CURSO PRÁCTICO TÉCNICAS DE MONITOREO Y MANIPULACIÓN DE FAUNA SILVESTRE Noviembre 11-14 de 2016 Docente: Wilmar Bolívar-García, Ph.D.

Introducción La continua pérdida de diversidad biológica como consecuencia de las actividades humanas tendrá un notable impacto en nuestra capacidad para comprender la complejidad científica de todo lo que nos rodea, y afectará también el modo en el cual los ecosistemas continúan funcionando (Heyer et al. 1994). Este impacto aumenta la necesidad de que los científicos conozcan exactamente lo que se está perdiendo y comuniquen sus perspectivas sobre cuales serán las consecuencias que estas pérdidas tendrán en la sociedad, antes que la calidad de vida en el planeta sufra un deterioro irreversible. Para comprender la complejidad de la diversidad biológica es fundamental conocer que especies viven en un área determinada y como varían éstas a lo largo del tiempo, es aquí donde el monitoreo de las comunidades o especies juega un papel fundamental como herramienta para tener una aproximación a estas dinámicas. El ejercicio de registro y monitoreo de fauna silvestre implica manipulación de organismos en la mayoría de los casos, dado que algunas técnicas implican captura activa, este ejercicio conlleva a un componente de estrés tanto para el investigador como para los organismos vivos que son objeto de estudio, por lo tanto se debe procurar la integridad tanto de los organismos como del investigador. Dado que Colombia es uno hotspot en términos de biodiversidad, alberga en su territorio una inmensa diversidad de fauna y flora, algunos de estos organismos representan un alto riesgo para el ser humano, puesto que son potencialmente riesgosos dadas características particulares de los mismos, algunos por ejemplo como la mayoría de los mamíferos representan un riesgo en su manipulación debido a su mordedura como también a que son propensos a actuar como vectores de algunas enfermedades, otros por su lado lo son debido a que contienen venenos como mecanismo de defensa o depredación y que al ingresar en el organismo pueden poner en riesgo la vida y en casos más extremos puede causar la muerte, ie, serpientes, ranas, cocodrilos. Considerando que uno de los principales campos de acción para un Biólogo es el trabajo de campo, el eje central de esta actividad práctica estará enfocado hacia el análisis de la composición de la fauna acuática (peces) y fauna terrestre (herpetofauna, mastofauna y avifauna) asociada a las microcuencas del río Purnio y afluentes, aplicando para ello, los métodos de campo, índices de diversidad y cotejándolos con las características generales del ambiente así como las principales técnicas empleadas en la manipulación de organismos silvestres. Para este propósito se utilizarán los lineamientos básicos para realizar una evaluación ecológica, aplicando los distintos métodos para el manejo de fauna silvestre, con especial énfasis en la caracterización faunística y ambiental.

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Materiales Instrumentos de Campo (Suministrados) Peces

Herpetofauna

Equipo de electropesca pHmetro Red de Barrera Flujómetro Atarraya Chinchorro Decámetro Bandejas plásticas y Baldes Frascos plásticos Formol al 10% Buferizado

Mastofauna

GPS Libreta de campo Ganchos de manipulación Redes de Niebla Bolsas de tela Bolsas plásticas 3 libras de avena en hojuelas Termómetro Laser 6 latas pequeña de sardinas Dataloggers 6 latas pequeñas de atún Calibradores 3 lb de Maíz Trillado (cuchuco o polenta) Alcohol al 70% Esencia de vainilla Rastrillos Fruta madura (maduro o papaya) Lazo (5m) Trampas Sherman Trampas Nacional

Avifauna

Binoculares

Equipo de trabajo (Responsabilidad de los asistentes) 1 marcador permanente (Negro) 1 rollo cinta para enmascarar (5 cm ancho) 1 rapidógrafo negro

5 limones comunes 3 juegos de Fichas de registro

Equipo Básico para curso (Responsabilidad personal) Carpa y/o Bolsa de dormir Botas de caucho (obligatorias) Linterna de cabeza Cámara fotográfica Impermeable Libreta de Campo Bloqueador Solar Rapidógrafo Papel Higiénico Implementos de Aseo Personal 8 pares de guantes de látex Sombrero o Gorra Menaje (cubiertos) Agua potable (mínimo 5 litros)

Ubicación del Área de Trabajo El área de trabajo está ubicada entre los municipios de La Dorada y Victoria en el departamento de Caldas, Colombia (5° 22’ 2,6’ N, 74° 47’ 36,6’’ W, 255 m de altitud) (Figura 1) la Hacienda La Española. El tipo de ecosistema presente se clasifica dentro de la zona de vida de bosque seco tropical (bs-T), en el valle del río Magdalena (Espinal & Montenegro 1963), el área es atravesada por el río Purnio. El río Purnio cuenta con una una extensión de aproximadamente 7 km medidos sobre el cauce a su paso por el área de estudio en la cual se realiza explotación minera enfocada a la extracción de oro y material de arrastre para la construcción. El río le da nombre a una subcuenca y nace en la Cuchilla de San Mateo a 1010 m s.n.m. en la montaña Bellavista, en la vereda del mismo nombre, recorre el municipio Victoria de oeste a este hasta desembocar al Magdalena en el municipio La Dorada. Tiene afluentes de tercero y cuarto orden. La subcuenca cuenta con 28 afluentes, de los cuales el 40% son de flujo constante y el 60% restante desaparece en época de verano (Plan de Desarrollo Municipio de Victoria Caldas 2008-2011). Presenta una cobertura vegetal escasa debido a la presión agrícola, ganadera y de minería, aunque tiene cordones interrumpidos de Guadua y algunas franjas angostas de rastrojo alto donde se pueden encontrar algunos parches arbóreos (Plan de Gestión Ambiental Regional para Caldas 2001-2006). En términos de diversidad biológica alberga una gran variedad de grupos taxonómicos, estando bien representados la mayoría de grupos principales (Aves, Mamíferos voladores, mamíferos terrestres, reptiles, anfibios y peces).

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Figura 1. Área de estudio, Hacienda la Española.

Metodología de Trabajo El trabajo en campo será divido en cuatro (4) estaciones de muestreo de acuerdo a los principales grupos taxonómicos (Peces, herpetos, aves y mamíferos), cada grupo de trabajo será asignado a una estación de muestreo por día y esta se rotará sucesivamente cada día. Actividades (En cada estación de muestreo) Caracterización ambiental Condiciones físicas Se medirán los parámetros físicos básicos para hacer la comparación entre las condiciones del hábitat en el río. o Con equipos de campo (pHimetro y flujómetro) se tomarán datos de, pH, temperatura del agua ( C). El caudal (Q) se medirá de dos formas con un flujómetro y por medio del cálculo del área de una sección del río y la velocidad del agua en el mismo punto. Una forma fácil de calcular la velocidad del agua o de la corriente, es midiendo el tiempo que tarda un objeto flotante (limón) en recorrer una distancia determinada (3 a 5 m). Se debe dejar caer el limón aguas arriba y se registra el tiempo que tarda en cruzar la distancia entre los puntos de referencia que deben estar marcados con una piola sobre el cauce (Fig. 2). Este procedimiento debe hacerse por lo menos cinco (5) veces y luego se promedian los datos de tiempo.

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Dirección del flujo limón

3a5m

Inicio de toma de tiempo

Final de toma de tiempo Figura 2. Esquema explicativo para la medición de la velocidad del agua.

Descripción cualitativa del entorno Adicionalmente a los anteriores parámetros, se registrarán las condiciones generales de cada sitio de muestreo, anotando características como color del agua, olor, presencia de hidrocarburos, basuras en el cauce, condición de la vegetación marginal, uso del suelo adyacente, existencia de factores de perturbación (diques, canales de riego, basureros, etc.), características del sustrato (olor, si esta cubierto o no por sustancias distintas o algas), el porcentaje de turbulencias, corrientes rápidas, corrientes lentas y piscinas, vegetación acuática, etc., siguiendo la metodología propuesta por Chara (2003). (Fichas de Registro: Anexos ). Técnicas de Monitoreo Peces En el río Purnio o sus afluentes se efectuarán 3 muestreos de peces, cubriendo un tramo de cauce de 100 m de longitud y con una duración aproximada de 60 minutos. Se asume que esta distancia provee una mezcla mínima de hábitats, o como mínimo abarca por duplicado una secuencia de elementos físicos y estructurales, en un gradiente de pozos a corrientes (Barbour et al. 1999). En el río Purnio, se realizarán en total 3 muestreos de peces, uno en la parte alta, uno en la parte media y uno en la parte baja. Con el fin de cubrir todos los ambientes posibles dentro de cada sitio de muestreo, se empleará un equipo portátil de electropesca, considerado el mejor método para hacer inventarios y monitoreos de peces, ya que no es selectivo, es más eficiente en las capturas por unidad de esfuerzo, es de amplio uso y no causa la muerte de los peces (Growns et al. 1996, Barbour et al. 1999). Este tipo de equipos son utilizados desde hace más de 40 años en Norteamérica y Europa (Muus & Dahlström, 1981). Básicamente, funciona con base en la aplicación de una corriente eléctrica continua pulsante de 340 voltios, que proviene de un generador Ultimate con capacidad de salida de 1.1 KW, regulada por un pequeño transformador de 1 amperio (Este equipo ha sido adaptado por los biólogos Armando Ortega-Lara y Diego Córdoba). El polo positivo o ánodo es conectado mediante un cable de 50 m de longitud, a una red tipo nasa, la cual se introduce al agua en el momento de empezar la captura. El polo negativo o cátodo es conectado a un cable más corto en cuyo extremo se conecta una parrilla metálica que va introducida permanentemente en el agua (Fig. 3). El operario que se introduce al agua y que lleva la nasa eléctrica, debe utilizar guantes y botas de caucho a fin de evitar la corriente eléctrica. Al aplicar la electricidad los peces situados en un diámetro entre 20 y 80 cm (dependiendo de la calidad del agua) son atraídos inmediatamente al introducir la nasa al agua, siendo anestesiados o anarcosados pero volviendo a recuperarse unos pocos minutos después de terminar de aplicar la corriente.

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GENERADOR

NASA POLO POSITIVO

TRANSFORMADOR INVERSOR PARRILLA POLO NEGATIVO

Figura 3.

Esquema de un equipo genérico de electropesca.

Para aprovechar mejor el efecto del equipo de electropesca, se utilizará adicionalmente una red de barrera con cono, la cual se colocará aguas abajo perpendicularmente al flujo del agua, con el fin de recolectar los peces que quedan anestesiados antes de entrar a la nasa y son arrastrados por la corriente (Fig. 4). El muestreo se inicia desde aguas abajo hacia aguas arriba, desplazando la red pequeños tramos de aproximadamente 5 metros, teniendo en cuenta el radio de atracción del equipo y la heterogeneidad del cauce.

Figura 4.

Localización y disposición de los elementos de captura de peces, empleando un equipo de electropesca. Note la ubicación de la red de barrera agua abajo del punto de aplicación de la corriente eléctrica.

Los peces colectados serán contados e identificados al nivel de especie o morfoespecie (Tabla 1), en bandejas o baldes para facilitar su separación y luego se retornarán al río. Algunos ejemplares se fijarán en formol al 10% neutralizado con bórax y se almacenarán en alcohol etílico al 70%, para su posterior análisis. La determinación taxonómica se realizará directamente en el campo con la ayuda de claves y listados relevantes a la región (Eigenmann 1922, Miles 1947, 1973, Vargas 1989 y Ortega-Lara et al. 2000.

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Tabla 1. Modelo de la guía de registro de datos generales para cada sitio de muestreo. Nombre del río:_____________________ Sitio de Muestreo

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Sitio de Muestreo

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Sitio de Muestreo

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Especies 1 2 3 ... Total de Especies Especies 1 2 3 ... Total de Especies Especies 1 2 3 ... Total de Especies

Fecha: ______________________________ Abundancias

S

Total de Individuos

N

Abundancias

S

Total de Individuos

N

Abundancias

S

Total de Individuos

N

Mamíferos Se realizará una inducción para el manejo y utilización de redes de niebla, trampas tipo Sherman, National y Havahart, cámaras trampa, observación de rastros y búsqueda directa de individuos y manipulación de los principales grupos de mamíferos. Las redes de niebla se utilizan en trabajos de captura de aves y quirópteros. Durante la salida de campo se realizarán sesiones diarias de captura de murciélagos utilizando 3 redes de niebla. Las redes deberán ser colocadas en el sitio de trabajo a las 17:00 horas y permanecerán abiertas entre las 19:00 – 23:30 horas. Se revisarán en intervalos de 30 min, siendo el manejo de la posible captura bajo la supervisión directa del coordinador de la actividad. Todos los individuos capturados serán colectados en bolsas de tela y transportados a la zona de alojamiento. Se realizará una descripción de los murciélagos capturados, registrando los siguientes datos: longitud total (LT), longitud cola (LC), longitud pata (LP), longitud oreja (LO), longitud del antebrazo (AB), longitud de la hoja nasal (si presentaba), longitud del trago (LTr) y peso (P), sexo, edad, estado reproductivo, sitio y hora de captura. Las trampas Sherman, National y Havahart son de uso frecuente para la captura de pequeños mamíferos (principalmente roedores). Se dispondrán diariamente en la zona de trabajo 30 trampas Sherman y 30 trampas National. Cada trampa tendrá como señuelo dos tipos de cebos: la primera es una combinación de papaya y maduro y la segunda maíz molido y sardinas en salsa de tomate. Se debe registrar en la libreta de campo la posición exacta de cada una de las trampas. Las trampas se alistarán y colocarán en el sitio de muestreo antes de las 18:00 h. El día siguiente, entre 05:00 – 07:00 horas todas las trampas deben ser recuperadas. La captura será descrita en el campamento y posteriormente será liberada; a cada individuo se le tomará registro de longitud total (LT), longitud cola (LC), longitud pata (LP), longitud oreja (LO), peso y sexo. Para la observación de rastros y búsqueda directa de individuos se realizarán caminatas diurnas y nocturnas en búsqueda de huellas y rastros aprovechando los caminos existentes, adicionalmente se utilizaran cámaras trampa. Se registraran todas las evidencias de alimentación o de actividad que permitan establecer la presencia de alguna especie de mamífero, tales como madrigueras, pelos, espinas, cadáveres, huellas, entre otras.

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Instalación y registro de cámaras trampa en campo La ubicación espacial de las cámaras trampa en campo requiere de especial atención, para lo cual se propone emplear el siguiente formato donde se incluyen datos de la ubicación espacial y temporal de la ubicación de las trampas a las cuales denominaremos “estaciones de muestreo”, características de la ubicación de las cámaras y verificación de la activación de las mismas (Tabla 2). Tabla 2. Formato registro de instalación de cámaras en campo.

Fecha: día de ubicación y activación de la estación de muestreo. Hora: hora de activación de la cámara trampa. Estación: nombre de la estación de muestreo. Se recomienda usar iniciales que denoten la información necesaria ej: Cámara Trampa (CA), Nombre del estudio Id Cámara: es el número consecutivo y que no se repite con el cuál se identifica cada cámara, esta información es programable en la mayoría de las cámaras. Coordenadas: registro de GPS correspondiente a la ubicación de la estación de muestreo. Se recomienda guardar este punto en el GPS con el nombre asignado a la estación de muestreo e incluir la altura sobre le nivel del mar. Ancho del camino: ancho del camino donde se ubicó la cámara trampa expresado en metros. Distancia al objetivo: distancia en metros entre la cámara trampa y el centro del camino (el punto donde se asume pasará el animal). Altura: distancia entre el suelo y el lente de la cámara trampa en centímetros. Cobertura del dosel: porcentaje de la cobertura vegetal en el dosel donde se ubicó la cámara trampa. Programada: marcar con una x, cuando se tenga completa la programación de la cámara Armada: marcar con una x, luego de la prueba en campo y activación de la cámara trampa. Foto: número fotos que muestra el indicador, cuando haya. Las trampas–cámara deben colocarse de preferencia en sitios en donde se hayan encontrado registros de la o las especies a trabajar, no debe hacerse un diseño al azar, ya que los mamíferos en general no se mueven de esta manera y utilizan de manera selectiva ciertas características del paisaje como son cañadas, crestas de Figura 5. Disposición de una cámara trampa. cerros, encrucijadas de veredas o caminos así como las bases de árboles y rocas de gran tamaño. Las trampas–cámara deben fijarse a un árbol, o utilizar un trí- pode a una altura aproximada de 50 cm del suelo (Figura 5) con la finalidad de obtener una foto de cuerpo completo de Técnicas De Monitoreo Y Manipulación De Fauna Silvestre

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la especie en cuestión. Se recomienda el uso de pulpos (cuerdas elásticas) para fijar las trampas al tronco de un árbol, y en lugares que presenten una gran cantidad de gente se sugiere el uso de cadenas para reducir la posibilidad de robo de las mismas. Información a partir de fotografías de las cámaras trampa Las cámaras trampa proporcional al investigador una cantidad de información considerable, no solo de presencia/ausencia de las especies estudiadas sino también información concerniente a sus patrones biológicos tales como patrones de actividad, información sobre sus hábitos de desplazamiento que proporcionan información acerca de su rango de acción dada la captura en cámaras ubicadas en otra área. El número de individuos capturados nos brinda información sobre hábitos como el desplazamiento en grupos familiares, mandada, en solitario, etc; otro factor importante es la fase lunar, que en algunos vertebrados se reporta altera los patrones de comportamiento y aunque esta información puede ser fácilmente accesible a través de la internet ya viene incorporada en la cámara. La identificación de la cámara nos permite ubicar geográficamente la ubicación exacta en donde se instaló el dispositivo y así saber los patrones de desplazamiento de las especies aquí capturadas. Toda la información colectada en las fotografías (Figura 6) debe ser organizada sistemáticamente para su análisis posterior. Se sugiere el uso de un formato para organizar toda la información disponible en las fotografías con el objeto de homogenizar los resultados del fototrampeo.

Figura 6. Esquema información suministrada en la fotografía. Foto tomada en el PNR Páramo del Duende a un guatín Dasyprocta punctata

Para garantizar el funcionamiento optimo de las cámara trampa se recomienda realizar un mantenimiento con una frecuencia aproximada de mínimo una vez cada tres meses, este mantenimiento consiste en la revisión sistemática adecuada de las cámaras teniendo en cuenta cuatro factores principalmente: el estado general de la cámara trampa (aseo, humedad y ubicación), la unidad de almacenamiento de la información (Memoria - USB), las unidades de suministro energético (baterías) y el funcionamiento de la cámara trampa (programación y Técnicas De Monitoreo Y Manipulación De Fauna Silvestre

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activación). El siguiente formato, puede ser empleado para la optimización del trabajo en campo y la verificación de las cámaras trampa (Tabla 3). Tabla 3. Formato revisión cámara.

Estación: nombre de la estación de muestreo (ver Formato registro de instalación de cámaras en campo). Id Cámara: nombre de la cámara (ver Formato registro de instalación de cámaras en campo). Fecha: día de revisión de la cámara trampa. Cambios: marcar con una x, cuando se haya efectuado el cambio de la unidad de almacenamiento de información o en la de alimentación. Programada: marcar con una x, cuando se tenga completa la programación de la cámara. Armada: marcar con una x, luego de la activación de la cámara. Foto: número de fotos que muestra el indicador, cuando haya.

Herpetos Se realizará un trayecto fijo de 100 x 5 m, y búsqueda de movilización libre los cuales serán recorridos en jornadas diurnas y nocturnas utilizando el método de Relevamientos por Encuentros Visuales (VES). La captura se realizará manualmente, mediante una búsqueda intensiva a lo largo de riberas de cuerpos de agua, interior de bosques y zonas abiertas. Es imprescindible que cada uno porte una linterna de cabeza de uso personal. Esta actividad se realizará entre las 19:00 – 23:30 horas. Los organismos colectados serán transportados a la zona de alojamiento para su posterior descripción registrando los siguientes datos: largo total, edad, sexo, peso, además de registro fotográfico. El muestreo de tortugas y cocodrilianos incluye el manejo de trampas cangrejeras que serán ubicadas en cuerpos de agua lénticos existentes en la zona, cebadas con una mezcla de atún y sardinas dos veces por día. Al momento de cebarlas se revisan y los individuos capturados serán llevados al campamento para ser procesados. Aves Se realizará un trabajo con redes de niebla abiertas en dos jornadas del día, entre las 05:00 -08:00 y 15:00 18:00 horas. Los organismos colectados serán transportados a la zona de alojamiento para su posterior descripción registrando los siguientes datos masa, cuerda alar, longitud de tarso, culmen, ancho de culmen, cola y envergadura según el caso Observación directa o captura visual: se realizará con la ayuda de binóculos 10 x 42 mm.Se empleará la metodología de conteo por puntos de amplitud variable, que consiste en caminar lentamente y detenerse registrando los individuos visuales o auditivamente en cada punto, esperando 10 minutos. Se seleccionarán cinco puntos en total, cada punto estará ubicado cada 200 m para cubrir una longitud de un kilometro para cada hábitat. Las actividades comportamentales como alimentación, percha, uso del hábitat (arborícola, arbustivo, terrestre, etc.), y tipo de alimento que consumen (insectos, vertebrados, frutos entre otros), serán registrados. Los censos visuales se realizarán en las horas de la mañana entre las 06:00 y las 10:00 horas, y en la tarde entre las 16:00 y las 18:00 horas.

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Organización del Trabajo en el Campo La primera actividad que se llevará a cabo será una explicación teórica de las técnicas y equipo de manejo de fauna silvestre para la toma de datos en campo, que implican la manipulación de la fauna silvestre. Posteriormente y para poder llevar a cabo todas las actividades planeada es necesario que todo los grupos de trabajo se encuentren realizando actividades de manejo de equipos y manipulación de la fauna silvestre. Considerando la necesidad de que durante las horas de la noche haya un grupo en el área de pernoctada, se seguirá el esquema de rotación. Al final de cada jornada se dispondrá de un espacio de discusión análisis de la información que hemos logrado obtener en campo. Actividad que estará orientada por el coordinador y los asistentes. Durante las actividades de monitoreo de fauna de vertebrados terrestres, cada profesional será asignado a un grupo de trabajo que tendrá una responsabilidad específica. El trabajo de los grupos durante cada actividad de muestreo, será coordinado por el coordinador y los asistentes. Siga en todo momento las instrucciones que se le indican. Recuerde que su seguridad depende de la seguridad del grupo de trabajo, por lo tanto, siga al píe de la letra las indicaciones que el instructor proporcione y esté atento a la posición y desplazamiento de sus compañeros de grupo. Cerciórese del grupo en el que está asignado y este atento a las indicaciones de los coordinadores. La programación específica de trabajo se entregará durante el curso. Tabla 3. Cronograma general de actividades durante la salida de Campo.

Día 1 (Octubre 11) Hora

Actividad

07:00 – 12:00 12:00 – 14:00 14:00 – 17:00 17:00 – 18:00 17:00 – 18:00 18:00 – 19:00 19:00 – 23:30 19:00 – 23:30 23:30 – 01:00 01:00

Llegada de participantes y organización del campamento Almuerzo Inducción trabajo de campo Instalación de trampas y redes de niebla (Mamíferos) Instalación de trampas cangrejeras (Tortugas) Comida Monitoreo con redes de niebla (Murciélagos) Monitoreo de Herpetofauna Consolidación de datos y discusión general Fin de actividades

Día 2 (Octubre 12) 05:00 – 07:00 05:00 – 08:00 06:00 – 07:00 07:00 – 08:00 08:00 – 10:00 09:00 – 11:00 12:00 – 14:00 14:00 – 17:00 15:00 – 17:00 15:00 – 18:00 17:00 – 18:00 18:00 – 19:00 19:00 – 23:30 19:00 – 23:30 23:30 – 01:00 01:00

Recolección de trampas (Mamíferos) Censo visual y captura con redes de niebla (Aves) Recolección de trampas cangrejeras (Tortugas) Desayuno Monitoreo con electropesca (Peces) Observación de rastros y huellas (Mamíferos medianos y grandes) Almuerzo Monitoreo con electropesca (Peces) Censo visual y captura con redes de niebla (Aves) Observación de rastros y huellas (Mamíferos medianos y grandes) Instalación de trampas y redes de niebla (Grupo de mamíferos) Comida Monitoreo de redes de niebla (Murciélagos) Monitoreo de Herpetofauna Consolidación de datos y discusión general Fin de actividades

Técnicas de Monitoreo y Manipulación de Fauna Silvestre - 2016

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Día 3 (Octubre 13) 05:00 – 07:00 05:00 – 08:00 06:00 – 07:00 07:00 – 08:00 08:00 – 10:00 09:00 – 11:00 12:00 – 14:00 15:00 – 18:00 17:00 – 18:00 18:00 – 19:00 19:00 – 23:30 19:00 – 23:30 23:30 – 01:00 01:00

Recolección de trampas (Mamíferos) Censo visual y captura con redes de niebla (Aves) Recolección de trampas cangrejeras (Tortugas) Desayuno Monitoreo con electropesca (Peces) Observación de rastros y huellas (Mamíferos medianos y grandes) Almuerzo Censo visual y captura con redes de niebla (Aves) Instalación de trampas y redes de niebla (grupo de mamíferos) Comida Monitoreo de redes de niebla (Murciélagos) Monitoreo de Herpetofauna Consolidación de datos y discusión general Fin de actividades

Día 4 (Octubre 14) 05:00 – 07:00 05:00 – 08:00 06:00 – 07:00 07:00 – 08:00 08:00

Recolección de trampas (Mamíferos) Censo visual y captura con redes de niebla (Aves) Recolección de trampas cangrejeras (Tortugas) Desayuno Fin de actividades

Presupuesto (asumido por los participantes) RUBROS

PRECIO UNITARIO

Alojamiento (en carpa)

$30.000

Comida (tres)

$105.000

Recomendaciones para la actividad en campo Se pernotará en el Sitio Hacienda la Española Municipios de Victoria y La Dorada, Departamento de Caldas. Cada uno o grupo de trabajo debe coordinar el montaje de su tienda de campaña. Porte en todo momento el documento de identidad y de la institución a la que pertenece. Este atento a las instrucciones que impartirán el coodrinador e instructores, durante las actividades de muestreo y desplazamientos entre sitios de muestreo. Nunca se desplace sólo y siempre este alerta ante cualquier situación sospechosa o de peligro. Mantenga contacto visual permanentemente con el grupo de trabajo. Informe si usted padece de una afección física preexistente que limite su desempeño en campo abierto (asma, alergias, problemas lumbares o de articulaciones, hernias, etc.). Los implementos de aseo deben ser llevados por cada uno de los asistentes, cepillo y crema dental, jabón de baño, toalla, etc. Deben llevar su respectiva carpa e idealmente una bolsas de dormir (sleeping). Para la instalación de las carpas se dispone de amplias zonas verdes las cuales no deben ser alteradas de ninguna forma y deben permanecer limpias. Debido a que se trabajará en algunas ocasiones en el agua, es necesario disponer de una muda de trabajo (para mojar), en lo posible camisa de manga larga para evitar el sol y los mosquitos, y pantaloneta, lycra o pantalón que permita moverse fácilmente en el agua. Es obligatorio el uso de zapatos o botas de caucho (No utilice sandalias) para evitar cortaduras y sombrero o gorra. Adicionalmente debe tener como mínimo dos (2) mudas de ropa seca. Será necesario durante las actividades de muestreo desplazarse caminando por lo que se recomienda utilizar calzado adecuado y cómodo.

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Literatura citada Barbour, M. T., J. Gerritsen, B.D. Snyder, and J.B. Stribling. 1999. Rapid Bioassessment Protocols for Use in Streams and Wadeable Rivers: Periphyton, Benthic Macroinvertebrates and Fish, Second Edition. EPA 841B99-002. US. Environmental Protection Agency; Office of Water; Washinton, D.C. Chará J.D. 2003. Manual para la evaluación biológica de los ambientes acuáticos en microcuencas ganaderas. Fundación Centro para la Investigación en Sistemas Sostenibles de Producción Agropecuaria, CIPAV. Cali, Colombia. Edi. Apotema. 52 p. Eigenmann, C. H. 1922. Memoirs of the Carnegie Museum. The fishes of Western South America. Part I. 9 (1). 1-346, 38 plates. Growns I. O., D. A. Pollard & J. H. Harris. 1996. A comparison of electric fishing and gillnetting to examine fish communities. Fisheries Management and Ecology, 3. 13-34 Miles, C. W. 1943. Estudio económico y ecológico de los peces de agua dulce del Valle del Cauca. Cespedesia 2 (5): 5-63. __________ 1947. Los peces del Río Magdalena. Ministerio de la Economía Nacional, Sección de Piscicultura, Pesca y Caza. Ed. El Gráfico, Bogotá. 214 pp. Muus, B. J & P. Dahlström. 1981. Süsswasserfische Europas. BLV Verlagsellschaft mbH, München. BRD., 224 pp. Ortega-Lara A., A. Aguiño y G. C. Sánchez. 2002. Caracterización de la ictiofauna nativa de los principales ríos de la cuenca alta del río Cauca en el Departamento del Cauca. Catálogo de Especies, Corporación Autónoma Regional del Cauca, CRC y Fundación para la Investigación y el Desarrollo Sostenible, FUNINDES. 139 pp. Ortega-Lara A.; O. Murillo; C. Pimienta; E. Sterling. 2000. Los peces del Alto Cauca, Riqueza Ictiológica del Valle del Cauca. Corporación Autónoma Regional del Valle del Cauca, CVC. Ed. Imagen Corporativa, Santiago de Cali. 69 pp. Vargas, I. C. 1989. Inventario preliminar de la ictiofauna de la Hoya Hidrográfica del Quindío. Corporación Autónoma Regional del Quindío, División de Recursos Naturales, Sección Aguas. 96 pp.

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