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MANUAL PARA LA TOMA, TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN DE MUESTRAS DE LABORATORIO CLÍNICO

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No de Revisión 00 01 02 03 04

Fecha Mayo 2009 Junio 2012 Noviembre 2012 Agosto 2013 Marzo 2014

Elaboró Cord. Laboratorio Clínico Cord. Laboratorio Clínico Cord. Laboratorio Clínico Cord. Laboratorio Clínico Cord. Laboratorio Clínico

Aprobó Dirección Prestación Dirección Prestación Dirección Prestación Dirección Prestación Dirección Prestación

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MANUAL PARA LA TOMA DE MUESTRAS Y TRANSPORTE DE MUESTRAS TOMA DE MUESTRAS OBJETIVOS Recibir y atender de manera amable y oportuna a los pacientes que requieran el servicio de Laboratorio Clínico generando seguridad y confianza en los procedimientos a realizar. Obtener muestras biológicas representativas en forma individual con medidas de atención y bioseguridad, con el fin de obtener resultados confiables que orienten al médico en su diagnóstico. ALCANCE El manual se toma como referencia para la correcta toma de muestras a los pacientes atendidos en las sedes de Tunja, Duitama, y Sogamoso. RESPONSABLES Es responsabilidad de los coordinadores de sede, coordinador de laboratorio clínico, y las auxiliares del Laboratorio, velar por que el procedimiento Operativo Estándar se realice y acaten este manual. El procedimiento es supervisado por la bacterióloga responsable del área.

RECOLECCION DE MUESTRAS El auxiliar del laboratorio clínico que atiende al paciente, en la mayoría de los casos, es el único contacto que tiene el paciente con el laboratorio clínico. Además quien realiza el procedimiento de toma de muestras asume una enorme responsabilidad de él o de ella depende que la muestra obtenida sea adecuada, que no existan variaciones pre analíticas causantes de errores en los resultados, que el médico tratante del paciente oriente un diagnóstico preciso con base al resultado del laboratorio y que el paciente en un futuro acuda en un momento al mismo laboratorio solicitando nuevos servicios, al recordar que fue muy bien atendido en ocasiones anteriores. Cuando se obtenga una determinada muestra se debe procurar seguir las siguientes recomendaciones: No de Revisión 00 01 02 03 04

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1. Actuar con la mayor habilidad posible 2. Obtener suficiente cantidad de espécimen de acuerdo a los requerimientos de cada

análisis a practicar. 3. Recolectar una adecuada muestra (calidad del espécimen) 4. Procurar que el paciente se incomode lo menos posible. 5. Transmitir al paciente confianza, seguridad y profesionalismo durante el procedimiento.

RECOLECCION DE MUESTRAS DE SANGRE Se debe seguir las siguientes indicaciones generales: 1. La sangre debe recolectarse en tubos estériles, preferiblemente tubos al vacío. Existen códigos de colores internacionalmente conocidos para los diferentes presentaciones de tubos colectores de muestras sanguíneas así : Tubo tapa roja o amarilla con gel Sin anticoagulante(Seco) Tubo tapa violeta Con EDTA Tubo tapa azul Con Citrato de Sodio Tubo tapa verde o blanca Con heparina Tubo tapa gris Con Oxalatos 2. Al recolectar la sangre, debe permitirse que se coagule si es el caso, o invertir varias

veces los tubos con la muestra para evitar su coagulación. 3. En otras ocasiones tan solo se colocan unas pequeñas gotas de sangre en láminas portaobjetos de vidrio (extendidos de sangre periférica), en capilares de vidrio o placas de vidrio o plástico de origen comercial para la realización de algunos estudios.

OBTENCION DE MUESTRAS DE SANGRE EN ADULTOS 1. 2. 3. 4.

Asegúrese que el paciente se ubique en una posición segura y cómoda. Nunca practique una punción sanguínea en un paciente que se encuentre de pie. No elija una extremidad en donde este colocada algún tipo de venoclisis. Inspeccione la vena que se va a puncionar, preferiblemente que sea visible y fácilmente palpable. 5. Coloque el torniquete con suficiente tensión. No se exceda, un torniquete muy apretado produce hemólisis, colapso o dolor. 6. Algunos estudios deben realizarse en muestras extraídas sin torniquete. 7. El torniquete debe permanecer colocado de 10 a 15 segundos antes de la punción. Retirar al tiempo que la aguja. No de Revisión 00 01 02 03 04

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8. Si la vena no es muy visible ni palpable, realice un suave masaje en el antebrazo con

movimientos desde la muñeca hacia el codo. 9. Observe siempre los dos brazos para elegir el sitio de punción. 10. Al finalizar el procedimiento indíquele al paciente que debe conservar la extremidad doblada, de forma tal que se realice presión con el algodón en el lugar de la punción, debe mantener dicha presión por lo menos durante 5 minutos. Coloque finalmente una banda adhesiva sobre la herida de la punción. 11. Si el sangrado no se detiene aplique presión constante sobre la herida durante 10 minutos más. Si el problema aún no se soluciona comuníquese con él o la bacterióloga directamente con el médico tratante. 12. Deposite y destruya todo el material desechable en los recipientes diseñados para este propósito. Romper las agujas y desechar los elementos utilizados frente al paciente esto aumenta su confianza en el laboratorio. 13. Asegúrese que los recipientes que contengan la muestra del paciente estén debidamente rotulados, marcados o identificados (Consecutivo, Nombres y Apellidos, Número de documento) antes de atender un nuevo paciente o de realizar otra tarea. Algunos exámenes requieren de la extracción de sangre mediante la punción en la yema de un dedo, para lo cual se debe apretar el pulpejo del dedo seleccionado de tal manera que la extremidad muestre congestión venosa, desinfectar el sitio de punción, tomar una lanceta estéril descabale y realizar una punción rápida y segura, recolectar las gotas de sangre necesarias evitando presionar demasiado fuerte el pulpejo.

OBTENCION DE MUESTRAS DE SANGRE EN NIÑOS 1. Seguir correctamente las indicaciones propuestas anteriormente para adultos 2. Realizar el procedimiento valiéndose de ayuda de compañeros de trabajo. 3. Sujetar firmemente el brazo del niño, aún cuando el pequeño paciente no oponga

resistencia al procedimiento, usualmente los niños tienden a reaccionar bruscamente al someterlos a procedimientos de extracción de sangre, esta reacción puede producir una herida mayor en el niño, como el rompimiento de la aguja dentro de la vena.

OBTENCION DE MUESTRAS DE SANGRE EN BEBES Si la punción de la vena del bebe no es viable, se pueden recolectar muestras de sangre con la punción del talón de uno de los pies. Debe sujetarse firmemente el pie del paciente, aplicar algo de presión en el talón del mismo y esperar a que haya congestión No de Revisión 00 01 02 03 04

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venosa evidente. Realizar la punción con lanceta estéril desechable y recolectar las gotas de sangre en tubo, en capilar o simplemente colocarlas en una lámina portaobjetos, según sean las necesidades. Es recomendable en la medida que sea posible que la madre del bebe no presencie el procedimiento.

OBTENCION DE MUESTRAS DE SANGRE EN LUGARES INUSUALES En ocasiones la punción de una vena del antebrazo es muy difícil, se recomienda en primera instancia revisar las venas de la mano, no se recomienda la punción de venas de las manos en bebes, ya que sus vasos sanguíneos son muy delgados y se corre el riego de producir extravasación interna de la sangre. Si el dorso de la mano no muestra adecuadas condiciones para realizar la punción se puede acudir al dorso del pie. Un excelente lugar para obtener muestras sanguíneas en casos difíciles, es punciones la vena yugular externa, esta opción y técnica esta reservada únicamente al profesional que tenga amplia experiencia en este tipo de procedimientos

OBTENCION DE EXPECTORACION 1. Hacer gárgaras con agua y escupirlas. 2. Expectorar y depositar la muestra en un recipiente estéril de boca ancha(Frasco

recolector de Orina). 3. Se recomienda que la muestra sea la primera de mañana y en ayunas para evitar partículas de alimentos.

INVESTIGACION DE BACILOS ACIDO ALCOHOL RESISTENTES EN EXPECTORACION Seguir las instrucciones para obtención de expectoración EN ORINA Para la investigación de B.A.A.R: 1. Recolectar en un recipiente estéril la

última orina de la noche y la primera de la mañana.(Debe recolectarse también las orinas que puedan recogerse en este lapso)

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2. Todas las muestras deben recolectarse previo aseo genital con antisépticos y manejar

todos los materiales en condiciones estériles. EN CONTENIDO GASTRICO O DUODENAL Se debe recolectar la muestra por medio de sonda nasogástrica, en condiciones estériles, depositando el material obtenido en recipiente estéril.

CURVA DE TOLERANCIA A LA GLUCOSA 1. Obtener sangre del paciente en ayunas (En esta muestra cuantificar glicemia basal) 2. El paciente deberá ingerir 75 g de glucosa diluidos en 300 ml de agua (dosis para

adultos) o 1,75 g /Kg de peso corporal (dosis para niños) 3. La ingestión debe hacerse en un lapso de 5 minutos en sorbos pequeños. CURVA DE TRES (3) HORAS Obtener muestras de sangre para cuantificar glucosa a los 30, 60, 120, 180 minutos posteriores a la ingesta de glucosa. Número total de muestras 5 CURVA DE CUATRO (4) HORAS Obtener muestras de sangre para cuantificar glucosa la los 30, 60, 120, 180, 240 minutos posteriores a la ingesta de glucosa. Número total de muestras 6 CURVA DE CINCO HORAS (5) Obtener muestras de sangre para cuantificar glucosa a los 30, 60, 120, 180, 240 y 300 minutos posteriores a la ingesta de glucosa. Número total de muestras 7 ** En todas las curvas de tolerancia a la glucosa deberá determinarse glucosa basal en ayunas, antes de administrarle la carga de glucosa. El paciente deberá permanecer en reposo durante el tiempo del estudio y abstenerse de realizar ejercicio, comer, beber demasiada agua o fumar

GLUCOSA POST PRANDIAL (2 HORAS) No de Revisión 00 01 02 03 04

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POST DESAYUNO 1. Obtener sangre del paciente en ayunas. 2. Indicar al paciente que debe ir a tomar un desayuno rico en carbohidratos y asistir

nuevamente al laboratorio exactamente a las dos horas posteriores de haber iniciado el desayuno 3. Tomar la segunda muestra de sangre (en esta muestra determinar glucosa post prandial). POST CARGA 1. Obtener sangre del paciente en ayunas ( en esta muestra determinar glucosa basal ). 2. El paciente deberá ingerir 75 gramos de glucosa diluidos en 300 ml de agua ( dosis

para adultos) o 1.75 g/Kg de peso corporal para niños ) 3. La ingestión debe hacerse en un lapso de 5 minutos en sorbos pequeños 4. Tomar la segunda muestra a las 2 horas posteriores a la ingesta de glucosa para cuantificar glucosa post carga ** En los anteriores estudios (glucosa post prandial y glucosa post carga) puede realizarse también durante una hora, si así lo solicita el médico, seguir en tal caso todas las instrucciones modificando únicamente el intervalo de tiempo

TEST DE O´SULLIVAN 1. Obtener sangre de la paciente embarazada en ayunas (en esta muestra determinar

glucosa basal ) 2. La paciente deberá ingerir 50 gramos de glucosa diluidos en 300 ml de agua 3. La ingestión deberá hacerse en 5 minutos en sorbos pequeños 4. Tomar la segunda muestra de sangre una hora después de la ingesta de glucosa para cuantificar glucosa post carga de 50 gramos de glucosa. PRUEBA DE ESPERMOGRAMA El médico debe especificar si lo que desea es un espermograma básico o espermograma completo. ESPERMOGRAMA BASICO

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Se determina parámetro tales como pH, aspecto, color, viscosidad, tiempo de licuefacción, recuento por milímetro cúbico, número de espermatozoides en la muestra, movilidad clasificada, vitalidad, morfología, y presencia de leucocitos, piocitos, hematíes y otros. ESPERMOGRAMA COMPLETO Se analizan los mismos parámetros del espermograma básico, adicionándose el estudio bioquímico del plasma seminal el cual incluye determinaciones de fructuosa, ácido cítrico, ácido ascórbico, y glicerilfosforilcolina (Externo). INSTRUCCIONES AL PACIENTE 1. Las instrucciones deben ser siempre por escrito y suministradas siempre por el

2.

3.

4.

5.

6.

laboratorio, evitándose así que el paciente se presente con una muestra mal recolectada. El recipiente debe ser apropiado ( no se recomiendan preservativos tales como condones, ya que muchos de ellos contienen sustancias espermaticidas), se recomiendan recipientes comerciales fabricados especialmente para una óptima recolección del semen, puede utilizarse un recipiente para recolección de orina perfectamente sellado La muestra de semen debe tomarse idealmente por masturbación, en el laboratorio, con la alternativa de hacerla en su domicilio, en cualquier caso una vez recolectada la muestra, debe conservarse a una temperatura entre 35 y 37 grados centígrados, y debe entregarse al laboratorio antes de 30 minutos posteriores a la obtención de la misma. El método coito interrumpido no debe ser aceptado ya que la contaminación de la vagina produce efecto negativo en la movilidad y supervivencia, además el riesgo de perder la primera parte del eyaculado en el cual se encuentra un mayor número de espermatozoides móviles activos. El paciente debe conservar abstinencia sexual de 2 a 5 días. (Abstinencias mayores de 10 días muestran un elevado porcentaje de espermatozoides inmóviles y morfológicamente alterados). El paciente no debe haber presentado episodios febriles recientes, ni haberse sometido o intervención quirúrgica reciente, o haber estado bajo prolongado tratamiento farmacológico (imidazoles, gonadotropinas, testosterona, corticoides, quimioterapias etc). En cualquiera de estos casos deberá aplazarse aproximadamente durante un ciclo espermatogénica, es decir setenta días. El paciente debe abstenerse de ingerir bebidas alcohólicas durante varios días previos a la recolección de la muestra. No de Revisión 00 01 02 03 04

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RECOLECCION DE MUESTRAS DE ORINA EXAMEN PARCIAL DE ORINA - UROCULTIVO Normalmente, sobretodo en la mujer, se encuentran bacterias en la porción distal de la uretra y el perineo. Estos microorganismos son contaminantes de la orina y deben evitarse mediante técnicas de recolección asépticas. 1. Limpiar la región peri uretral (extremidad del pene , labios ,vulva) por medio de dos lavados sucesivos con agua y jabón o un detergente liviano, enjuagando muy bien con agua esterilizada para quitar el detergente , mientras se mantiene retraído el prepucio o los pliegues de la vagina. 2. Limpiar la uretra, dejando pasar la primera parte de la micción la cual se desecha. 3. Recoger directamente en un frasco estéril la orina que se emite a continuación (Orina de segunda parte de la micción). 4. La orina recolectada se utiliza para cultivo y recuento de colonias. Como generalmente la orina favorecerá el crecimiento de la mayoría de los gérmenes urinarios patógenos (al igual que los medios de cultivo rutinarios) es absolutamente necesario que el cultivo de orina se realice de la primera hora posterior a su recolección o que se mantenga en refrigeración (4 grados centígrados) hasta el momento de su procesamiento. RECOLECCION DE MUESTRAS DE ORINA EN NIÑOS En niños, puede utilizarse una bolsa de plástico estéril colectora de orina (producto comercial). La bolsa se colocará después de haber lavado los genitales adhiriéndola a la piel por medio de un anillo adhesivo. Si no es posible recolectar orina en los 45 minutos, deberá cambiarse la bolsa por una nueva. RECOLECCION DE ORINA DE 24 HORAS 1. Orinar por la mañana al levantarse y anotar exactamente la hora (esta muestra no se

recolecta) 2. Recolectar las muestras posteriores de orina (mañana, tarde y noche) en el recipiente que debe adquirir el usuario (Garrafa de agua) el cual debe ser preferiblemente de color opaco, conservar el frasco en nevera, durante el estudio (4 grados centígrados). 3. Al día siguiente exactamente a la misma hora en que la orina fue desechada el día anterior, se recoge la última muestra. No de Revisión 00 01 02 03 04

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4. Es importante tener cuidado al vaciar la orina en el frasco para que no se pierda nada

de ella. En caso de olvidar recolectar parcial o totalmente alguna muestra deberá iniciarse nuevamente la recolección. MATERIA FECAL (COPROLOGICOS, COPROSCOPICOS) 1. Recolectar la muestra en recipiente estéril de boca ancha y con tapa. 2. Procesar la muestra antes de dos horas. Si esto no es posible, mantener las muestras en refrigeración a temperatura de 4 grados centígrados. 3. Se pueden realizar tinciones de láminas, investigación de amebas y otros parásitos, coprocultivos, coprológicos, coproscópicos, estudios de investigación de grasas, procedimientos inmunológicos, etc. PRUEBA DE CINTA PEGANTE O ADHESIVA (PRUEBA DE GRAHAM) 1.- Procedimiento recomendado en la investigación de oxiuros (Enterobius). 2.- Colocar cinta adhesiva en la región perianal del paciente (Método de especial utilidad en niños). 3.- Dado que la hembra del parásito deposita los huevos en las horas de la noche y en la región perianal, aplicar la cinta adhesiva antes de acostarse y retirarla por la mañana, antes de que el paciente se levante de la cama. 4.- Presionar la superficie adherente de la cinta sobre una lámina portaobjetos de vidrio. Continuar con el procedimiento de observación al microscopio. SANGRE OCULTA EN MATERIA FECAL 1.- El paciente debe abstenerse de ingerir carnes rojas, rabanos, chorizos, morcillas (rellenas) etc., durante por lo menos tres (3) días antes del examen. 2.- La muestra de materia fecal recolectada no debe haberse expuesto a contaminación con orina. 3.- Las muestras seriadas durante algunos días aumenta la exactitud del examen. 4.- Generalmente se obtienen resultados falsos positivos en pacientes con hemorroides.

MUESTRAS VAGINALES 1.- Indicar a la paciente que el día de examen, no debe hacerse baño de ducha vaginal. 2.- Explicar a la paciente el procedimiento que se le practicará. 3.- Introducir el escobillón, asegurarlo correctamente. (Si la paciente es una niña utilizar especulo virginal). Advertir a la persona responsable de la niña sobre el procedimiento No de Revisión 00 01 02 03 04

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que se realizará. Si la paciente es mayor y niega haber tenidos relaciones sexuales, utilizar igualmente especulo virginal). 4.- No utilizar lubricantes que facilitan la introducción del especulo (Los lubricantes producen interferencias en los resultados). 5.- Medir PH vaginal. Anotar el resultado. 6.- Tomar muestra de exocervix y fondo del saco posterior con aplicador estéril. 7.- Tomar con un nuevo aplicador estéril, muestras de endocervix. Hacer frotis y extendidos para coloración de Gram. 8.- Procesar las muestras antes de dos horas.

LISTADO PRUEBAS ESPECIALES No.

EXAMEN

MUESTRA

1

ACTH ( HORMONA ADRENOCORTICOTROPICA

PLASMA+ EDTA ENVIAR CONGELADO

2

ACIDO FOLICO

SUERO CUBRIR DE LUZ DIRECTA

3

ACIDO VANILMANDELICO

ORINA 24 HORAS

4

ACIDO LACTICO

PLASMA+ EDTA ENVIAR CONGELADO

5

ADENOSIN DEAMINASAS ( ADA)

LIQUIDOS EN TUBO CITRATO (AZUL)

6

ALDOSTERONA

SUERO CONGELADO

7

ALFAFETOPROTEINA

SUERO

8

ANDROSTENEDIONA

SUERO

9

ANTICOAGULANTE LUPICO

PLASMA CITRATADO CONGELADO

10

ANTICUERPOS ANTICARDIOLIPINA G, M, A

SUERO

11

ANCAS

SUERO

12

ANTI DNA

SUERO

13

ANTI JO

SUERO

14

ACS ANTI MITOCONDRIA AMA

SUERO

15

ANTI RNP

SUERO

16

ANTI SM

SUERO

17

ANTI RO

SUERO

18

ANTI LA

SUERO

19

ANAS

SUERO

20

ANTI TIROIDEOS TIROGLOBULINICOS

SUERO

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No.

EXAMEN

MUESTRA

21

ANTITIROIDEOS MIROSOMALES

SUERO

22

ANTIGENO CARCINOEMBRIONARIO

SUERO

23

ANTIGENO PROSTATICO

SUERO

24 25

ANTIRROMBINA III BETA 2 MICROGLOBULINA

PLASMA CITRATADO CONGELADO SUERO

26

BETA HCG

SUERO

27

CA 153

SUERO

28

CA 199

SUERO

29

CA 125

SUERO

30

CALCIO

SUERO

31

CALCIO IONICO

TUBO TAPA AMARILLA GEL

32

CARMABAMAZEPINA

SUERO

33

CAROTENOS

SUERO PROTEGIDO DE LA LUZ

34

CATECOLAMINAS

ORINA 24 HORAS

35

CETOSTEROIDES 17

ORINA 24 HORAS

36

CISTICERCO IGG, IGM

SUERO

37

CITOMEGALOVIRUS IGG, IGM

SUERO

38

CLORO

SUERO

39

COLINESTERASA

SUERO

40

COMPLEMENTO HEMOLITICO CH 50

SUERO CONGELADO

41

COMPLEMENTO SERICO C3

SUERO

42

COMPLEMENTO SERICO C4

SUERO

43

COOMBS DIRECTO

SANGRE TOTAL EDTA

44

COMMBS INDIRECTO

SANGRE TOTAL EDTA + SUERO

45

CORTISOL AM

SUERO TOMAR 8AM

46

CORTISOL PM

SUERO TOMAR 4 PM

47

CORTISOL URINARIO

ORINA 24 HORAS

48

CHAGAS

SUERO

49

DEPURACION DE CREATININA

SUERO + ORINA 24 HORAS

50

DIMERO D

TUBO TAPA VERDE

51

ELECTROFORESIS DE PROTEINAS EN SUERO

SUERO

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No.

EXAMEN

MUESTRA

52

ELECTROFORESIS DE PROTEINAS EN ORINA

ORINA 24 HORAS

53

EPSTEIN BARR ACS IGG, IGM

SUERO

54

ERITROPOYETINA

SUERO CONGELADO

55

ESTRADIOL

SUERO

56

FACTOR IX

PLASMA CITRATADO CONGELADO

57

FACTRO V

PLASMA CITRATADO CONGELADO

58

FACTOR VII

PLASMA CITRATADO CONGELADO

59

FACTOR VIII

PLASMA CITRATADO CONGELADO

60

FACTOR VON WILLEBRAND

PLASMA CITRATADO CONGELADO

61

FACTOR X

PLASMA CITRATADO CONGELADO

62

FACTOR XI

PLASMA CITRATADO CONGELADO

62

FENITOINA

SUERO

64

FERRITINA

SUERO

65

FIBRINOGENO

PLASMA CITRATADO CONGELADO

66

FOSFOLIPIDPOS IGG, IGM

SUERO

67

FOSFORO

SUERO

68

FSH

SUERO

69

FTA ABS

SUERO

70

GGT

SUERO

71

HELICOBACTER PILORY IGG, IGM

SUERO

72

HEMOGLOBINA GLICOSILADA

SANGRE TOTAL EDTA

73

HEAPTITIS A IGG, IG

SUERO

74

HEPATITIS B HBAGS

SUERO

75

HEPATITIS B CORE IGG, IGM

SUERO

76

HEPATITIS C

SUERO

77

HERPER I IGG, IGM

SUERO

78

HERPES II IGG, IGM

SUERO

79

HIDROXICORTICOESTERIODES

SUERO

80

HIDROXIPROGESTERONA 17

SUERO

81

HIERRO SERICO

SUERO

82

HLA B27

TUBO TAPA VERDE 5

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No.

EXAMEN

MUESTRA

83

HORMONA DE CRECIMIENTO

SUERO

84

HORMONA LUTEINOZANTE

SUERO

85

INMUNOGLIOBULINA A, E, G, M

SUERO

86

INSULINA

SUERO

87

LITIO

SUERO

88

MAGESIO

SUERO

89

MONOTEST

SUERO

90

PTH

SUERO CONGELADO

91

PEPTIDO C

SUERO CONGELADO

92

POTASIO

SUERO LIBRE DE HEMOLISIS

93

PROGESTERONA

SUERO

94

PROLACTINA

SUERO

95

PROLACTINA POOL

SUERO

96

PROTEINA C DE LA COAGULACION

PLASMA CITRATADO CONGELADO

97

PROTIENA S DE LA COAGULACION

PLASMA CITRATADO CONGELADO

98

PROETINA DE BENCE JONES

ORINA RTENCION 3 HORAS /MAÑANA

99

PROETINURA 24 HORAS

ORINA 24 HORAS

100

RECUNETO DE HAMBURGER

ORINA RTENCION 3 HORAS /MAÑANA

101

RUBEOLA IGG, IGM

SUERO

102

SEROTONONA

ORINA 24 HORAS

103

T3

SUERO

104

T4T

SUERO

105

T4 LIBRE

SUERO

106

TESTOSTERONA TOTAL

SUERO

107

TESTOSTERONA LIBRE

SUERO

108

TIROBLOBULINA

SUERO

109

TORCH IGG, IGM

SUERO

110

TOPLASMA IGG, IGM

SUERO

111

TOXACARA

SUERO

112

TROPONINA T

TUBO TAPA VERDE

113

TSH

SUERO

No de Revisión 00 01 02 03 04

Fecha Mayo 2009 Junio 2012 Noviembre 2012 Agosto 2013 Marzo 2014

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No.

EXAMEN

MUESTRA

114

VITAMINA B12

SUERO PROTEGIDO DE LA LUZ

No de Revisión 00 01 02 03 04

Fecha Mayo 2009 Junio 2012 Noviembre 2012 Agosto 2013 Marzo 2014

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TRANSPORTE DE MUESTRAS OBJETIVO Establecer los procedimientos que se realizan en el trasporte de muestras, para garantizar que éstas lleguen en condiciones óptimas para que al final tengamos un resultado óptimo para el paciente. ALCANCE El siguiente manual se toma como referencia para el trasporte y remisión de muestras hacia el LABORATORIO DE REFERENCIA. RESPONSABILIDAD Es responsabilidad de las AUXILIARES DE LABORATORIO CLINICO Y PROFESIONAL EN BACTERIOLOGIA. El Laboratorio con el cual tenemos contrato tiene el siguiente protocolo de trasporte: 1. Tomar la muestra de acuerdo con el anexo anterior, la muestra debe estar perfectamente marcada. 2. Llenar el formato de remisión de muestras al Laboratorio de referencia. Las muestras deben estar entre 2-8°C de lo contrario es necesario tomar nueva muestra. 3. Transportar las muestras en una nevera clasificando si el envío es peligroso o no. En la parte externa de la nevera debe ir el logo UN3373 , nombre de quien envía y nombre del destinatario, número telefónico en caso de emergencia. Debe tener flechas que indiquen la manera que ésta se debe transportar para evitar que se derrame. REMISION DE MUESTRAS AL LABORATORIO DE REFERENCIA Realizamos el procedimiento descrito en el manual de calidad. 1. Tomar la muestra de acuerdo con el anexo, la muestra debe estar perfectamente marcada. 2. Llenar el formato de remisión de muestras al Laboratorio de referencia. Las muestras deben estar entre 2-8°C de lo contrario es necesario tomar nueva muestra. Embalaje, etiquetado y documentación para el transporte. No de Revisión 00 01 02 03 04

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Debido a los diferentes riesgos entre sustancias infecciosas y especimenes diagnósticos, los requerimientos de embalaje, etiquetado y transporte varían por cada uno de ellos. Los requerimientos para embalaje vigentes se describen a continuación. Varios sistemas de embalaje aprobados se pueden obtener comercialmente. El sistema consiste en tres capas. 1.

El recipiente primario. Un recipiente estanco aprueba de filtraciones, preferiblemente plástico, con tapa tipo rosca que cierre herméticamente, etiquetado que contiene el espécimen. El recipiente se envuelve en material absorbente suficiente para absorber todo el fluido en caso de ruptura, que puede ser toallas de papel o algodón.

2.

Recipiente secundario. Este recipiente protege el recipiente primario. Se pueden colocar varios recipientes primarios envueltos, en un recipiente secundario. Se debe usar suficiente material absorbente para proteger a todos los recipientes primarios y evitar los choques entre ellos. El recipiente secundario puede ser de cartón o icopor.

3.

Paquete externo de envío. El recipiente secundario se coloca en un paquete de envío que protege el recipiente secundario y su contenido de los elementos externos, tales como daño físico y agua, mientras se encuentra en tránsito. Este empaque externo puede ser cartón o icopor principalmente. Los formularios con datos del espécimen, cartas y otras informaciones que identifican o describen el espécimen y también identifican al remitente y el destinatario deben ser pegados con cinta adhesiva en el exterior Enviar cada muestra ( suero, plasma, sangre total etc) en un tubo de propileno suministrado por nuestro laboratorio, perfectamente marcado y cerrado con tapa rosca también de propileno, limpiar los tubos con hipoclorito de sodio al 0,1%, envolver cada tubo con material absorbente y una vez envuelto se coloca en envase rígido para proteger las muestras y si hay espacios entre estos, se llena con material absorbente(Esto aplica cuando se envían tubos por unidad). Las remisiones se colocan en bolsa plástica y Lugo se colocan en la nevera. Colocar una bala de hielo en gel.

Figura 1. Sistema Triple Básico Para Embalaje.

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Transportar las muestras en una nevera clasificando si el envío es peligroso o no. En la parte externa de la nevera debe ir el logo UN3373 , nombre de quien envía y nombre del destinatario, número telefónico en caso de emergencia. Debe tener flechas que indiquen la manera que ésta se debe transportar para evitar que se derrame.

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CONSERVACION DE MUESTRAS OBJETIVO Establecer los procedimientos que se realizan en la conservación de muestras, para garantizar que tengan las condiciones óptimas para que al final tengamos un resultado óptimo para el paciente. ALCANCE El manual se toma como referencia para la conservación de muestras en el laboratorio clínico de COLOMBIANA DE SALUD. RESPONSABILIDAD Es responsabilidad de las auxiliares del Bacteriología.

Laboratorio Clínico y de la profesional en

La bacterióloga es la encargada de procesar en horas de la mañana el área de microscopia ya que como se mencionó en cada POES estas muestras pueden sufrir alteraciones si no se procesan de manera oportuna: - Cuadros Hemáticos - Parciales de orina - Coprológicos - Coproscópicos - Frotis de Flujo Vaginal - Secreciones uretrales - KOH Las auxiliares centrifugarán las muestras de sangre para separar el coagulo del suero máximo una hora después de haberlas tomado. La bacterióloga las procesará. Una vez procesada la química se procede a desactivar las muestras y eliminar según protocolo de BIOSEGURIDAD.

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