Recogida de Muestras en Pediatría Sr. Juan Jareño Talero Supervisor de Urgencias Pediátricas del Hospital Son Dureta Palma de Mallorca Muestras de sangre venosa Finalidad Material Conserv./Transp. Procedimiento Observaciones Si se solicitan Material para técnica aséptica (Guantes Transporte urgente Coloque el torniquete unos Hemocultivo Microbiología estériles, Campo, etc...). cm. por encima de la zona a hemocultivos seriados. Sist. BACTEC Elija 3 zonas de punción Frascos de hemocultivo (Aerobios y La conservación de puncionar. Aplique técnica estéril de distintas. anaerobios). los frascos debe Deje ½ hora entre cada Sistema de extracción (Vacutainer o hacerse entre una Tª punción: jeringas y agujas). Desinfección de piel. extracción (Sí el inicio de 2-25 ºC. La conservación de Utilización de guantes del tratamiento es muy las muestras se estériles, campo, etc... urgente, puede hacer las No obtenga la muestra de realiza en estufa. extracciones cada 5 catéter (Sí se extrae a través minutos). El contenido máximo de de catéter, hágalo constar). Identifique las muestras. los frascos de adultos es de 10 cc. y 3 cc. para los pediátricos. Material para técnica aséptica. Transporte al CER. Coloque el torniquete unos Si es urgente tubo con Sistema de extracción (Vacutainer o Conservación a Tª cm. por encima de la zona a tapón verde (Heparina de Bioquímica jeringas y agujas). ambiente. puncionar. Litio). Aplique técnica estéril de Tubos (ver Observaciones) Si no es urgente tubo con punción: tapón amarillo (Silicona Desinfección de piel. separadora). Utilización de guantes Tubo con EDTA: Tubo Material para técnica aséptica. Transporte al CER. Sistema de extracción (Vacutainer o Conservación a Tª estériles. con tapón violeta. Hematología Identifique las muestras. jeringas y agujas). ambiente. Tubo con EDTA.

Finalidad Equilibrio Ácido Base

Iones

Metabolopatías

Muestras de sangre capilar Material Conserv./Transp. Material para técnica aséptica. Transporte urgente a la Unidad de Lanceta para punción. Procesamiento (Normalmente a Capilares heparinizados. MIVP). Tapones para capilares. En su defecto, transporte al CER. Imán. Conservar los capilares a Tª Varillas metálicas ambiente, protegidos de la luz, humedad y calor.

Material para técnica aséptica. Lanceta para punción. Capilares para iones. Tapones para capilares. Material para técnica aséptica. Lanceta para punción. Cartón secante de recogida de muestras

Procedimiento Observaciones El transporte debe Elija la zona a puncionar (Dedos o hacerse con una varilla metálica y talón). Aplique técnica moviéndose estéril de punción: continuamente con un Desinfección de piel. imán para evitar la Utilización de guantes coagulación. Puede utilizar vaselina estériles. Identifique las estéril para formar muestras. "una gota grasa". .

El transporte lo hacen normalmente los padres y se envían a la Conselleria de Sanidad. Conservar los capilares a Tª ambiente, protegidos de la luz, humedad y calor.

Debe de ponerse Elija la zona a muestra de sangre en puncionar todos los círculos del (Normalmente el cartón secante. talón). Aplique técnica estéril de punción: Desinfección de piel. Utilización de guantes estériles. Identifique las muestras.

Muestras de sangre arterial Observacione s Material para técnica aséptica. Transporte urgente a la Unidad de Elija la zona a Normalmente no Procesamiento (Normalmente a puncionar: se utiliza esta Equilibrio Ácido Jeringa de 2 cc. Jeringa y aguja de insulina. Radial (Técnica de MIVP). técnica, salvo en Base Anestesia local. En su defecto, transporte al CER. Allen). MIVP y por Venda de gasa para vendaje Conservar la muestra en un recipiente Humeral. extracción por Femoral. compresivo. con hielo o nevera. catéter arterial. Recipiente con hielo. Aplique técnica estéril Si ha quedado de punción: aire en la jeringa, Desinfección de piel. extráigalo sin Utilización de guantes quitar la aguja. La cantidad estériles. Si el paciente no es mínima de alérgico a la anestesia, sangre para una infiltre 0,3 cc. de gasometría es de anestesia sin adrenalina, 0,5 cc. evitando la formación del habón y masajee la zona 1-2 min. Heparinice la jeringa. Introduzca la aguja en la piel con un ángulo de 30-45º perpendicular a la arteria, avance 1-2 mm. y extraiga 2-3 cc. de sangre. Identifique las muestras. Finalidad

Material

Conserv./Transp.

Procedimiento

Muestras de punción lumbar Finalidad Material Conserv./Transp. Procedimiento Material para técnica estéril Transportar, lo antes posible, a Lávese las manos, (Guantes, talla, etc...). Microbiología o al CER colóquese mascarilla y 1 Kócher con torunda. Consultar si se requiere algún guantes. Cultivo Aguja de punción lumbar. Desinfecte la zona. conservante para técnica 3 tubos con rosca estériles. especial. Coloque al niño en Apósito adhesivo. decúbito lateral con la Anestésico local. cabeza flexionada y las rodillas en flexión sobre el abdomen. Jeringa y aguja de insulina. Recoja la muestra en los tubos estériles. Comprima la zona durante unos minutos. Desinfecte la zona y coloque apósito estéril. Identifique las muestras. Bioquímica

Observaciones El niño no habrá ingerido alimentos 3 horas antes de la punción (Sí es posible). La punción también se puede realizar en sedestación. Mantenga al niño en decúbito supino durante 30 min., controle las constantes vitales y punto de punción. Valore la aparición de signos de alarma, cambios en el nivel de conciencia, en la actividad motora u otros signos neurológicos.

Tiras para determinación de glucemia Finalidad Material Conserv./Transp. Procedimiento Conservar las tiras reactivas Elija la zona a puncionar Test de Glucemia Material para técnica aséptica. entre 2-30 ºC, en lugar seco (Dedo, oreja o talón). Lanceta para punción. y en condiciones normales Aplique técnica aséptica Tiras reactivas. de punción: de humedad.

Observaciones Recuerde comprobar siempre el código del aparato. Recuerde que no todos

Aparato de glucemia.

Finalidad Varios parámetros (Labstix)

Finalidad Cultivo

Anatomía Patológica

Finalidad Cultivo

Desinfección de piel. Utilización de guantes de un sólo uso. Deje fluir la sangre del punto de punción sin presionar la zona. Limpie y aproveche la siguiente gota. Extienda homogéneamente en la tira reactiva. Deje pasar el tiempo indicado y seque la tira. Introduzca la tira en el lector del aparato.

Tiras para Determinación de Varios Parámetros en Orina Material Conserv./Transp. Procedimiento Recipiente estéril y/o Conservar las tiras reactivas Una vez recogida la orina con bolsa de recogida de a Tª 30 ºC, en lugar seco y en técnica aséptica, ponga una gota orina estéril para condiciones normales de en cada parámetro de la tira niños. humedad. reactiva. Guantes de un sólo Espere el tiempo indicado para uso. cada parámetro. Esponjilla jabonosa.

los aparatos (Incluso los de la misma casa comercial), tardan el mismo tiempo en fijar los datos a la tira reactiva. • Determinados antisépticos pueden alterar los valores de la glucemia.

Observaciones Recuerde que no se necesita el mismo tiempo para activar cada parámetro.

Muestras de paracentesis abdominal Material Conserv./Transp. Procedimiento Observaciones Material para técnica estéril Transportar, lo antes posible, a Utilizar técnica estéril de Para las punciones abdominales, la vejiga punción. (Guantes estériles, talla, Microbiología. Colocar al paciente debe estar vacía con el fin etc...) . Jeringa de 2, 5 y 10 cc. incorporado y con los pies de evitar una punción Aguja IM y/o trocares. apoyados (Se puede utilizar accidental. Anestesia local. una mesa accesoria para Tubos con rosca estériles. que el paciente pueda descansar los brazos). Si es necesario, se puede Transportar, lo antes posible, a usar anestesia local. El Pediatra puncionará la Anatomía Patológica. Consultar para cada muestra el zona a extraer la muestra. Identifique las muestras. conservante necesario (S.F., formol, etc...).

Muestras de paracentesis torácica Material Conserv./Transp. Procedimiento Material para técnica estéril Transportar, lo antes posible, a Utilizar técnica estéril (Guantes estériles, talla, Microbiología. de punción. Colocar al paciente en etc...) . Jeringa de 2, 5 y 10 cc. sedestación. (Si el Aguja IM y/o trocares. paciente no puede Anestesia local. sentarse, colocarlo en

Observaciones La sedestación hará que el líquido, por acción de la gravedad, se sitúe en la cavidad pleural.

Tubos con rosca estériles.

Anatomía Patológica

Finalidad Cultivo

Sedimento

Transportar, lo antes posible, a Anatomía Patológica. Consultar para cada muestra el conservante necesario (S.F., formol, etc...).

posición de Fowler alta y girado hacia el lado sano). Si es necesario, se puede usar anestesia local. El Pediatra puncionará la zona a extraer la muestra. Identifique las muestras.

Extracción de orina por punción suprapúbica Material Conserv./Transp. Procedimiento Observaciones Material para técnica El transporte ha de realizarse entre Ayude al pediatra a sujetar Si es posible, recoja estéril (Antiséptico, gasas, 30 min. y 2 horas. al niño. 10-15 cc. de orina. La muestra puede conservarse en Prepare al niño para talla y guantes estériles, nevera. punción con técnica estéril. etc...). Aguja y jeringa. Una vez realizada la El transporte ha de realizarse antes punción, presione la zona de 6 horas. hasta que deje de sangrar. La muestra puede conservarse en Recipiente estéril. nevera.

Extracción de orina por sondaje vesical continuo Finalidad Material Conserv./Transp. Procedimiento Material para técnica El transporte ha de realizarse entre Deje la sonda pinzada Cultivo estéril (Antiséptico, gasas, 30 min. y 2 horas después de la durante 10 min. Recoja una muestra de talla y guantes estériles, estracción. La muestra puede conservarse en orina , mediante punción etc...). Aguja y jeringa. nevera. en el tapón habilitado en la Recipiente estéril. bolsa, previa desinfección con povidona yodada y deposítela en el recipiente El transporte ha de realizarse antes estéril. Identifique las muestras. de 6 horas. La muestra puede conservarse en Sedimento nevera. Orina de 24 Horas Bolsa de recogida de orina La muestra ha de conservarse en A las 7 h. del día del inicio, deseche la primera micción y/o frasco de orina de 2 l. nevera. Recipiente estéril. de la mañana. Recoja todas las demás Bolsa de recogida de orina micciones, incluyendo la y/o frasco de orina de 2 l. primera de la mañana del Recipiente estéril con 15 día siguiente. Catecolaminas Al finalizar la recogida de cc. de ácido clorhídrico orina homogeinícela, llene concentrado (Sí es un niño el frasco y anote la pequeño consulte la diuresis. cantidad de ácido con el Identifique las muestras. laboratorio).

Observaciones Si es posible, recoja 1015 cc. de orina.

El paciente no deberá tomar ninguna medicación durante los 3 días anteriores a la recogida de orina (Sí por O.M. sigue tomando una medicación indíquelo en el volante). Seguirá una dieta que no contenga: Vainilla y derivados, chocolate, cacao, té, plátano, coca-

cola, gotas o pulverizador nasal.

Finalidad

Cultivo

Extracción de Orina por sondaje vesical intermitente Material Conserv./Transp. Procedimiento Material para técnica de El transporte ha de realizarse entre Proceda a realizar cateterismo vesical 30 min. y 2 horas. cateterismo vesical con La muestra puede conservarse en técnica estéril. (Lubricante, gasas, talla y Recoja una muestra de nevera. guantes estériles, etc...) Sonda desechable estéril. orina y deposítela en el Recipiente estéril. recipiente estéril.

El transporte ha de realizarse antes Retire la sonda. Identifique las muestras. de 6 horas. La muestra puede conservarse en nevera.

Sedimento

Finalidad Cultivo

Extracción de orina por micción limpia Material Conserv./Transp. Procedimiento Recipiente estéril y/o bolsa El transporte ha de realizarse entre Limpie la zona con agua y jabón. de recogida de orina estéril 30 min. y 2 horas. La muestra puede conservarse en Enjuague con S.F. para niños. Guantes de un sólo uso. Seque con gasas estériles. nevera. Esponjilla jabonosa. La orina a recoger debe ser del chorro medio. Identifique las muestras.

El transporte ha de realizarse antes de 6 horas. La muestra puede conservarse en nevera.

Sedimento

Finalidad

Observaciones Recuerde las características propias si es un niño o una niña. Si es posible, recoja 10-15 cc. de orina.

Material

Obtención de muestras en heces Conserv./Transp. Procedimiento

Observaciones Si es un lactante o niño pequeño, le será de gran utilidad recoger la orina con bolsas estériles pediátricas. Recuerde que las bolsas han de cambiarse cada 20 min. y realizar la técnica de lavado tantas veces como se cambie la bolsa. Si es posible, recoja 10-15 cc. de orina.

Observaciones

Parásitos

Coprocultivos

Oxiuros

Sangre Oculta

Finalidad Cultivo Bioquímica

Finalidad

Siempre que sea posible el paciente no deberá tomar ningún medicamento ni ponerse un enema dos días antes de la prueba. Tres días antes hará una dieta pobre en residuos evitando: Hortalizas, frutas, legumbre secas, tubérculos y cereales. Siempre que sea posible el paciente no deberá tomar ningún medicamento ni ponerse un enema dos días antes de la prueba.

Guantes de un solo uso. Transportar, lo antes posible, Bote con medio de cultivo a Microbiología. La muestra debe guardarse a (Saf-fixative). Guantes de un solo uso. Tª ambiente. No conservar Bote con medio de cultivo en nevera. (Enteric-plus).

Evite la mezcla con orina. Lávese las manos y póngase guantes de un solo uso. Utilice la cucharilla adjunta a la tapa, introduzca 2-3 cucharillas de heces en el bote, sin sobrepasar la línea roja. Si las heces son sólidas debe recoger una muestra del principio, otra del medio y otra del final. Cierre correctamente el bote y agítelo. Identifique las muestras.

Porta de cristal. Cinta adhesiva transparente. Frasco de recogida de orina. Guantes de un solo uso

Lávese las manos y póngase guantes de un solo uso. Corte un trozo de cinta de 6-7 cm. de largo por 2 cm. de ancho. Presione con la superficie adhesiva sobre el lado derecho e izquierdo de los pliegues perianales. Retire el celo y péguelo en el porta , sin tocar la parte adhesiva con las manos. Introduzca el porta en el frasco de recogida de orina). Identifique las muestras. Impregne el papel del medio. Cierre la tapa y abra la parte inversa. Coloque una gota de reactivo. Lea la determinación de la prueba.

Guantes de un solo uso. Medio para determinación de sangre oculta en heces.

Extracción de jugo gástrico Material Conserv./Transp. Procedimiento Material para técnica de Transportar, lo antes Utilice técnica de cateterismo cateterismo nasogástrico. posible, al CER. nasogástrico para colocación Sonda nasogástricas de de la sonda. Aspire 20 cc. y deposítelo en calibre adecuado al niño. Jeringa de 20 cc. el frasco con rosca. Tubo con rosca estéril. Identifique las muestras.

Material

Obtención de muestras en exudados de heridas Conserv./Transp. Procedimiento

.

El paciente no comerá 1-3 días antes de la prueba: carnes rojas, dieta rica en fibras.

Observaciones Paciente en ayunas. Se puede estimular la secreción gástrica mediante inyección subcutánea de algún fármaco.

Observaciones

Guantes Transportar, lo antes desechables. posible, a Tubo de cultivo Microbiología. estéril. Escobillones estériles.

Cultivo

Finalidad Cultivo

Material Frasco recolector estéril de secreciones.

Lávese las manos y colóquese guantes de un solo uso. Destape la herida, abra el escobillón e introduzca el hisopo en la zona de mayor supuración y recoja el exudado rotando el escobillón. Retire el escobillón e introdúzcalo en el tubo cerrándolo herméticamente, evite el contacto con la piel que circunda la herida. Identifique las muestras.

Obtención de muestras en esputo Conserv./Transp. Procedimiento Transportar, lo antes Colocar al paciente en posición sentada. posible, a Microbiología. Favorecer la expectoración. Consultar el medio Se recomienda recoger el primer esputo de conservante (S.F., etc) a la mañana. poner para cada microorganismo.

No limpie ni aseptice la zona. Si es necesario el cultivo de varias zonas de la herida, utilice un escobillón para cada una.

Observaciones No utilizar antisépticos orales ni limpiar la boca. Si no es posible la expectoración, extraer por aspiración según procedimiento de aspiración de secreciones.

Obtención de muestras por extracción nasal Finalidad Material Conserv./Transp. Procedimiento Observaciones Guantes desechables. Transporte de la muestra a Lávese las manos y colóquese guantes Si es necesario recoger muestra Microbiología. de un solo uso. de las dos fosas, utilice dos Cultivo Tubo de cultivo Abra el escobillón e introduzca el estéril. escobillones e identifíquelos con Escobillones estériles. hisopo en la fosa nasal y recoja el la fosa a la que pertenecen. exudado rotando el escobillón. Retire el escobillón e introdúzcalo en el tubo cerrándolo herméticamente, evite el contacto con la piel que circunda la fosa nasal. Identifique las muestras.

Finalidad Cultivo

Obtención de muestras por extracción faríngea Material Conserv./Transp. Procedimiento Observaciones Guantes desechables. Transporte de la Lávese las manos y colóquese guantes de un La toma de muestra se

Tubo de cultivo muestra a estéril. Microbiología. Escobillones estériles.

Finalidad Cultivo

solo uso. realizará sin que el Abra la boca, puede ayudarse de un depresor paciente se haya limpiado lingual. ni aseptizado la boca. Abra el escobillón e introduzca el hisopo en la zona de la faringe de mayor supuración y recoja el exudado rotando el escobillón. Retire el escobillón e introdúzcalo en el tubo cerrándolo herméticamente, evite el contacto con la mucosa bucal. Identifique las muestras.

Obtención de muestras por extracción vaginal Material Conserv./Transp. Procedimiento Observaciones Escobillones estériles. Transportar, lo antes Prepare el material, lávese las La paciente, en ese día, no debe Gasas estériles. posible, a manos y póngase guantes lavarse los genitales ni aplicarse Guantes estériles. Microbiología. estériles. ningún tipo de crema o pomada. Con una gasa retire los genitales Cinco días antes se suspenderá el externos y con el escobillón recoja tratamiento antibiótico o la muestra de la zona de exudado. antimicótico. Identifique las muestras. Si es necesario, ayúdese con un especulo.

Finalidad Material Escobillones estériles. Cultivo Gasas estériles. Guantes estériles.

Obtención de muestras por extracción uretral Conserv./Transp. Procedimiento Transportar, lo antes Prepare el material, lávese las posible, a Microbiología. manos y póngase guantes estériles. Con una gasa retire el prepucio y con el escobillón recoja la muestra del surco o del meato uretral. Identifique las muestras.

Obtención de muestras por extracción ocular Finalidad Material Conserv./Transp. Procedimiento Cultivo Guantes desechables. Transporte de la muestra a Lávese las manos y colóquese Tubo de cultivo Microbiología. guantes de un solo uso.

Observaciones • El paciente, en ese día, no debe lavarse los genitales ni aplicarse ningún tipo de crema o pomada. • Cinco días antes se suspenderá el tratamiento antibiótico o antimicótico.

Observaciones Los frotis oculares deben realizarse por la mañana, antes de que el

estéril. Escobillones estériles.

Finalidad Cultivo

Material Guantes desechables. Tubo de cultivo estéril. Escobillones estériles.

Abra el escobillón e introduzca el hisopo en la zona de mayor supuración y recoja el exudado rotando el escobillón. Retire el escobillón e introdúzcalo en el tubo cerrándolo herméticamente, evite el contacto con la mucosa que circunda el ojo. Identifique las muestras.

paciente se lave los ojos. Si es necesario recoger muestra de los dos ojos, utilice dos escobillones e identifíquelos, indicando a que ojo corresponde cada exudado.

Cultivo de dispositivos intravasculares Conserv./Transp. Procedimiento Observaciones Transportar, lo antes Lávese las manos y colóquese No limpie ni aseptice la posible, a Microbiología. guantes de un solo uso. zona. Destape el apósito, abra el escobillón, introduzca el hisopo en la zona de inserción del catéter y recoja el exudado rotando el escobillón. Retire el escobillón e introdúzcalo en el tubo cerrándolo herméticamente. Evite el contacto con la piel que circunda la punción. Si es necesario puede cultivar la punta del catéter, manteniendo técnica estéril. Identifique las muestras.