelar a -20°C o a temperatura inferior. Una vez descongeladas las muestras deben agitarse bien antes de utilizarse.

Procedimiento Materiales Suministrados 1 1 1 1 1 1 1

Microplaca H. pylori IgG ELISA (12-1 x 8 pocillos), con soporte 1.2 ml control negativo ELISA prediluido 1.2ml control prediluido H. pylori IgG ELISA Positivo Débil 1.2ml control prediluido H. pylori IgG ELISA Positivo Fuerte 50ml Diluyente de muestra HRP 25ml Solución de lavado concentrada 40X 10ml Conjugado IgG (cabra) anti IgG humana

2

1 1

10ml Cromógeno TMB 10ml Solución parada HRP (Ácido Sulfúrico 0.344M)

Material necesario no incluido Micropipetas para 5, 100, 200-300 y 500µl Puntas desechables para micropipeta Tubos para dilución de muestras, 4ml Agua destilada Recipiente de 1L para la solución de lavado reconstituida Lector de microplacas capaz de medir densidades ópticas a 450nm (y a 620nm para lecturas de doble longitud de onda

Metodología Antes de empezar 1. 2.

3.

4.

Llevar todos reactivos y muestras a la temperatura ambiente (20-26°C) y agitar. Diluir la solución de lavado HRP 1:40 añadiendo el contenido del envase con concentrado a 975 ml de agua destilada. Si no va a utilizar toda la placa, puede preparar una cantidad menor de solución de lavado añadiendo 2.0 ml del concentrado a 78ml de agua destilada para cada 16 pocillos que vayan a utilizarse. El tampón diluido es estable 1 semana a 2-8°C. Preparar una dilución 1:101 de cada muestra a procesar añadiendo 5 µl de muestra a 500 µl de diluyente. Las muestras diluidas deben ser utilizadas dentro de las 8 horas de su preparación. NO DILUIR los controles H. pylori IgG ELISA positivo débil, positivo fuerte y ELISA negativo. La determinación de la presencia o ausencia de anticuerpos anti H. pylori IgG usando unidades arbitrarias requiere dos pocillos para cada uno de los tres controles y uno o dos pocillos para cada muestra. Se recomienda que las muestras se hagan por duplicado.

Procedimiento de Ensayo 1.

TODOS REACTIVOS DEBEN ESTAR A TEMPERATURA AMBIENTE (20-26°C) ANTES DE EMPEZAR EL ENSAYO. Ponga el número necesario de tiras en el soporte. Devolver inmediatamente las tiras sin utilizar a la bolsa de aluminio y sellarla firmemente para minimizar la exposición a la humedad.

2.

Agregar 100µl de los controles prediluidos H. pylori IgG ELISA Positivo Débil, H. pylori IgG ELISA Positivo Fuerte, ELISA Negativo y las muestras prediluidas a los pocillos. Cubrir los pocillos e incubar 30 minutos a temperatura ambiente en una superficie plana . El tiempo de incubación empieza después de la adición de la última muestra. Lavado: Aspirar el contenido de cada pocillo. Agregar 200-300µl de solución de lavado a todos pocillos y aspirar. Repetir esta secuencia dos veces más para un total de tres lavados. Invertir la placa y golpearla suavemente en material absorbente para eliminar cualquier fluido residual tras el último lavado. Es importante que cada pocillo esté completamente vacío después de cada paso de lavado. Mantener la misma secuencia para la aspiración que la usada para la adición de muestras. Agregar 100µl de Conjugado IgG HRP a cada pocillo. El conjugado debe pipetearse en las condiciones más asépticas posibles y siguiendo buenas técnicas de laboratorio. Aspirar solamente la cantidad de conjugado necesaria para el ensayo. PARA EVITAR CUALQUIER CONTAMINACIÓN POTENCIAL MICROBIANA Y/O QUÍMICA, NUNCA DEVOLVER EL CONJUGADO SIN USAR A SU RECIPIENTE ORIGINAL. Incubar los pocillos 30 minutos como en el paso 2. Lavado: Repetir el paso 3. Agregar 100µl de Cromógeno TMB a cada pocillo e incubar 30 minutos en oscuridad a temperatura ambiente. Agregar 100µl de Solución de parada a cada pocillo. Mantener la misma secuencia y temporalización que la efectuada en la adición de Cromógeno. Agitar suavemente la placa para mezclar bien los pocillos. Leer la absorbancia (DO) de cada pocillo a 450nm en un plazo máximo de una hora. Si se desea seguir el método de lectura bicromática puede utilizarse 620 nm como longitud de onda de referencia.

3.

4.

5. 6. 7.

8.

Control de Calidad 1.

2.

3.

4.

Los controles H. pylori IgG ELISA Positivo Débil, H. pylori IgG ELISA Positivo Fuerte y Control Negativo ELISA deben procesarse con cada lote de muestras para asegurar que todos reactivos y procedimientos funcionan correctamente. El usuario debe notar que debido a que los controles H. pylori IgG ELISA Positivo Débil, H. pylori IgG ELISA Positivo Fuerte y ELISA Negativo son prediluidos, no controlan procedimientos asociados con dilución de especímenes. Pueden añadirse controles adicionales según las directivas o requisitos del laboratorio. Pueden prepararse controles válidos haciendo alícuotas de un “pool” de suero humano que debe almacenarse a < -20°C. Para considerar válidos los resultados deben considerarse satisfechos todos los criterios especificados a continuación, si alguno de ellos no se cumple la prueba debe considerarse inválida y repetirse. a. La absorbancia del control H. pylori IgG Positivo debe ser superior a la del control H. pylori IgG positivo débil y la de este debe ser superior a la del control negativo.

3

b. c. d.

e.

El control H. pylori IgG positivo fuerte debe tener una absorbancia mayor que 1.0 mientras que la del control negativo no debe exceder de 0.2. La absorbancia del control H. pylori IgG positivo débil debe ser superior al doble del control negativo, u oscilar entre 0.25. Los controles ELISA negativo y H. pylori IgG positivo fuerte están pensados para monitorizar problemas de reactivo de magnitud substancial. El control H. pylori IgG positivo fuerte no puede asegurar precisión alguna en el punto de corte del ensayo. El usuario puede referirse al documento NCCLS (National Committee of Clinical Laboratory Standards) C24-A para una guía adicional acerca de buenas prácticas de laboratorio.

Cálculo de Resultados Debe determinarse en primer lugar el promedio de densidades ópticas de cada juego de duplicados. La reactividad para cada muestra se calcula dividiendo la densidad óptica promedio de la muestra por la densidad óptica promedio del control H. pylori IgG positivo débil. DO Muestra Valor de la Muestra = —————————————————— x Valor ELISA Positivo Débil (unidades) DO ELISA Positivo Débil (unidades) La reactividad de la muestra está relacionada de manera no lineal con la cantidad de anticuerpo presente. Mientras que los aumentos y disminuciones en la concentración de anticuerpos del paciente se reflejarán en el aumento o disminución correspondiente de la reactividad, los cambios no son proporcionales (por ejemplo, al doblarse la concentración de anticuerpo no se dobla la reactividad). Si se deseara una cuantificación más precisa de la cantidad de anticuerpo, puede informarse como el título de anticuerpo de la muestra la última dilución positiva de una serie de diluciones seriadas de la muestra.

Interpretación de los Resultados La técnica ELISA es muy sensible y es capaz de detectar pequeñas diferencias entre poblaciones de pacientes. Los valores presentados a continuación son sólo valores sugeridos. Cada laboratorio debe establecer su propio rango normal basado en su propia metodología, controles, equipo y población de pacientes. La muestra puede clasificarse con un valor negativo, (negativo para anticuerpo IgG anti H. pylori), equivoco, o positivo (anticuerpo IgG anti H. pylori detectado)según la tabla siguiente. Unidades 0.0 – 20.0 20.1 – 24.9 >25

Negativo Equivoco Positivo

Las muestras calificadas como equívocas deben ser analizadas otra vez antes de ser informadas. 1.

2.

3.

4.

Un resultado positivo sólo indica una exposición inmunológica previa al H. Pylori, y no permite diferenciar una infección activa de H. pylori de una inactiva. La existencia de infecciones activas se determina mediante cultivo de biopsias, espirometría con urea marcada en el 14C o con otros métodos de detección de la ureasa. Las muestras con niveles equívocos de H. pylori IgG no pueden utilizarse para evaluar el estado de los anticuerpos. Si los resultados siguen siendo equívocos después de repetir el test, deberán considerarse equívocos y/o deberá tomarse otra muestra. Un resultado negativo indica la inexistencia de anticuerpos anti-H. pylori o que los niveles están por debajo del umbral de detección del ensayo. Las muestras recogidas en fases demasiado tempranas de la infección pueden no presentar niveles detectables de anticuerpos anti-IgG. Si se sospecha de la existencia de una infección primaria, deberá tomarse otra muestra en un plazo de 4-6 semanas y testarse simultáneamente con el mismo ensayo que la muestra original. Se sugiere que los resultados informados por el laboratorio incluyan la afirmación “Los siguientes resultados se obtuvieron con el kit INOVA QUANTA LiteTM H. pylori IgG ELISA. Los valores obtenidos con kits de diferentes fabricantes pueden variar y no pueden intercambiarse entre ellos. La magnitud de los niveles informados de IgG no puede correlacionarse con un punto final”.

Limitaciones del Procedimiento 1. 2. 3. 4.

5. 6.

Este test está diseñado para ayudar en la diagnosis de las infecciones de H. pylori. Debe utilizarse sólo en personas con síntomas que sugieran la existencia de alguna enfermedad gastrointestinal; no es adecuado para personas asintomáticas. Un resultado negativo para anticuerpos no descarta la presencia de H. pylori, puesto que la concentración de anticuerpos puede estar por debajo del límite de detección del ensayo. Puede obtenerse un resultado negativo si las muestras se han obtenido en una fase demasiado temprana de la infección, antes de la aparición de anticuerpos detectables. Si se sospecha de la existencia de una infección de H. pylori, deberán obtenerse nuevas muestras de 4 a 6 semanas más tarde y testarlas de forma paralela con la primera muestra. Un resultado positivo no permite distinguir una infección activa de una colonización por H. pylori. Un resultado positivo tan sólo indica la presencia de anticuerpos anti-H. pylori y no necesariamente la presencia de una enfermedad gastrointestinal.

4

7. 8.

Los resultados de este ensayo deben utilizarse conjuntamente con hallazgos clínicos y otras pruebas serológicas. La funcionalidad del ensayo no ha sido establecida para matrices diferentes del suero.

Valores Esperados Se estima que aproximadamente un 50% de la población mundial está infectada por el H. pylori. En los países en vías de desarrollo el 50% o más de la población ya está infectada antes de los 10 años, mientras que en los países desarrollados este tipo de infección es frecuente en los niños. La seroprevalencia aumenta a un ritmo del 0.5 al 1.0% con cada año de edad (es decir, aproximadamente una seroprevalencia del 60% a los 60 años de edad).3,7,12,13

Rango Normal Dos grupos de personas sanas y asintomáticas (con edades comprendidas entre los 18 y 75 años), uno de San Diego, CA y otro de Buffalo, NY, fueron sometidos a test con el kit QUANTA LiteTM H. pylori IgG ELISA. Según los resultados obtenidos, un 1.8% (1/53) de las muestras de suero del grupo de San Diego y el 11.3%(11/97) de las muestras de suero del grupo de Buffalo dieron positivo para anticuerpos anti-H. pylori IgG. Los datos también demostraban un aumento de la seropositividad con la edad, tal y como se esperaba de acuerdo con estudios previos.

Sensibilidad y Especificidad Relativas Muestras de estudio El rendimiento del kit QUANTA LiteTM H. pylori IgG ELISA se evaluó mediante un panel de 295 muestras de pacientes sometidos a endoscopia, cuya positividad clínica se había probado retrospectivamente. La presencia de infección por H. pylori se evalúo mediante cultivo, histología y tests de dióxido de cloro. Las muestras se consideraron H. pylori positivas si los cultivos daban positivo o si 2 de los 3 ensayos daban positivo. Tabla 1: Sensibilidad y especificidad del panel clínico n= 295 INOVA H.pylori IgG POS EQUIV NEG Clínico POS* n= 155 141 5 9 NEG n= 140 11 3 126 *Las muestras se consideraron positivas si los cultivos daban positivo o si los tests de dióxido de cloro y la histología daban positivo Sensibilidad: 94.0% (141/150) Especificidad: 92.0% (126/137) Concordancia clínica: 93.0% (267/287) Nota: en los cálculos no se incluyeron los resultados equívocos Aunque en el momento de tomar las muestras se había determinado que los pacientes eran negativos mediante cultivo, histología y tests de dióxido de cloro, se sospecha que algunos pacientes habían estado expuestos previamente al H. pylori debido a la alta reactividad a la IgG que se observó en algunas muestras “negativas”. Por lo tanto, 7 de las 11 muestras clínicamente negativas que dieron positivo con el kit INOVA QUANTA LiteTM H. pylori IgG ELISA fueron analizadas de nuevo mediante un kit H. pylori IgG similar para diagnóstico in vitro. Este kit comercial detectó 6 muestras positivas y 1 indeterminada.

Resultados de los tests de un panel ciego en tres sitios diferentes La Tabla 2 muestra un resumen de los resultados obtenidos con el panel compuesto por 40 muestras clínicas ciegas estudiado en 3 sitios diferentes. La especificidad fue del 100% (10/10) en los tres sitios. La sensibilidad fue del 96.3% en el sitio 1, del 96.6% en el sitio 2 y del 93.1% en el sitio 3. Tabla 2: Sensibilidad y especificidad del kit QUANTA LiteTM H. pylori IgG ELISA obtenidas en los 3 sitios con un panel clínico ciego. Sitio 1 Sitio 2 Sitio 3 Sensibilidad N=30 96.3% (26/27) 96.6% (28/29) 93.1% (27/29) Especificidad N=10 100% (10/10) 100% (10/10) 100% (10/10) Concordancia clínica 97.3% (36/37) 97.4% (38/39) 94.9% (37/39) total Nota: No se incluyen los resultados equívocos.

Validación del umbral El umbral para este ensayo fue validado testando el panel de muestras clínicas y utilizando el análisis del umbral según las características operativas del receptor (ROC) 11.

Análisis ROC El análisis ROC proporciona una aproximación de la precisión del diagnóstico utilizando el ensayo INOVA H. pylori IgG comparado con la situación clínica del paciente. También permite validar el punto de corte del ensayo11. Este análisis soporta el uso de los márgenes de interpretación que hemos empleado para este kit.

5

Estudio de la reactividad cruzada Se realizó un estudio de absorción para evaluar la reactividad cruzada de los antígenos bacterianos con el kit INOVA QUANTA LiteTM H. pylori IgG ELISA. En pocas palabras, el suero con diferentes niveles de anticuerpos anti-H. pylori era absorbido por los antígenos del H. pylori, C. jejuni, C. coli, C. fetus, o E. Coli. Las muestras de suero tratado y sin tratar fueron testadas con el ensayo para H. pylori IgG. Todas las muestras H. pylori seropositivas continuaron siendo seropositivas después de la absorción de los antígenos, excepto los del H. pylori. El porcentaje medio de inhibición fue del 82.1% cuando se utilizó el antígeno del H. pylori y del 2.9% cuando se usaron antígenos derivados de otros organismos. La presencia de anticuerpos antinucleares (5 muestras de suero), factor reumatoide (5 muestras de suero) y anticuerpos anti-ADN (5 muestras de suero) también fue testada y no alteró la especificidad del kit INOVA QUANTA LiteTM H. pylori IgG ELISA.

Interferencia Se realizaron dos estudios para determinar si la presencia de niveles elevados de bilirrubina, colesterol o triglicéridos en las muestras de suero interfiere con el kit QUANTA LiteTM H. pylori IgG ELISA. En el primero se testaron 20 muestras de suero (6 H. pylori positivas y 14 negativas), añadiendo o no bilirrubina (40 veces el nivel normal) o hemoglobina (66 veces el nivel normal). El segundo estudio consistió en alterar muestras de suero H. pylori positivas con suero con altos niveles de colesterol, triglicéridos o bilirrubina. Los resultados demostraron que ninguna de estas sustancias interfería con el kit QUANTA LiteTM H. pylori IgG ELISA.

Precisión y Reproducibilidad La variación entre ensayos fue evaluada analizando por duplicado un panel ciego formado por 14 muestras, incluyendo dos negativos, y 3 positivos bajos, dos moderados y 1 positivo alto, así como los controles negativo, bajo positivo y alto positivo del kit dos veces al día (una vez por la mañana y otra por la noche) durante 3 días en cada uno de los tres sitios. Tabla 4: Rendimiento Combinado Entre Ensayos Para Los Tres Sitos Suero R1 R2 R3 R4 R5 R6 R7 R8 R9 R10 R11 R12 SRU 46.7 23.8 30.2 46.5 45.6 25 4.2 24.3 25 86.6 3.5 4.0 DS 2.4 2.3 4.9 2.3 2.5 3.4 2.6 2.9 3.0 8.8 2.7 3.0 CV% 5 10 16 5 5 13 61 12 12 10 77 76

R13 25.8 2.5 10

R14 3.4 2.8 82

NC 4.4 3.2 73

LPC 25 0 0

HPC 84.6 5 6

El rendimiento intra-ensayos fue evaluado testando 15 veces 6 muestras, incluyendo un negativo, un equívoco, un positivo sobre el umbral, un positivo bajo, un positivo moderado y un positivo alto. Los resultados se resumen en la Tabla 5. Tabla 5: Rendimiento intra-ensayo para el método QUANTA LiteTM H. pylori IgG ELISA Suero 1 Suero 2 Suero 3 Suero 4 Suero 5 Suero 6 Media 84.03 99.28 31.98 25.96 21.12 2.98 DS 3.09 4.21 1.44 1.52 0.91 0.30 C.V.% 3.6 4.2 4.5 5.9 4.3 10.1

Linealidad Para evaluar la linealidad del método QUANTA LiteTM H. pylori IgG ELISA, se diluyeron 4 muestras sucesivamente de 1:50 a 1:51,200, y luego se analizaron con el kit QUANTA LiteTM H. pylori IgG ELISA. El análisis demostró que el ensayo era lineal de aproximadamente 15-20 unidades en el extremo inferior hasta 121 unidades en el extremo superior. Los valores de R2 para las cuatro muestras de suero diluidas fueron de 0.99 o incluso mejores. QUANTA Lite

TM

H. pylori

IgG ELISA Linearity SRU BL - 63 SRU BL - 77

140

S R U

SRU BL - 95

120

SRU BL - 96

100

Linear (SRU BL - 95) Linear (SRU BL - 96)

80

Linear (SRU BL - 63)

60

Linear (SRU BL - 77)

40 20 0 1:50

1:200

1:800

1:3200

Dilution

6

y = -18.159x + 138.35 R 2 = 0.9934 y = -10.639x + 86.575 R 2 = 0.9937 y = -13.894x + 119.42 R 2 = 0.9903 y = -15.844x + 120.41 R 2 = 0.9885

Referencias 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11.

12. 13.

Marshall BJ. 1983. Unidentified curved bacilli on gastric epithelium in active chronic gastritis. Lancet, ii: 1273-1275. Walsh JH and Peterson WL. 1995. The treatment of Helicobacter pylori infection in the management of peptic ulcer disease. N.Engl. J. Med. 333(15):984-991. Blaser MJ. 1992. Helicobacter pylori: its role in disease. Clin. Infect. Dis. 15: 386-394. The Eurogast Study Group. 1993. An international association between H. pylori infection and gastric cancer. Lancet 341(8857):1359-1362. NIH Concensus Development Panel on Helicobacter pylori in Peptic Ulcer Disease. 1994. JAMA 272:65-69. Malfertheiner P, et al. 1997. Current European concept in the mangement of Helicobacter pylori infection- the Maastricht concensus report. Eur. J. Gastroenterol. Hepatol. 9:1-2. Hirschl AM, et al. 1993. Kinetics of specific IgG antibodies for monitoring the effect of antiHelicobacter pylori chemotherapy. J. Infect. Dis. 168:763-766. Bourke B, Jones N, and Sherman P. 1996. Helicobacter pylori infection and peptic ulcer disease in children. Ped. Infect. Dis. J. 15:1-13. Patel P, et al. 1995. Prospective screening of dyspeptic patients by Helicobacter pylori serology. Lancet 346:1315-1318. Biosafety in Microbiological and Biomedical Laboratories. Center for Disease Control/National Institute of Health, 1999, Fourth Edition, (HHS Pub. # (CDC) 93-8395). National Committee for Clinical Laboratory Standards. 1995. Assessment of the Clinical Accuracy of Laboratory Tests using receiver operating characteristic (ROC) Plots; approved guideline (NCCLS document GP10-A), Wayne, PA. Megraud F, et al. 1989. Seroepidemiology of Campylobacter pylori infection in various populations. J. Clin. Microbiol. 27:1870-1873. Veldhuyzen SJO, et al.1994. Increasing prevalence of H. pylori infection with Age: Continuous risk of infection in adults rather than cohort effect. J. Infect. Dis. 169:434-437.

Fabricante: INOVA Diagnostics, Inc. 9900 Old Grove Road San Diego, CA 92131 United States of America Representante Autorizado: Medical Technology Promedt Consulting GmbH Altenhofstrasse 80 D-66386 St. Ingbert, Germany Tel.: +49-6894-581020 Fax.: +49-6894-581021 www.mt-procons.com Technical Service 628715ESP

888-545-9495 May 2005 Revision 3

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