Ficha Técnica No.3 Moko del plátano Ralstonia solanacearum raza 2 Smith

Elaborada por:

Luciano Martínez Bolaños Universidad Autónoma Chapingo Profesor Investigador Actualizada por:

SENASICA Laboratorio Nacional de Referencia Epidemiológica Fitosanitaria LANREF - CP

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Ficha Técnica No.3 Moko del plátano Ralstonia solanacearum raza 2

Servicio Nacional de Sanidad, Inocuidad y Calidad Agroalimentaria (SENASICA) Calle Guillermo Pérez Valenzuela No. 127, Col. Del Carmen C.P. 04100, Coyoacán, México, D.F.

Primera edición: Agosto 2013 ISBN: 978-607-715-119-7 Nota del autor: La última actualización de este documento se realizó en junio de 2014.

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Contenido IDENTIDAD ......................................................... 4 Nombre ................................................................. 4 Sinonimia .............................................................. 4 Clasificación taxonómica ...................................... 4 Nombre común...................................................... 4 Código EPPO ........................................................ 4 Categoría reglamentaria ...................................... 4 Situación de la plaga en México ........................... 4 IMPORTANCIA ECONÓMICA DE LA PLAGA ...................................................... 4 Impacto económico de la plaga............................. 5 Riesgo fitosanitario............................................... 6 DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA DE LA PLAGA ...................................................... 7 Distribución nacional ........................................... 8 HOSPEDANTES .................................................. 9 Distribución nacional de hospedantes ................. 9 ASPECTOS BIOLÓGICOS .................................. 11 Descripción morfológica....................................... 11 Síntomas ..............................................................11 ASPECTOS EPIDEMIOLÓGICOS .................... 15 Epidemiología de la plaga .................................. 15 Sobrevivencia...................................................... 16 Dispersión ........................................................... 16 Métodos de diagnóstico....................................... 17 MEDIDAS FITOSANITARIAS .......................... 18 Esquema de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria ............................. 18 Alerta fitosanitaria ............................................. 18 Regulatorias........................................................ 18 Protección ........................................................... 19 BIBLIOGRAFÍA ................................................. 19

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IDENTIDAD Nombre Ralstonia solanacearum raza 2 (Smith, 1896)

Sinonimia Bacillus solanacearum. Smith, 1896 B. musa Rorer, 1911 Pseudomonas solanacearum (Smith) Stapp, 1928 Erwinia solanacearum (Smith) Holland, 1920 Phytomonas solanacearum (Smith) Bergey et al; 1923 Ph. Solanacearum var. Asiatica (Smith) Bergey et al; 1923 Burkholderia solanacearum race 2 (Smith 1896) Yabuuchi et al. 1992 Pseudomonas solanacearum race 2 (Smith 1896) Smith 1914

Clasificación taxonómica Dominio: Bacteria Phylum: Proteobacteria Clase: Betaproteobacteria Orden: Burkholderiales Familia: Ralstoniaceae Género: Ralstonia Especie: Ralstonia solanacearum raza 2

Nombre común Español

Moko del plátano, moko del plátano, moko del banano, marchitez bacterial.

Inglés

Moko disease of banana.

Código EPPO: PSDMS2.

Categoría reglamentaria Presente sólo en algunas áreas y sujeta a control oficial (CIPF, 2006).

Situación de la plaga en México De acuerdo a la NIMF No. 8: el moko del plátano Ralstonia solanacearum raza 2 está bajo control oficial en los estados de Chiapas, Tabasco y Nayarit; y presente localizado en los estados de Hidalgo y Veracruz (CIPF, 2006; SCOPE, 2014).

IMPORTANCIA ECONÓMICA DE LA PLAGA El moko del plátano es considerado como uno de los problemas fitosanitarios más serios que afectan a las musáceas en las regiones tropicales y subtropicales del mundo; constituye un problema potencial para aquellos países o áreas en los que está presente, debido a que afecta a todos los estados de desarrollo de la planta, se disemina fácilmente y es un factor determinante en la restricción comercial de la producción (Belalcázar et al, 2004). Stover (1972) establece cuatro patotipos para la Raza 2 cuya caracterización se basa en la morfología de la colonia, rango de plantas hospederas y patogenicidad, por lo que é

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se hace prescindible dar seguimiento al patógeno para determinar el posible impacto económico de cada uno de los patotipos (Cuadro 1). Hayward (2006), menciona que en algunos países de América Latina y el

Caribe, esta plaga afecta a bananos de cocción del subgrupo “Bluggoe” (ABB) y bananos de postre pertenecientes al grupo Cavendish (AAA).

Cuadro 1. Características de los cuatro biovares del moko del plátano (R. solanacearum raza 2). Transmisión a través de bacterias

Raza Biovar

Hospedero (Genoma)

Presencia de exudados

D

Heliconia

Negativa

Baja

B

Bananos (AAA)

Negativa Positiva

Alta

SFR

Bluggoe (ABB) Banano (AAA) Plátanos (AAB) Bluggoe (ABB)

Positiva

Alta

H

Bluggoe (ABB)

Positiva

Alta

Fuente: Adaptado de Belalcázar, 1991; Stover, 1972; Thurston, 1984.

Impacto plaga

económico

de

la

Esta enfermedad ha causado graves pérdidas en cultivos de banano y plátano en algunas regiones de Centro, Sudamérica y Caribe. En Guyana se reportan pérdidas en rendimiento de hasta 74 %, mientras que en países como México y Belice esta enfermedad se presenta de forma constante mermando la producción y comercialización de este fruto (Eyres et al., 2001). En la cuenca amazónica del Perú se estima que cerca de la mitad de las plantaciones de banano son afectadas por el moko del plátano y que debido a la

rápida dispersión de este patógeno podrían ser afectadas todas las plantaciones de la región (French y Sequeira, 1968). A nivel nacional, el impacto económico potencial que Ralstonia solanacearum raza 2 pudiese ocasionar sobre el cultivo del banano podría ser de gran magnitud, ya que de acuerdo con el SIAP, (2014), durante el ciclo agrícola 2012 la superficie establecida con hospedantes de dicha enfermedad (plátano y banano) fue de 75,314.64 Ha, con una producción mayor a 2,203,861.42 toneladas y un valor de producción superior a los 5,780 millones de pesos.

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Riesgo fitosanitario El riesgo fitosanitario que representa el moko del plátano para México es elevado, si se considera que la enfermedad se encuentra presente en algunas zonas y el patógeno se disemina naturalmente por insectos, aguas fluviales, riego y drenaje, además del contacto entre raíces de plantas enfermas con sanas, mediante las

herramientas de trabajo contaminadas durante las labores de poda y deshoje y transporte de suelo contaminado por personas, animales o maquinaria, pero principalmente por el movimiento de material vegetal contaminado. En la Figura 1 se muestran las áreas de riesgo fitosanitario para R. solanacearum raza 2.

Figura 1. Áreas de riesgo fitosanitario para moko del plátano (R. solanacearum raza 2). Créditos: SINAVEF-LaNGIF, 2011. é

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DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA DE LA PLAGA El moko del plátano se encuentra presente en países de África, del sureste Asiático,

Centro y Sudamérica así como en el Caribe (Cuadro 2 y Figura 2) (EPPO, 2012).

Cuadro 1. Distribución geográfica del moko del plátano. Países con presencia de R. solanacearum raza 2

Asia

Filipinas, India (Maharashtra, Tamil Nadu y West Bengal) Indonesia, Malasia (Sabah y West), Sri Lanka, Tailandia y Vietnam (EPPO-PQR, 2012; CABI, 2013).

África

Etiopía, Libia, Malawi, Nigeria, Senegal, Sierra Leona y Somalia (EPPO-PQR, 2012; CABI, 2013).

América

Brasil, Colombia, Costa Rica, Cuba, El Salvador, EE.UU., Granada, Guadalupe, Guatemala, Guyana, Honduras, Jamaica, México, Nicaragua, Panamá, Perú, San Vicente y las Granadinas, Surinam y Trinidad y Tobago. (EPPO-PQR, 2012; CABI, 2013).

Figura 2. Distribución geográfica del moko del plátano (R. solanacearum raza 2). Créditos: EPPO-PQR, 2012

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Distribución nacional Inicialmente, el moko del plátano fue reportado en la Depresión Central del estado de Chiapas (Fucikovsky, 1991). Posteriormente en el año de 1991, se reportó un brote de plantas enfermas en Tacotalpa, Tabasco y durante 1994-1995 se encontraron nuevos brotes en fincas bananeras de la misma entidad los municipios de Teapa y Tacotalpa.

Durante este mismo período la enfermedad fue detectada en el municipio de Pichucalco, Chiapas (Ramírez y Rodríguez, 1996). Actualmente el R. solanacearum raza 2 se encuentra presente en algunas zonas bananeras de los estados de Chiapas, Tabasco, Nayarit, Hidalgo y Veracruz. (Cuadro 2 y Figura 3) (SCOPE, 2014).

Cuadro 2. Distribución nacional del moko del plátano. Distribución nacional de Ralstonia solanacearum raza 2

Chiapas Hidalgo

Acapetahua, Villa Comaltitlán, Huixtla, Huehuetán, Mazatán, Tapachula, Suchiate, Frontera Hidalgo, Metapa, Pichucalco, Tuxtla Chico, Cacahoatán y Tuzantán San Felipe Orizatlán, Huehuetla y Tenanago de Doria.

Nayarit

Santiago Ixcuintla.

Tabasco

Huimanguillo, Cárdenas, Cunduacán, Centro, Teapa y Jalapa.

Veracruz

Atzalán y Tatahuicapan.

Figura 3. Distribución nacional del moko del plátano (R. solanacearum raza 2). Créditos: SCOPE, 2014. Fuente: SCOPE, 2014.

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HOSPEDANTES Kelman (1953) cita como hospederas de Ralstonia solanacearum (5 razas) a más de 187 especies de plantas, entre las que destacan plátano, banano, papa, tomate, ornamentales como heliconias, petunias y arvenses cuyo número puede superar las 100 especies.La bacteria Ralstonia solanacearum raza 2 afecta a bananos, plátanos triploides y heliconias. Asimismo, la bacteria ha sido aislada de plantas arvenses como se señala en el cuadro 3.

Distribución nacional de hospedantes A nivel nacional, las principales zonas bananeras se encuentran establecidas en 15 entidades federativas, destacando Chiapas, Veracruz, Tabasco, Michoacán, Colima, Nayarit, Oaxaca, Jalisco, Guerrero y Puebla con 74,448.14 Ha equivalente al 98.8 % de la superficie nacional (Figura 4) (SIAP, 2014). En la Figura 4 se muestra la dispersión a nivel nacional de las áreas con hospedantes potenciales del moko del plátano.

Cuadro 3. Arvenses hospedantes del moko del plátano (R. solanacearum raza 2). Familia

Especie hospedera

País reportado

Allaceae Calyceraceae Cleomaceae Crassulaceae Cucurbitaceae Geraniaceae

Allium cerpa L. Acanthosperma hispidium L. Cleome monophylla L. Klenchoe blossfeldiana V. Perllnitz. Cucumis sativus L. Pelargonium hortorum Bailey., Centella asiatica L. Heliconia spp., Heliconia cariabeae Lam., H. latispatha Benth. Oxalis Fragaria spp. Oldenlandia corymbosa L. Foeniculum vulgare Mill.

Islas Reunión y Venezuela. India (Karnataka). India (Karnataka). Reino Unido. Japón. EE.UU. (Carolina del Norte) y Sri Lanka. Australia, Colombia y Costa Rica.

Heliconiaceae

Onagraceae Oxalidaceae Rosaceae Rubiaceae Strelitziaceae Umbelliferae

Strelitzia reginae Banks. Jussiaea linifolia (=Ludwigia hyssopifolia). Fuente: Hayward y Hartman, 1994

Uganda. Japón y Taiwán. India (Kerala). India (Madhya Pradesh). Estados Unidos (Hawái). Tailandia.

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Figura 4. Distribución de hospedantes del moko del plátano (R. solanacearum raza 2) en México. Créditos: SINAVEF-LaNGIF, 2011.

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ASPECTOS BIOLÓGICOS

Síntomas

Descripción morfológica

R. solanacearum raza 2 causa diferentes síntomas en las plantas de banano y plátano, de acuerdo al sistema de infección. Esto incluye punto de entrada del patógeno a la planta y órgano afectado. En transmisiones por herramientas, la infección siempre converge en el cormo ocasionando un amarillamiento foliar (Belalcázar, 1991).

El moko del plátano es causado por la bacteria Ralstonia solanacearum raza 2 Smith (=Pseudomonas solanacearum) y su nombre común se deriva de la variedad de plátano en que fue encontrado por primera vez. Los primeros registros de la enfermedad en banano fueron realizados por Shomburgk en 1840, la primera descripción de la enfermedad y agente causal fueron realizadas por Edwin F. Smith (Thurston, 1984). R. solanacearum raza 2 es una bacteria gram negativa, en forma de bacilo, con dimensiones de 0.5-0.7 µm. x 1.5-2.5 µm, móvil, con uno a cuatro flagelos polares cuando se presentan, pero la motilidad y posible presencia de flagelos de las cepas varía con el tipo de colonia y edad del cultivo (Agrios, 1997). Kelman, 1954, señala que existen dos clases de colonias diferenciadas por su morfología colonial; una es fluida, debido a su abundante producción de polisacáridos extracelulares, lisa, con bordes irregulares y redonda; mientras que la otra es una colonia mutante de apariencia seca, redonda, translúcida, rugosa y no fluida, misma que es difícil observar en campo.

El síntoma inicia en la hoja central o bandera hacia hojas de mayor edad. Las hojas infectadas se marchitan, se doblan y quedan adheridas a la planta. Los hijuelos infectados muestran los mismos síntomas que las plantas madres (Stover, 1972). Las plantas enfermas presentan un marchitamiento gradual en relación a la intensidad de la enfermedad. La marchitez se debe al taponamiento de haces vasculares del pseudotallo, producto del crecimiento bacterial y acumulación de polisacáridos bacteriales. El patógeno utiliza los vasos conductores como forma de multiplicación y dispersión, por lo que los haces vasculares se bloquean, dando lugar a los síntomas característicos de amarillamiento y marchitez, semejantes a los que la planta manifiesta por sequía. Los síntomas del moko del plátano son visibles en todos los estados de crecimiento, principalmente en plantas jóvenes (Sabadell, 2003).

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Hojas El principal síntoma es el amarillamiento de la primera hoja (hoja bandera), la cual se torna amarilloverdosa, se debilita y se rompe al nivel de la unión del limbo con el pecíolo (Figura 5). Al avanzar la infección, el marchitamiento y desecamiento alcanza a las hojas más bajas, presentando en sus bordes bandas amarillas con márgenes oscuros (Figura 6) y finalmente la hoja bandera y la planta joven mueren. Los hijuelos infectados inicialmente adquieren una tonalidad amarillenta generalizada y posteriormente se secan. Al realizar cortes transversales en las nervaduras centrales de hojas infectadas, se observan puntuaciones oscuras cuya densidad depende del grado de avance de la enfermedad. En cortes longitudinales de las nervaduras se observa que el patrón de distribución del patógeno corresponde a la dirección de los haces vasculares (Martínez y García, 2004). En infecciones derivadas de heridas por manejo de la plantación, como podas de hojas, deshije o corte, los chupones se oscurecen y detienen su crecimiento en un lapso de 2 a 4 semanas; cada chupón puede desarrollar una hoja que se dobla y se marchita. Las fibras vasculares en plantas que no están en producción adquieren una coloración oscura (Ploetz, 1994).

Figura 5. Amarillamiento y debilitamiento de la hoja bandera. Créditos: L. Martínez B.

Figura 6. Clorosis y necrosis en margen de hojas. Créditos: L. Martínez B.

Pseudotallo Los haces vasculares del pseudotallo enfermo toman una coloración de café clara a café oscura que corresponde a los haces taponados por sustancias poliméricas extracelulares (Figura 7b) (Martínez y García, 2004

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Los síntomas en plantas sin racimos, se caracterizan por presentar los vasos afectados de manera agrupada e inmediatamente al exterior del pseudotallo; rara vez son periféricas o centrales. Los taponamientos más importantes se aprecian en los pecíolos de las primeras hojas atacadas, concentrados cerca del centro del pseudotallo y son menos aparentes en la periferia (Stover, 1972). Al cortar un pseudotallo emiten un exudado bacterial (Figura 7c). Cormo En infecciones que ocurren vía raíz o cormo, los síntomas se evidencian rápidamente en plantas adultas, y se caracterizan por presentar amarillamientos progresivo y flacidez en las hojas más viejas. No obstante, el desarrollo de síntomas va a depender de la edad y tamaño de los hijuelos o plantas afectadas. En hijuelos pequeños, además del amarillamiento y flacidez de las hojas, se presenta una muerte progresiva de la hoja bandera hacia las hojas exteriores (Jeger et al., 1995). Los síntomas en cormos infectados se observan al realizar un corte transversal, como bandas de color marrón o negro que corresponden a los haces vasculares que han sido afectados por la bacteria (Martínez y García, 2004).

Inflorescencia, raquis y frutos El primer síntoma en inflorescencia aparece en las brácteas de las flores masculinas; estas estructuras se marchitan, ennegrecen, necrosan y no se levantan, se observan enrolladas sobre su cara superior (Stover, 1972). En cortes transversales del raquis, los síntomas son puntuaciones de color café oscuro o marrón en la parte central; mientras que longitudinalmente, se presentan obstrucciones oscuras de haces vasculares (Figura 7a) (Martínez y García, 2004). En el caso del fruto, los síntomas se presentan en las manos y racimo, causando la deformación y pudrición de frutos. Los cuales ennegrecen, se secan y desprenden fácilmente, presentando una típica necrosis interna, marrón y seca. Mientras que los frutos desarrollados, presentan madurez prematura y desuniforme, cáscara agrietada y necrótica (Figura 8). La pulpa tiende a podrirse y secarse, presentando una consistencia harinosa e inodora (Hayward, 1994).

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Figura 7. . Coloración obscura de los haces vasculares en raquis y pseudotallo. a) Corte transversal del raquis con puntuaciones cafés. Créditos: L. Gasparotto. b) Corte longitudinal del pseudotallo con haces vasculares color café. Créditos: Curiel, FV. c) Corte longitudinal del pseudotallo con oscurecimiento de haces vasculares. Créditos: CESAVE, Chiapas.

Figura 8. Síntomas del moko del plátano (R. solanacearum raza 2) en frutos. Créditos: a) De la Rosa, A. (DGSV); b) L. Gasparotto. . é

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ASPECTOS EPIDEMIOLÓGICOS Epidemiología de la plaga La bacteria puede penetrar e infectar la planta a través de aperturas naturales (estomas e hidatodos), así como por heridas ocasionadas por herramientas, en la raíz, cormo, pseudotallo, hoja, hijuelos y flores (Ordosgoitti, 1987). Una vez dentro del hospedante, la bacteria se desplaza en los haces vasculares, proceso que es acelerado por altas temperaturas. Otro factor que influye en la velocidad de distribución de la bacteria en la planta es el tejido vegetal colonizado, por ejemplo en tabaco, la bacteria se desplaza más rápido en el tallo que en la raíces (Ono et al., 1984). La infección se lleva a cabo por la colonización y bloqueo de los vasos del xilema, inhibiendo el transporte del agua, causa principal de la marchitez (Petrollini et al., 1986). Además de la invasión de los vasos del xilema, hay una degradación de la pared de los vasos y parénquima adyacente, así como la invasión del floema y del tejido cortical. Existe un aumento en la producción de ácido indolacético (AIA), lo cual puede explicar la epinastia de las hojas y el brote de raíces adventicias (CIDADES, 1996).

El establecimiento de hijuelos de plátano, en suelos con plantas hospedantes enfermas, induce una infección de hijuelos en los primeros meses, después de que las raíces han sido invadidas. Por otra parte, dentro de las prácticas de manejo del cultivo, debe considerarse la desinfección de herramientas ya que el patógeno puede diseminarse de manera significativa (Ploetz, 1994). El período de inoculación de la bacteria a la aparición de síntomas dura de 6 semanas a 3 meses, o más. En inoculaciones mecánicas, 40% de las plantas desarrollaron síntomas en 70 días y 60% después de 90 días. Al inocular rizomas bajo el nivel del suelo se ha observado que la infección no prospera y permanece latente (CIDADES, 1996). Cabe señalar que cada cepa de R. solanacearum tiene un comportamiento diferente de acuerdo al hospedante. En el Cuadro 5 se muestran las características epidemiológicas para cada una de las cepas.

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Cuadro 5. Características de las cepas (D, B, SFR y H) de Ralstonia solanacearum Smith. Cepa Cepa B

Cepa SFR Cepa D

Cepa H

Características epidemiológicas Moderadamente transmitida por insectos, causa un rápido marchitamiento en las plantas, es la más virulenta de todas (Gonzáles, 1987). Presenta una sobrevivencia en el suelo hasta de 18 meses (Stover, 1972). Virulenta en bananos, es rápida y fácilmente transmitida por insectos. Raramente sobrevive en el suelo por más de 6 meses (Stover, 1972). Afecta a heliconias: presenta poca virulencia en banano, causando distorsión y lento marchitamiento de sus hojas (Gonzáles, 1987). Sobrevivencia menor a 6 meses en el suelo (Stover, 1972). Es transmitida por insectos: ataca a plátanos (AAB) y guineos (ABB). Sobrevivencia muy baja (Stover, 1972; Gonzáles, 1987).

Sobrevivencia La persistencia de R. solanacearum raza 2 en suelo se debe a que la bacteria sobrevive en las plantaciones o permanece latente en los residuos de cosecha infectados y rizosfera de malezas hospedantes (Hayward, 1991).

Dispersión La bacteria se disemina por el uso de material de propagación enfermo, como es el uso de cormos e hijuelos. Lo cual hace un punto estratégico para el desarrollo de medidas profilácticas en el manejo de esta enfermedad, y restringir su diseminación en áreas libres del patógeno. Otras formas importantes de diseminación de la bacteria es por insectos polinizadores, que al posarse sobre una planta enferma con exudados de R. solanacearum, se convierten en vectores de la bacteria. La transmisión por insectos se considera el medio más explosivo de diseminación del moko del plátano. La visita de avispas, abejas y dípteros a la inflorescencia de las plantas

de plátano y banano es frecuente. En la transmisión por insectos, las brácteas que cubren el racimo de flores se marchitan y mueren (Belalcázar, 1991). La presencia de fuentes de inóculo asociadas a inundaciones son otro factor importante de diseminación del moko del plátano. Ante un manejo deficiente de plantas o tejidos enfermos, y la presencia de inundaciones originan el arrastre de material infectado de un lugar a otro, convirtiendo a este un problema potencial del cultivo del plátano y banano. Uno de los medios más eficientes para la diseminación e infección de la enfermedad, es por el uso de herramientas contaminadas de R. solanacearum raza 2. Lo anterior se sustenta por el requerimiento de un manejo intensivo del cultivo de plátano y banano, enfocado a prácticas culturales de deshoje, saneo, desflore, deshije, entre otros.

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A continuación se describe cada uno de los posibles mecanismos de dispersión de R. solanacearum raza 2. Herramientas R. solanacearum raza 2, se transmite rápidamente a través de las herramientas de poda (Stover, 1972); las heridas causadas por la poda (deshije, destalle, deshoje, apuntalamiento, corte de racimo) proporcionan sitios de infección (Gonzáles, 1987). El empleo de machetes infectados es uno de los medios más importantes de contagio (Buddenhagen y Elasser, 1962). Insectos Las abejas Trigona corvina y las avispas del género Polybia sp., pueden transportar sabia infectada hasta las cicatrices recientes de la flor masculina, induciendo la infección rápida en tejidos sanos (Buddenhagen y Kelman, 1964). Material propagativo La transmisión del moko del plátano también se da cuando se emplea semilla o hijuelos infectados al momento de sembrar en áreas nuevas o en la resiembra dentro del cultivo (Gonzáles, 1987).

Contacto La diseminación de la enfermedad también puede ocurrir mediante el contacto de raíces con suelo infectado o raíces de plantas enfermas (Stover, 1972; Gonzáles, 1987). Malezas En áreas tropicales, muchas malezas han mostrado ser hospedantes alternos de la bacteria. La tasa lenta de desarrollo de la bacteria en malezas permite resistir la infección, y así ofrecer un puente para el patógeno entre los cultivos (EPPO, 2003).

Métodos de diagnóstico Los métodos apropiados en laboratorio para detectar al patógeno, también en forma latente son pruebas de inmunofluorescencia de anticuerpos en forma indirecta (Machmud y Suryadi, 2008) y pruebas de patogenicidad para confirmar resultados positivos. ELISA y PCR (polymerase chain reaction), basado en los iniciadores 16S rRNA, han sido utilizados obteniéndose buenos resultados. Pruebas bioquímicas, análisis de ácidos grasos, RFLP y análisis de proteínas pueden ser usadas para propósitos de identificación (Seal et al., 1993; Seal y Elphinstone, 1994)

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MEDIDAS FITOSANITARIAS Esquema de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria Con el fin de detectar de manera oportuna al moko del plátano, la Dirección General de Sanidad Vegetal (DGSV), a través del Programa Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria (PVEF), realizan acciones para la detección temprana de esta plaga en Michoacán, Jalisco, Hidalgo, Colima, Guerrero, Oaxaca, Puebla y Veracruz con elevado nivel de riesgo epidemiológico, las acciones que se implementan son áreas de exploración y rutas de vigilancia, establecidas estratégicamente con base en la distribución y superficie sembrada de hospedantes, etapas fenológicas inductivas, condiciones climáticas inductivas, biología de la plaga, rutas de comercialización y vías de comunicación. (DGSV-CNRF, 2012; SCOPE, 2014). La descripción de las estrategias fitosanitarias para la Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria se puede consultar en el link http://www.senasica.gob.mx/?id=5956

Alerta fitosanitaria En adición a las acciones del Programa de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria para la detección oportuna de focos, la DGSV ha puesto

a disposición la comunicación pública mediante el teléfono (01)-800-98-79-879 y el correo electrónico [email protected]

Regulatorias En México, las medidas regulatorias aplicadas al moko del plátano se establecen en las normas NOM-010FITO-1995, por la que se establece la cuarentena exterior para prevenir la introducción de plagas de plátano (DOF, 1996) y la NOM-068-FITO-2000, por la que se establecen las medidas fitosanitarias para combatir el moko del plátano y prevenir la diseminación (DOF, 2000). Esta última norma establece regulaciones de carácter obligatorio que se deberán cumplir para controlar las infestaciones de moko del plátano, evitar su dispersión y, en su caso, erradicar la enfermedad de las zonas infestadas y es aplicable a productos del plátano (material propagativo y fruto), áreas de producción de plátano (huertos comerciales, cultivo de traspatio, parques y jardines), empacadoras, centros de almacenamiento y acopio de plátano; medios de transporte (vehículos, contenedores), implementos (equipos y materiales de trabajo), así como a hospedantes de la enfermedad de la familia Musaceae.

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Protección Control cultural Las principales prácticas culturales de manejo de la enfermedad implican: desinfección de herramientas utilizadas en la plantación, control de malezas, rotación de cultivos, solarización y aireación del terreno en épocas secas. En plantaciones donde la enfermedad ya está establecida, las flores masculinas deben de ser continuamente removidas, posterior a la emisión de la última mano (Pradhanang et al., 2003). Control biológico Arenas et al., (2005), realizaron tratamientos con flor de muerto Tagetes patula (1 kg/m2), calfos (0.5 kg/m2) y lixiviado de compostaje de plátano (2.7 L/m2), observando una reducción en las poblaciones de la bacteria de 50.8 % y 31.6 % con calfos y lixiviados, respectivamente. Lo que sugiere el uso de alternativas ecológicas y seguras, para reducir la población del patógeno en el suelo.

propagación in vitro es una herramienta que permite obtener plantas sanas, sin embargo, el costo para producción de la plántulas eleva significativamente los costos de producción (Lira, 2002). Control físico Este tipo de control se ejerce mediante el uso de solarización del material enfermo y de una cobertura plástica negra en los tejidos previamente tratados con glifosato para matar a la planta (Patricio et al., 2005). Control químico El control químico es una de las prácticas más comunes, emplea herbicidas como el glifosato para secar en forma rápida a las plantas infectadas, además el uso de insecticidas para el control de transmisores de la enfermedad, así como desinfectantes del suelo como el bromuro de metilo, formaldehido, sales cuaternarias y otros (Dirección Nacional de Medio Ambiente, 2002).

BIBLIOGRAFÍA

Control genético

Agrios, GN. 1997. Plant Pathology. 4t. ed. Academic Press. San Diego, CA, USA. 635pp.

El control del R. solanacearum raza 2 mediante variedades resistentes no es viable, ya que no existen clones de banano (AAA) o plátano (AAB y ABB) comestibles, que sean inmunes o con cierto grado de resistencia a la enfermedad (Belalcázar, 1991). La

Arenas A, López D, Álvarez. E, Llano G y Loke Jhon. 2005. Efecto de prácticas ecológicas sobre la población de Ralstonia solanacearum Smith, causante de Moko del plátano. Fitopatología Colombiana 28(2):7680 p. é

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Forma recomendada de citar:

Coordinación:

SENASICA. 2013. Moko del plátano (Ralstonia solanacearum raza 2). Dirección General de Sanidad VegetalSistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria. México, D.F. Ficha Técnica No. 3. 21 p.

M.C. José Abel López Buenfil Director del CNRF

Ing. Rigoberto González Gómez Coordinador Operativo del SINAVEF

Dr. Gustavo Mora Aguilera Coordinador de LANREF

Con la colaboración: Laboratorio Nacional de Referencia Epidemiológica Fitosanitaria (LANREF) Colegio de Postgraduados (CP) M.C. Fabiola Esquivel Chávez Ing. Francisco Javier Márquez Pérez M.C. Jorge Luis Flores Sánchez M.C. Santiago Domínguez Monge Ing. Gerardo Acevedo Sánchez CNRF – Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria (SINAVEF) Ing. Estela Martínez Soriano Ing. Maritza Juárez Durán Ing. Lucia Jairoth Velázquez Moreno Dr. Moisés Roberto Vallejo Pérez Revisión técnica: M.C. Claudio Chavarín Palacio Dr. Clemente de Jesús García Ávila Corrección de estilo: Dr. Edmundo Martínez Ríos Departamento de Idiomas CP

Rogelio Dromundo Salazar Departamento de Difusión CM - CP

Diseño editorial: D.C.V. Laura Xochitl Arriaga Betanzos Departamento de Difusión CM - CP

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