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Resúmenes del Seminario...

VOLUMEN 4 – EJEMPLAR 04

Abril , 1999

RESUMENES DEL SEMINARIO SOBRE TECNICAS DE PREVENCION DEL VIRUS MANCHA BLANCA / WHITE SPOT (WSSV) Y VIRUS CABEZA AMARILLA / YELLOW HEAD (YHV) Ciudad de Panamá, Abril 8-10, 1999. Expositores: Dr. Ernesto Quintero (Panamá) Dr. Tim Flegel (Tailandia) Dr. Dan Fegan (Tailandia) Dra. Victoria Alday de Graindorge. (EU-CENAIM-ESPOL-CAMARA) Dr. Paul Frelier (USA) Dr. Fernando Jimenez (México) La dispersión de virus de camarones peneidos en Centro América y las perdidas económicas que están afectando a países como Honduras, Nicaragua, Guatemala y Panamá ha motivado la convocación de este seminario auspiciado por la ASOCIACION PANAMEÑA DE ACUICULTORES y DIRECCION ACUICOLA DEL MINISTERIO DE DESARROLLO AGROPECUARIO (MIDA). El evento fue organizado por el grupo de Ferias, Congresos y Eventos, S.A. (GFCE, S.A.) Con la participación de los ponentes arriba mencionados, se han expuesto temas como: a) Generalidades sobre la biología de los principales agentes infecciosos en camarones; b) Introducción al virus de síndrome mancha blanca (WSSV-white spot) y Virus cabeza amarilla (YHV – Yellow Head), c) Impacto de la enfermedad del virus síndrome mancha blanca (WSSV-white spot) en la producción del camarón en granjas del Asia; d) Técnicas de Diagnostico para la detección del virus síndrome de la mancha blanca (WSSV-white spot) y virus cabeza amarilla (YHV – Yellow Head); e) La importancia de la interpretación de los resultados del PCR; f) Programa de contingencia para la prevención de enfermedades virales de camarones peneidos en México; g) Estrategias de manejo para el síndrome de la mancha blanca (WSSV-white spot) y virus cabeza amarilla (YHV – Yellow Head); h) Experiencia sobre el síndrome de la mancha blanca (WSSV-white spot); i) Teoría de la acomodación activa de los virus en el camarón; j) Resultados de muestras de campo realizadas en Panamá; k) Recomendaciones para una política de control y manejo; y l) Taller para desarrollar una estrategia de control y manejo para América. En éste número hemos considerado un resumen relacionado al SINDROME DE LA MANCHA BLANCA (WSSV) apremiados en informar la gravedad del caso, pero comprometiéndonos a continuar informando en el Boletín de Mayo (Vol. 4, No.5), sobre el VIRUS DE LA CABEZA AMARILLA ó YHV – YELLOW HEAD VIRUS y otros temas que no han sido incluidos en esta publicación. SITUACION ACTUAL DE LA PRODUCCIÓN Y VIRUS DE MANCHA BLANCA (WSSV) - Las perdidas por exportaciones tailandesas en 1996 fueron de aproximadamente US$ 500 millones. - Las perdidas estimadas para 1997 fueron del orden de los US$600 millones. - Las perdidas en Asia para 1996 pueden ser del orden de US$2 mil millones. - La producción de Tailandia fue alrededor de 160,000 TM para 1996, 137,000 TM en 1997; pero a pesar de la enfermedad de las manchas blancas (WSSV), ha continuado aumentando hasta colocarse en el orden de las 210,000 TM para el año 1998 con aproximadamente 70,000 Ha en producción. - Continua siendo la principal causa de enfermedades en camaroneras de Tailandia.

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- Pero la creciente aparición de reportes de manchas blancas no relacionadas con el WSV hacen que los diagnósticos de campos basados sobre esto sean cuestionables. - Aun así, las mejoras en la detección permite un mejor control de postlarvas - Y aunque el tratamiento de este virus y muchos mas no es posible, los programas de prevención son los únicos controles efectivos. - Por otro lado, el manejo del ambiente del estanque puede minimizar el impacto de la enfermedad - Además, esto asegurado con el abastecimiento de semilla libre de enfermedad y fuente de abastecimiento de agua de buena calidad, es posible que se pueda lograr un cultivo sostenible.

DIFERENCIAS DE LA ACTIVIDAD CAMARONERA ENTRE ASIA Y LATINO AMÉRICA Asia !"Granjas menores a 2 Ha !"Bajo nivel de sofisticación !"Poca cooperación entre laboratorio y granja !"Pocos métodos estandarizados !"Poca atención en higiene

Latino América !" Granjas mayores a 100 Ha !" Bajo nivel de sofisticación !" Mas cooperación entre granja y laboratorio !" Más métodos estandarizados !" Mucha atención a higiene

VIRUS DE LA MANCHA BLANCA (WSSV) Se conoce que mas de 40 especies de crustáceos son transportadores potenciales del virus de la mancha blanca, los cuales han sido detectados por medios de químicos del DNA. Las infecciones son letales para algunos pero para otros no. Todos los camarones cultivados son susceptibles con alta mortalidades. Los transportadores, principalmente los asintomáticos como los cangrejos son peligrosos para los camaroneros y actualmente se están realizando pruebas con muchas especies para ver si ellos transfieren el virus hacia el camarón. Características Generales.- Baculovirus con una cadena de DNA. Morfometría del Virus: 70-150 por 250 a 380 nm Rango de Hospedero: Infección natural en P. monodon, P. japonicus, P. chinensis (= orientalis), P. indicus, P. merguiensis, P. setíferus, P. vannamei. P. stylirostris. Infección experimental en P. setiferus, P. vannamei, P. stylirostris, P. aztecus y P.duorarum Histopatología: Cuerpos de inclusión intranucleares, prominentes, que van desde los eosinofilos hasta basófilos (tinción H-E), Fulgen positivos, nucleos hipertrofiados de las células del epitelio cuticular y tejido conectivo. Principales Signos Clínicos: Letárgicos, nado lento sobre la superficie, coloración del cuerpo de rosado a pardo rojizos, expansión de los cromatóforos, muere en el fondo y borde de los muros del estanque, rangos altos de mortalidad aguda acumulativa llegando al 100%, dentro de los primeros 3 a 10 días de iniciado los signos clínicos; aunque puede ocurrir durante cualquier momento de la campaña (mediana = 90 dias). Cuando el síndrome del virus se presenta en forma crónica ocurre mortalidad pero no es completa, aparecen pequeñas cantidades de camarones muertos con manchas blancas en cada muda y pareciera que la infección no se ha dispersado en el estanque; si ocurrieran fuerte factores de estrés, las mortalidades se incrementan rápidamente. Las manchas blancas presentan tamaño de 0.5 a 2 mm de diámetro en el interior de la superficie de la cutícula del cefalotorax y sexto segmento abdominal (ver dibujo), resultado de depósitos anormales de sales de calcio.

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A la observación del exoesqueleto con microscopia de polarización, se pueden determinar los depósitos anormales de calcio en camarones vivos. El tamaño menor puede ser de 0.5 mm de las manchas blancas. Modo de Transmisión de Virus Exóticos: • Importación de camarones vivos en todas sus fases de desarrollo para uso en acuicultura • Importación de Insumos para acuicultura tales como artemia, poliquetos, etc. • Importación de camarón y otros crustáceos crudos y congelados a plantas maquiladoras y para consumo humano. • Utilización de camarón (otros crustáceos) importados para uso como carnada y alimento fresco. • Lastre de barcos de carga provenientes de zonas endémicas. • Fenómenos meteorológicos (huracanes, ciclones, tornados, etc.)

RECOMENDACIONES GENERALES PARA EVITAR LA CONTAMINACIÓN DEL MEDIO AMBIENTE CON VIRUS EXÓTICOS En caso de siniestro donde se presenten mortalidades de origen desconocido es importante 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8.

Identificar con precisión el agente causal No desechar el agua de los estanques Aplicar cloro al agua de los estanques Dar aviso a las autoridades competentes Cuarentenar la camaronera Monitoreo sanitario de camarones y otros crustáceos silvestres Solicitar apoyo de las autoridades gubernamentales y financieras Confinar los desechos de camarones, crustáceos y otros organismos en fosas para ser incinerados o clorados, principalmente en las plantas de procesamiento

Se pueden presentar casos asintomáticos por enfermedades virales; de ser así se recomienda cosechar inmediatamente siguiendo las indicaciones anteriores.

ESTRATEGIAS DE MANEJO DEL VIRUS DE LA MANCHA BLANCA EN ASIA Se debe tener en cuenta que algunas recomendaciones son hechas para P. monodon, y sistema intensivo, por lo que algunas tendrían que adaptarse para la especie que se cultiva en América, P. vannamei.

Recomendaciones para Laboratorios Productores de Semilla I • • •

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Iniciar un programa de protección y formación de bancos de germoplasma de camarón en zonas sin influencia marina Para establecer lotes de reproductores, seleccione sementales de camarones nativos de ciclo cerrado que reúnan las mejores características de la región y que estén libres de patógenos (SPF). Es preferible no usar SPR (resistentes a los patógenos): - Ya que pueden estar aún infectados - El potencial de transmitir infección del SPR a lotes nativos es mayor - La posibilidad futura de restricciones para camarones vivos y sus derivados Limitar el uso de sementales silvestres. Establecer programa de certificación de sementales de camarón. Certificación sanitaria de semilla (Nauplios, Pls.)

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Cuando se ejecute el tamizado de reproductores, es ideal que se seleccione solamente los reproductores que son negativos al virus por PCR u otro método (muestra de hemolinfa o pleópodos) A nivel de Laboratorios, el manipuleo de Huevos/Nauplios debe considerar su lavado con agua corriente Durante la corrida larval, mantenga condiciones óptimas y descarte lotes infectados En la alimentación de reproductores, evite alimentos de alto riesgo como son: - Cangrejos y Krill: son transportadores directos del virus - Ostras/almejas: pueden ser portadores pasivos - Calamar: La carne del calamar debería ser segura, pero el calamar entero (intestino, cabeza, etc.) es un riesgo. - Poliquetos: Evidencia inicial sugiere la posibilidad de ser portadores sanos Los alimentos balanceados pelletizados: Son seguros debido a su alta temperatura de proceso

Recomendaciones para Laboratorios productores de Semilla II • • • • • •

Establecer programas de desinfección periódica de todas las instalaciones del laboratorio Construcción de tapetes sanitarios a la entrada de las instalaciones Restringir la entrada de personal y vehículos a las distintas áreas de producción del laboratorio Control de fauna nociva (roedores, perros, etc.) Disposición de basura en lugares aislados (evitar reciclar cajas y empaques de Pls, etc.). Evitar la contaminación de los tanques con herramientas de trabajo (redes, vasos de precipitado, etc.)

Recomendaciones para Laboratorios Productores de Semilla III • • • • •

Establecer programas de desinfección de huevos y nauplios (ejem. Yodo 100 ppm por espacio de 30 seg. a un minuto). Establecer programas de pruebas de estrés para Pls (ejem. Formol 100-150 ppm por espacio de 30 minutos, tal como se recomendó anteriormente). Vigilar la calidad de los alimentos para los sementales y Pls (evitar el uso de insumos riesgosos). Incrementar el uso de inmunoestimulantes y vitamina C. Vigilar la calidad de agua que es usada en el laboratorio, y tratar las aguas de descarga.

Recomendaciones para granjas de engorde de Camarón I Selección de Post Larva #"Seleccione de una fuente confiable #"Coopere con proveedores de larva usando saludables protocolos de manejo y prevención de enfermedades. #"Lleve a cabo Evaluaciones de Control de Calidad de PL #"Use métodos estándares, test de estrés #"Rechace PL sub-estandares #"Use solo PL monitoreada #"La post larva seleccionada a través del PCR tiene menor riesgo de infección #"Seleccione el tamaño de muestra adecuada para la detección. #"Para el test de PCR, un mínimo de 150 PL por tanque larval (tamaño de lote mayor a 100,000) Preparación de Estanques • • •

Monitoreo sanitario permanente en estanques y zonas aledañas (en especial cundo se presentan signos sugestivos de éstas enfermedades). Uso de semilla certificada de laboratorio (verificar su origen). Preparación de estanques: - Post cosecha (encalado para control de pH del fondo y limpieza, arado, etc.) - Presiembra (desinfección previa con cloro, etc.) #" Preparación de reservorio y canal de abastecimiento (desinfectar y eliminar fauna de riesgo).

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#" Tratamiento de Formalina Antes de Sembrar: Es usado para separar postlarvas no saludables: ♦ Coloque alrededor de 1000 PL por litro dentro de un tanque de fibra con agua del estanque ♦ Airee fuertemente ♦ Agregar 100 a 150 ppm de formalina y deje por 30 minutos ♦ Mueva el agua del tanque de tal manera que la larva débil y muerta se congregue al centro del fondo del tanque ♦ Sifonee la larva moribunda y muerta ♦ Estoquee solamente la larva con nado activo remanente #" Durante el engorde: tratamiento de la columna de agua (ejem. Formol 30 ppm). ♦ Tamizar el estanque a través del uso progresivo de mallas finas en las entradas de agua, canales laterales y compuertas. ♦ En las compuertas de entrada de bombeo use mallas de 2 cm para evitar el ingreso de cangrejos y peces grandes ♦ Entradas, compuertas laterales, use mallas de 2 mm a 1 cm. ♦ En las compuertas de entrada al estanque use malla mosquitera de 2mm a 2 cm de trama ♦ Use bolsas malleras múltiples para el llenado del estanque (3 a 4 capas de mallas mosquitera) ♦ Evitar hacer recambios de agua (solo mantener niveles) Los productos químicos que se pueden usar para el tratamiento del agua incluyen: Cloro #"El cloro es usado para matar portadores a una concentración de alrededor de 30 ppm de cloro activo #"Esto generalmente requiere 300-400 Kg/Ha #"Si los portadores sobreviven, es necesario un segundo tratamiento #"Ventajas: Efecto general en todos los organismos #"Desventajas: Tóxico, difícil de aplicar, caro, la efectividad varia con la calidad del agua, especialmente materia orgánica. Insecticidas #"Use insecticidas con baja persistencia tal como el dichlorvos #"La tasa depende del tipo de insecticida usado. #"Ventajas: Fácil de aplicar, manipuleo seguro, fácil de mezclar, barato #"Desventajas: Toxicidad específica a los insectos y crustáceos, los peces no son afectados, altamente tóxico para el camarón, riesgo de contaminación #"Cuidados: ♦ No use insecticidas persistentemente ♦ Haga un bioensayo con el camarón antes de usarlo ♦ Establezca reglamentaciones legales para su uso ♦ No los use en los alrededores de estanques sembrados ♦ No los esparza para evitar regarlo a otras granjas

Recomendaciones para granjas de engorde de camarón II •

Minimizar el estrés, adoptando practicas de manejo buenas, saludables y evitando: - Altas salinidades - Cambios bruscos de pH - Sembrar en meses de temperaturas frías - Niveles bajos de oxígenos - Sobrealimentación - Altas concentraciones de amonio, amoniaco, nitritos, etc.

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Se recomienda el uso de: Bandejas de alimentación para manejar y controlar el alimento, condiciones del camarón; y además, mantener la calidad del fondo del estanque. - Alimentos de buena calidad enriquecidos con vitamina C - Inmunoestimulantes - Fertilizantes inorgánicos para favorecer el pastoreo No alimentar con desperdicios orgánicos riesgosos (peces, crustaceos, moluscos, etc.). No recambio de agua en los primeros 60 días si no es necesario Cuando tome decisiones tenga en cuenta el riesgo.

Recomendaciones para Granjas de Engorde de Camarón III •

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Restringir el bombeo de agua cuando: - Se realicen trabajos de dragado cerca de la granja - Se presenten precipitaciones pluviales importantes - Se realicen labores de fumigación cerca de la zona Evitar la contaminación de los estanques con herramientas de trabajo ( redes, botas, atarrayas, baldes, etc.) Restricción de la entrada a la granja de vehículos y personal (construcción de tapetes sanitarios). Disposición de basura en lugares aislados (cajas y empaques de post larvas, bolsas de alimento, etc.) Control de fauna nociva (aves, perros, etc.), ya que ellos pueden dispersar los virus de estanque en estanque.

TECNICAS DE DIAGNOSTICO PARA WSSV Pueden utilizarse las siguientes: - Signos externos - Técnicas rápidas - Histología - Técnicas de DNA (sondas genéticas de DOT BLOT) - Microscopio electronica La técnica a utilizar dependerá del propósito de diagnostico, el cual puede ser para: - detectar brote epidémico Detección de la presencia del virus. El brote epidémico a través de los signos externos se caracteriza como: a) anomalía, b) inespecifico, c) no puede usarse como método de diagnostico.

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CARACTERISTICAS DE LAS TECNICAS DE DIAGNOSTICO PARA EL WSSV TECNICA Signos externos

Técnicas rápidas - Pueden realizarse en la granja. - Dan respuesta en 1-2 horas - Un resultado positivo confirma la enfermedad - Un resultado negativo: no confirma la enfermedad, requiere el uso de otra técnica - Existen dos: a) Fijación rápida de branquias: permite indetificar WSSV, YHV, IHHNV, vibriosis b)Frotis de Hemolinfa (Será descrito para YHV en el boletín Vol. 4, No. 5) Histología - Da gran información: visión global de la salud del animal - Lenta (36 HORAS) - Muestras: Animales vivos, mantenerlos en agua hasta que se injecten con solución Davidson - Transferir a 50% etanol después de 24-72 horas y enviar a procesar Técnicas de DNA - No son necesarias durante un brote epidémico - Kit de dot blot, rápido y relativamente sencillo, permite la detección del fragmento virico sobre una membrana con muestra - Hibridación in situ. Sobre una sección de tejido-estudio de ruta de infección - PCR / RT-PCR: permite la detección y amplificación del fragmento virico - “Doble PCR / RT-PCR”: Permite una doble sensibilidad sobre la misma muestra Microscopia electrónica - En el caso de un brote epidémico se utiliza únicamente para confirmar la etiología de una nueva enfermedad

WSSV (VIRUS MANCHA BLANCA) Inclusiones blancas que no pueden quitarse al rascar, depósitos de calcio. Inclusiones intranucleares

Histopatologia Se debería observar Inclusiones intranucleares basofilicas, primera etapa tipo Cowdry A, junto con núcleo hipertrofiado en su ultima etapa para confirmar el WSSV Se observa las secciones secuenciales, con ayuda de tinción H&E e hibridación positiva, el color oscuro muestra reacción positiva.

Se observa la estructura del tejido infectado y partículas víricas.

Con las técnicas rápidas e histología se pueden apreciar a nivel celular las lesiones y cambios causados por el virus y la extensión de la lesión. Mientras que con las técnicas de DNA, las cuales actúan a nivel molecular, se detecta la presencia del DNA del virus pero no se llega a conocer la extensión de las lesiones. Las ventajas que ofrecen estas técnicas es que son muy sensibles y especificas. Entre todas las técnicas utilizables existen ciertas ventajas y desventajas. Así muchas veces los signos externos no van a estar presentes en el organismo afectado; las técnicas rápidas no son lo suficientemente sensibles; la histología no es suficientemente sensible; la microscopio electrónica es inadecuado; mientras que las técnicas de DNA son necesarias y rápidas siendo de gran utilidad para las certificaciones. DESCRIPCION DE TECNICA RAPIDA DE DIAGNOSTICO PARA WSSV Fijación rápida de branquias:

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Esta técnica permite identificar WSSV, YHV, IHHNV, vibriosis generalizada, micosis, bacteria y parásitos epibiontes. Todo el procedimiento se realiza en un tubo eppendorf u otro contenedor pequeño para ahorrar en químicos. Técnica: 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. 12.

Se toma una muestra de branquias y se coloca con fijador Davidson-HCl (se sustituye el acido acético glacial con HCl) durante 1 hora. Se tiñe con Hematoxilina y eosina. Se lava con agua corriente en movimiento durante 15 minutos (se cubre la boca del tubo con una gasa para que el tejido no flote y se sumerge en el tubio). Se vacía. Se añade etanol 100% durante 1 min., se vacía y se repite dos veces mas. Se añade etanol al 95% durante 1 min., se vacía y se repite 2 veces mas. Se lava con agua corriente en movimiento durante 10 min. Se añade hematoxilina durante 10 min y se vacía. Se lava en agua corriente en movimiento durante 15 min. Se añade eosina durante 2 min. y se vacía Se añade etanol 95% durante 1 min., se vacía y se repite 2 veces mas Añadir xileno durante 30 segundos, se vacía y se repite 2 veces mas. Montarlo en una placa portaobjeto y cubrir.

DESCRIPCION Y DESARROLLO DEL PCR Consiste en: -

Aislamiento del virus, mediante su purificación Se corta un fragmento y se consigue su secuencia Se diseñan los “primers” (moléculas de los virus): y se obtienen segmentos complementarios en ambos extremos del fragmento.

Proceso del PCR I: -

Separación de las dos hebras de DNA (“primer”) Acoplamiento de los dos primeros en los extremos del fragmento conocido Añade una polimerasa que toma las bases que añadimos y replica el fragmento del virus entre los dos primers Este proceso se repite entre 30 y 40 ciclos. En cada ciclo, la polimerasa duplica la cantidad del DNA objetivo copiado (amplicon)

Proceso del PCR II: -

En cada ciclo, se duplica la cantidad de fragmento virico (amplicon) 30 La cantidad de amplicon aumenta exponencialmente (ej. 30 ciclos de 3 min. producen 2 copias) El amplicon es detectado por electroforesis de gel.

Ventajas del PCR: - En reproductores permite obtener nuestras no letales como: hemolinfa, pleopodo o heces. - Permite detectar posibles hospedadores e infecciones leves o principio de infección - Sirve para monitorear la post-larva antes de la siembra - El tamaño de la muestra debe ser significativo estadísticamente. - Esta tecnología ahora es aplicada ampliamente. Inconvenientes del PCR: !" Gran riesgo de resultados falsos: - Positivos: contaminaciones - Negativos: inhibiciones, exceso de DNA, DNA degenerado

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!" Necesita estandarización: - Distintos protocolos - Distintos primeras !" Para la correcta interpretación se necesita personal latamente especializado.

INSTRUCCIONES PARA LA TOMA DE MUESTRAS PARA PCR: Usar etanol al 95% (en agua destilada). La proporción aproximada: 1 parte de muestra : 9 de etanol. Se puede utilizar otras soluciones preservantes como tampón CTAB u otros tampones de lisis y/o tejido congelado de camarón vivo para obtener muestras para PCR, pero en todo caso siempre es mas económico y mas fácil de adquirir el etanol. El numero de animales por muestra dependerá del tamaño de la población. Tome la muestra según la tabla siguiente:

Tamaño de la población 50 100 250 500 1000 1500 2000 4000 10,000 100,000 o más

Tamaño de la muestra 50 75 110 130 140 140 145 145 145 150

Tejido para la muestra - Reproductores: un pleopodo por animal - Larva – postlarva: entera - Juveniles: pleopodo o segmento con las branquias (entero, no branquias abdominales ¿Que animales tomar? Dependerá del propósito del muestreo: - Si el muestreo es para confirmar la presencia del virus: seleccione camarones débiles o de apariencia enferma. - Si el muestreo es para conocer el grado de infección: tomar una muestra aleatoria (al azar) Acciones a tomar: - Si el camarón es pequeño, destruir el lote - Si el camarón es de tamaño grande, coseche inmediatamente tan pronto como aparezcan los sintamos. - Si no es posible cosechar, el tratamiento con formalina (20-40 ppm) puede retardar la mortalidad por unos cuantos días hasta que se lleve a cabo la cosecha (Restricción; si persiste la formalina, el lote quizás no se pueda vender.

PROGRAMA DE CONTINGENCIA PARA PREVENCIÓN DE ENFERMEDADES VIRALES DE CAMARONES PENAEIDOS Políticas Generales de Control •

Regular y vigilar el movimiento en territorio nacional de camarones en todas sus fases de desarrollo para uso en acuacultura.

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Regular y vigilar el movimiento en territorio nacional de camarones y otros crustáceos de importación o de estados del sur de México a plantas procesadoras de mariscos. Monitoreo sanitario de camarones y otros crustáceos.

Acciones de Prevención en México: Aplicación de Normas Oficiales Mexicanas • NOM-010-PESC-1993 “ Que establece los requisitos sanitarios para la importación de organismos acuáticos vivos en cualquiera de sus fases de desarrollo, destinados a la acuacultura u ornato , en territorio nacional”, Diario Oficial de federación, 16 de Agosto de 1994 • NOM-011-PESC-1993 “ Para regular la aplicación de cuarentenas, a efecto de prevenir la introducción y dispersión de enfermedades certificables y notificables, en la importación de organismos acuáticos vivos en cualesquiera de sus fases de desarrollo, destinados a la acuicultura y ornato en los Estados Unidos Mexicanos”, Diario Oficial de la Federación, 16 de Agosto de 1994. • NOM-002-PESC-1993 “Para ordenar el aprovechamiento de las especies de camarón en aguas de jurisdicción federal de los Estados Unidos Mexicanos”,Diario Oficial de la Federación, 31 de Diciembre de 1993. • NOM-EM-001-PESC-1999 “Que establece los requisitos y medidas para prevenir y controlar la introducción y dispersión de las enfermedades virales denominadas Mancha Blanca, white spot baculo virus (WSBV) y Cabeza Amarilla, yellow head virus (YHV)”. Diario Oficial de la Federación, 19 de Marzo de1999.

Acciones de Prevención en México: Extensionismo • • • • • •

Reuniones informativas con productores, sector financiero, asociaciones de acuacultores, plantas procesadoras de mariscos e instituciones de investigación y educación superior. Coordinación entre las secretarias de estado (Ministerios) Cursos de capacitación para la homologación de técnicas de diagnóstico: #"Nacionales. A través del sistema de red de diagnóstico #"Internacionales. Estancias de entrenamiento en el C.N.S.A. Acciones internacionales que México ha promovido desde 1996 para alcanzar un consenso con Norte, Centro y Sudamérica en materia de regulación e sanidad acuícola. Elaboración de boletines informativos y un cartel alusivo a éstas enfermedades (en preparación). Búsqueda de apoyo ante las autoridades financieras y el gobierno para contingencias provocadas por WSBV y YHV.

Aspectos Sobresalientes de la Norma de Emergencia. NOM-EM-001-PESC1999. I •

Regula: - La importación y movilización de camarones en todas sus fases de desarrollo. - Certificación individual de sementales. - Establecimiento de unidades de cuarentena para sementales de camarón. - Doble certificación de semilla (Nauplios, Pls.). En el laboratorio y granja (salas de aclimatación) - Establecimiento de un “cerco sanitario” en los Estados del sur de México. - Certificación de insumos utilizados en laboratorios de producción de Pls. - Certificación de camarones y otros crustáceos para su utilización en plantas procesadoras de mariscos en México.

Aspectos Sobresalientes de la Norma de Emergencia. NOM-EM-001-PESC-1999. II • Utilización y homologación de técnicas de diagnóstico y muestreo (Recomendado cuando menos el uso de dos técnicas de diagnóstico. • En lista los laboratorios acreditados dentro de la red de diagnóstico del programa Nacional de Sanidad Acuícola.

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Recomienda las medidas profilácticas y enlista las mercancías sujetas a ésta norma.

LABORATORIOS Y PERSONAS PARA ANALISIS PCR DE CAMARÓN !"SERVICIO DIAGNOSTICO VETERINARIO Dr. Armando Hung Domicilio: Jr. Guatemala # 1122 – Urb. Santa Patricia, La Molina, Lima – Perú. Teléfono: cel. 9966237, Telefax (domic.) 3488845. Facultada Medicina Veterinaria 4353348, 4353349.E-mail: [email protected] , [email protected] !"DIBSA – ACUATECSA Dr. Leonardo Galli – Gerente de Investigación y Desarrollo Av. Domingo Comin # 511, P.O. Box 5086, Guayaquil - Ecuador Teléfonos (593-4) 446500 – 446501, Fax: (593-4) 446568, E-mail: [email protected] !"Dr. Donald V. Lightner University of Arizona, Department of Veterinary Science/Microbiology, Vet. Sci. Micro Bldg #90, Room #106, Tucson, Az 85721 USA. Tel. 520-621-4899, Fax: 520-621-4899, E-mail: [email protected] !"Dr. Paul Frelier Fax: 208-678-1274, USA. E-mail: > [email protected] < !"Dra. Victoria Alday de Graindorge Centro de Servicios al Acuicultor, ESPOL, Ecuador. Telefax: 593 4 852789, E-mail: [email protected] !"Dr. Fernando Jiménez Guzmán Secretaria de Medio Ambiente, Recursos Naturales y Pesca, Dirección General de Acuicultura, Director de Control y Sanidad Acuícola. Cerrada de Trini No.10, Col. San Jerónimo Lidice, Deleg. M. Contreras, C.P. 10200, México, D.F. Dir.: 52(5)595-28-77, 52(5)683-76-65, 52(5)595-33-07. Fax.: 52(5)595-27-04. Part.: 52(8)359-35-77. E-mail: [email protected]

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Trabajando por la salud y la naturaleza BOLETÍN nicovita Edición Tumpis Editores Víctor Talavera [email protected] Dagoberto Sánchez [email protected] Luis Miguel Zapata [email protected] Dirección nicovita - Lima Av. Argentina 4695, Callao 1, Perú Teléfono (511) 315 0800 Fax (511) 315 0837 nicovita -Tumbes Av. Tumbes Norte 1485 - Urbanización Salamanca Tumbes - Perú. Telefax (5174) 52 5156

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