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Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo
i Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
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AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO QUE OTORGAN EL TÍTULO DE BIÓLOGO
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Dr. Orlando Velásquez Benites Rector
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Dra. Vilma Méndez Gil Vicerrectora Académica
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Dra. Flor Luna Victoria Mori Vicerrectora Administrativa
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Dr. Santiago Uceda Duclos Profesor Secretario General
Dr. César Jara Campos Profesor Secretario de la Facultad de Ciencias Biológicas
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Dr. Hermes Escalante Añorga Decano de la Facultad de Ciencias Biológicas
Dr. Eloy López Medina Director de la Escuela Académico Profesional de Ciencias Biológicas
ii Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
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DEDICATORIA A Dios
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Por amarme cada día, brindarme la dicha de la salud
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y bienestar físico y espiritual, a ti Señor porque hiciste realidad este sueño, por todo el amor
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con el que me rodeas y porque me tienes en tus manos.
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¡Dichoso el hombre que en ti confía
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y con todo el corazón te busca !
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A mis padres Bertha y Alberto
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Por todo su amor, su esfuerzo, su apoyo y por la confianza que depositaron en mí. No me equivoco si
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digo que son los mejores padres del mundo. Gracias
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los amo mucho.
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A mis hermanos:
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Manuel, Marisol, Sonia,
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Verónica y Robert
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Cuyas palabras de aliento han sido un estímulo para la finalización
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de este estudio.
iii Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
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A mis cuñados Ana, Hugo y Carlos Gracias por apoyarme
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A mis sobrinos
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siempre en todo momento.
Alexander, Janpier, Ariana, Katherine, Estefany y el
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más pequeño y travieso de todos Josué, gracias por
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alegrarme todos los días de mi vida.
A una persona muy especial
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Por apoyarme en todo momento especialmente
en los más difíciles, por tener la paciencia necesaria
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conmigo y por brindarme su amor cada día.
A todas mis amigas En especial a Denisse, Katherine, Yuri, Cindy, Onelly, Miledy, Karen, mil gracias por todos los momentos que hemos pasado juntos y porque han estado conmigo siempre. Sólo puedo decir que las quiero muchísimo.
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Te amo. Carlos.
iv Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
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AGRADECIMIENTO Son muchas las personas especiales a las que me gustaría agradecer su
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amistad, apoyo, ánimo y compañía en las diferentes etapas de mi vida. Algunas están aquí conmigo y otras en mis recuerdos y en el corazón. Sin importar en
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dónde estén o si alguna vez llegan a leer estas dedicatorias quiero darles las
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gracias por formar parte de mí, por todo lo que me han brindado y por todas sus
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bendiciones.
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Mi más profundo y sincero agradecimiento a la MsC. Aida Carbajal
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Villaverde, profesora de la Facultad de Ciencias Biológicas de la Universidad
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Nacional de Trujillo; por su amistad desinteresada, por su valiosa colaboración
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y apoyo incondicional en la ejecución del presente trabajo.
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A mí jurado dictaminador Dr. Gaspar Ayquipa Aycho, MsC. Roberto
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Rodríguez Rodríguez, MsC. Aida Carbajal Villaverde, por sus observaciones y
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sugerencias, las que orientaron el mejoramiento de esta investigación.
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Finalmente a todos mis profesores no sólo de la carrera sino de toda la
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vida, mil gracias porque de alguna manera forman parte de lo que ahora soy y a las Señoras Técnicas de Entomología Carmela Vallejos de Alquizar e Iris Aguilar
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Holguín gracias por la ayuda prestada en la realización de este trabajo.
v Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
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DEL ASESOR
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La que suscribe, Profesora asesora de la presente Tesis:
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CERTIFICA
Certifica que la presente tesis ha sido ejecutada de conformidad con su
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respectivo proyecto y con las orientaciones brindadas a la tesista.
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En cuanto al informe final, éste ha sido revisado acogiendo las
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observaciones y sugerencias alcanzadas por lo que autorizo a la Br. Deysi Susana
________________________ Ms C. Aída Carbajal Villaverde Profesora Asesora
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Monzón Julián, continuar con los trámites correspondientes.
vi Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
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PRESENTACIÓN
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SEÑORES MIEMBROS DEL JURADO:
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En cumplimiento con las disposiciones vigentes en el reglamento de
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Grados y Títulos de la Facultad de Ciencias Biológicas de la Universidad
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Nacional de Trujillo, someto a vuestra consideración y elevado criterio, que se
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evalúe la presente tesis titulada: Ciclo biológico y comportamiento de Stegasta cf.
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zygotoma Meyrick, 1917 (Lep.: Gelechiidae) en laboratorio. Trujillo, Perú 2012.
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Dejo a vuestro criterio la respectiva aprobación.
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Trujillo, mayo de 2013
Br. Deysi Susana Monzón Julián
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MIEMBROS DEL JURADO Los que suscriben, Miembros del Jurado Dictaminador, declaramos que la
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presente Tesis reúne los requisitos fundamentales exigidos; por lo que ha sido
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aprobado por unanimidad.
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Dr. Gaspar Ayquipa Aycho
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PRESIDENTE
Ms C. Aída Carbajal Villaverde VOCAL
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Ms C. Roberto Rodríguez Rodríguez SECRETARIO
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PRESIDENTE
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Dr. Gaspar Ayquipa Aycho
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DE LA APROBACION
Ms C. Aída Carbajal Villaverde VOCAL
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Ms C. Roberto Rodríguez Rodríguez SECRETARIO
ix Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
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DEDICATORIA
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AGRADECIMIENTO
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DEL ASESOR
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AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD
PRESENTACIÓN
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MIEMBROS DEL JURADO
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DE LA APROBACION ÍNDICE
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INTRODUCCIÓN
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MATERIALES Y MÉTODOS
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II.
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RESUMEN I.
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1. Lugar de ejecución
ix x xii
1 5 5 5
3. Determinación de la especie
5
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2. Colección del material biológico
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5. Crianza masiva de Stegasta cf. Zygotoma
6
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4. Obtención de alimento para las larvas
7
7. Determinación del ciclo biológico
8
7.1.1. Período de incubación
8
7.2. Período larval
8
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6. Ciclo biológico de Stegasta cf. Zygotoma
8
7.4. Período pupal
8
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7.3. Período prepupal
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7.5. Período de preoviposición
9
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7.6. Período de oviposición 7.7. Período de longevidad
9
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8. Determinación del comportamiento
III.
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INDICE
9
8.1. Cópula y oviposición
10
8.2. Proporción de sexos
10
9. Análisis estadísticos
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RESULTADOS
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1. Ubicación taxonómica
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3. Morfología
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3.1. Huevo
14
3.2. Larva
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3.2.2. Larva II
15
3.2.3. Larva III
16
3.2.4. Larva IV
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3.2.1. Larva I
3.2.5. Larva V
16
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3.3. Prepupa
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3.4. Pupa
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3.5. Adulto
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3.5.1. Hembra 3.5.2. Macho 4. Comportamiento
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4.1. Huevo 4.2. Larva
18 18 18
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20
DISCUSIÓN
30
CONCLUSIONES
35
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4.5.2. Proporción de sexos
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
36
ANEXOS
41
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VII.
17
20
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17
20
4.5.1. Oviposición
V.
17
19
4.2.2. Cópula
IV.
17
19
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4.5. Adulto
16
19
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4.3. Prepupa 4.4. Pupa
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2. Ciclo biológico
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RESUMEN
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En el presente trabajo, se da a conocer el ciclo biológico y comportamiento de
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Stegasta cf. zygotoma Meyrick, 1917 (Lep.: Gelechiidae) en laboratorio,
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utilizando como sustrato para la alimentación brotes tiernos de maní, junio a
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noviembre, 2012. Las larvas se colectaron del cultivo de “maní” en la campiña de
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Moche, Trujillo. Luego fueron trasladadas y acondicionadas en laboratorio de
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Entomología de la Universidad Nacional de Trujillo. El ciclo biológico se realizó
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a una temperatura de 21,95 ºC y humedad relativa de 65,9 %. La duración del
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ciclo biológico, en promedio fue de 81,7 y 89,2 días para el macho y la hembra respectivamente; el período de incubación tuvo una duración promedio de 7,8
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días. Las larvas presentaron 5 instars, la larva I de 6,7; larva II 5,8; larva III 5,1;
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larva IV 4,5 y larva V 3,9 días promedio respectivamente. Los períodos prepupal
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y pupal tuvieron una duración promedio de 1,3 y 11,6 días respectivamente. La
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longevidad promedio con alimento del adulto hembra fue de 42,5 días y del
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macho 35 días. Se describe además aspectos morfológicos y del comportamiento
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como locomoción, cópula y oviposición. Se citaba erróneamente que en Perú la
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plaga del maní era Stegasta bosquella, pero según la determinación de la especie y
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a referencias bibliográficas revisadas, se determinó como Stegasta zygotoma.
Palabras clave: Stegasta cf. zygotoma, Stegasta bosquella, Arachis hypogaea, ciclo
biológico,
comportamiento.
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I.
INTRODUCCIÓN
Arachis hypogaea L. “maní” es uno de los cultivos de leguminosas más
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importantes a nivel mundial, porque contribuye al desarrollo agrícola e industrial
de los países donde se cultiva. Es oriundo de la región andina del noroeste de
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Argentina, Perú, Brasil, Paraguay y sur de Bolivia, de donde se ha ido expandiendo por los diferentes países de Sudamérica y hoy en día se cultiva en las
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zonas tropicales y subtropicales del mundo; China, India, Estados Unidos, México
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y Argentina son los principales países productores (Ochse y cols, 1974; Guamán y
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Ullaury, 2004; Bongiovanni y Giletta, 2007). En Perú, a este cultivo se le encuentra en los departamentos de Ayacucho, Ancash, La Libertad y
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Lambayeque. En la Libertad, el “maní” ha sido un cultivo tradicional que no ha una actividad de tipo
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tenido un adecuado desarrollo, siendo la explotación
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familiar y cuya producción ha sido destinada principalmente al consumo humano
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(Kay, 1979; Cubero y Moreno, 1983; Amaya y Julca, 2006).
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El cultivo del “maní” es afectado por ciertos factores que impiden alcanzar
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una alta productividad, principalmente las plagas insectiles, entre las más
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importantes se encuentran: Elasmopalpus lignosellus Zeller de la familia
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Pyralidae; Feltia subterranea Fabricius, Agrotis repleta Walker, Spodoptera frugiperda Smith y Heliothis zea Boddie de la familia Noctuidae, entre otros y el
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barrenador de brotes del género Stegasta de la familia Gelechiidae (Wille, 1952; García, 1996; Domínguez, 2010). La familia Gelechiidae es una de las más numerosas dentro de los microlepidópteros, y se encuentra ampliamente distribuida en todas las regiones
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zoogeográficas del mundo (Ojeda y Castro, 1972; Aquino, 1982; Carbajal, 1984). Estos insectos son generalmente muy pequeños, de colores crípticos y claros; poseen alas angostas con flecos, el palpo labial con el tercer artejo delgado y largo
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volteado hacia arriba, extendiéndose por lo menos desde el medio de la frente
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(Borror y Delongs, 1964; Galves y Villa, 1986; Angulo y Olivares, 2011; Gómez,
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2011).
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En los Gelechiidae, se encuentra el género Stegasta, ampliamente
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distribuido, este género incluye diez especies en África, Asia y Australia y ocho
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en la región neotropical (Becker, 1984; Beccaloni y cols , 2003), entre las especies
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más importantes tenemos a: S. capitella Fabricius, 1794, se encuentra en Cuba, Jamaica, Puerto Rico; S. bosquella Chambers, 1875 Estados Unidos, Jamaica,
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Puerto Rico, Antillas; S. variana Meyrick, 1904 Australia, Región Indo Malaya,
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África; S. zygotoma Meyrick, 1917 Colombia, Ecuador y Perú; S. comissata
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Meyrick, 1923 Brazil. Algunas características morfológicas de este género es que
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los especímenes, poseen cabeza con escamas, proboscis desarrollada. Palpo labial
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largo y recurvado, con su segunda articulación engrosada con escamas, última
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articulación es larga como la segunda, pero fina y aguda. Palpos maxilares muy
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cortos, filiformes y adheridos a la proboscis. Tibias posteriores cubiertas de pelos
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(Wytsman, 1927; Landry y Roque Albelo, 2010). El daño lo ocasionan las larvas al alimentarse de los brotes tiernos, así como de la región meristemática del
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cogollo, lo que retarda el crecimiento terminal de la planta. Las hojas que emergen después de haber alojado una larva, presentan perforaciones muy características, dichas perforaciones le dan un aspecto negruzco a la hoja dañada. Durante los primeros días del desarrollo las pequeñas larvas se alimentan de la epidermis
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superior de la hoja, sin llegar a atravesarla, dejando intacta la epidermis inferior; a medida que crecen ocasionan perforaciones (Bondar, 1928; Cruz y cols, 1962; Landry y Roque Albelo, 2010). Estos daños causan disminución de los
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rendimientos, razón por la cual es indispensable realizar prácticas culturales
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oportunas desde el inicio del cultivo para evitar pérdidas económicas y alcanzar
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una buena productividad. Dichas prácticas abarca control de malezas, control de
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plagas y enfermedades (Brandao, 1943; Cruz y cols, 1962; Sichmann, 1963;
Y
Instituto Nacional Autónomo de Investigaciones Agropecuarias, 2000).
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En América, se han realizado trabajos acerca de este género tal como el
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estudiado en Brasil, donde se investigó la ocurrencia de S.bosquella en el crecimiento del maní, en la siembra directa y convencional, donde obtuvieron
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como resultado un mayor número de larvas por hoja en la siembra directa, lo que
DE
produce una reducción en el desarrollo de las plantas (Crosariol y cols, 2007).
AS
En Venezuela un estudio presenta los resultados de laboratorio obtenidos
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del ciclo de vida del cogollero del maní, S. capitella, este trabajo incluye la
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morfología, biología y hábitos del insecto en sus diferentes estados biológicos
SI
(Briceño, 1976).
DE
En Ecuador, se realizó una revisión taxonómica de la familia Gelechiidae
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en la Isla Galápagos – Ecuador, encontrando Stegasta cf. zygotoma, registrándola para el país ya mencionado, Colombia y Perú (Landry y Roque Albelo, 2010).
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En Perú, se han realizado investigaciones sobre control químico de
S.bosquella, aplicando Sevin 85 PM al 0.4% del producto comercial, que controla a este insecto plaga con un efecto residual de aproximadamente 15 días (Montero, 1967).
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En Perú se mencionaba erróneamente como plaga del “maní” a Stegasta bosquella, pero con estudios posteriores, se dió a conocer que la plaga registrada para el país es Stegasta zygotoma (Schmitz y Landry, 2007).
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En el departamento de La Libertad, no se han registrado trabajos referente
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a la biología del “barrenador de brotes del “maní”, y dada la importancia del daño
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que produce la plaga se ha creído conveniente realizarlo, cuyos objetivos fueron,
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conocer el ciclo biológico y el comportamiento de Stegasta cf. zygotoma Meyrick,
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1917 (Lep.: Gelechiidae) en laboratorio, y que esta información sirva como base a
DI
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DE
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futuros programas de manejo integrado para el control de esta plaga.
4 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
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II. 1.
MATERIAL Y MÉTODO
Lugar de ejecución del trabajo.
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El presente trabajo se llevó a cabo en el Laboratorio de Entomología de la Facultad de Ciencias Biológicas de la Universidad Nacional de Trujillo,
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durante los meses de junio a noviembre del 2012.
La temperatura y humedad relativa se registraron con un termo
CO
higrómetro marca Taylor las cuales fluctuaron entre 20 a 24ºC y 54 a 75 %
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H.R (Anexo 1).
A
Colección del material biológico.
RM ÁT
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2.
En campos de cultivo de Arachis hypogaea L. “maní” de la Campiña
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de Moche, ubicado en el distrito de Moche, se colectaron larvas de Stegasta
DE
cf. zygotoma “barrenador de brotes”. Dichas larvas fueron colocadas en
AS
depósitos de plástico de 250 mL de capacidad, cuya tapa se acondicionó con
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tela organza para facilitar su ventilación; asimismo, a dichos depósitos se les
ST
adicionó brotes tiernos de maní para la alimentación de las larvas, las que
SI
posteriormente fueron transportadas y acondicionadas en el Laboratorio de
Determinación de la especie
DI
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3.
N
DE
Entomología de la Universidad Nacional de Trujillo.
Para la determinación se enviaron al Museo de Entomología Klaus
Raven Buller de la Universidad Nacional Agraria la Molina, Lima; muestras de larvas de los últimos instars, pupas y adultos vivos.
5 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
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4.
Obtención de alimento para larvas. En laboratorio, se sembraron 40 plántulas de “maní”, en tierra
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preparada, contenidas en bolsas de almácigo de 1 kg cada una, las que fueron
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fertilizadas y regadas adecuadamente, con el propósito de obtener alimento
Crianza masiva de larvas
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5.
IC
fresco para las larvas de la plaga (Anexo 2).
CO
Las larvas de S. cf. zygotoma se alimentaron con brotes tiernos de
A
Y
maní, los que fueron cambiados diariamente para evitar deterioro y
RM ÁT
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putrefacción. La crianza de estas larvas se continuó hasta la obtención de pupas, trasladándolas a depósitos de plástico de 30 mL de capacidad, con
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papel toalla en el fondo del depósito y algodón húmedo; luego las pupas próximas a emerger fueron colocadas en cámaras de cópula y oviposición,
DE
consistentes en depósitos de plástico de 1 L de capacidad, los insectos adultos
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fueron alimentados con una solución de miel y agua destilada (proporción
ST
1:1) embebido en una pequeña porción de dunlopillo, además de colocarles
DE
SI
algodón humedecido con agua, ambos colocados sobre tapas plásticas.
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Posteriormente, en las cámaras de cópula y oviposición se colocaron
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frascos de vidrio transparente de 10 mL de capacidad conteniendo agua y un brote tierno de la planta hospedera en cada frasco, los que sirvieron como
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sustrato para la oviposición. Luego de la oviposición los tallos fueron colocados en depósitos de plástico de 500 mL de capacidad, cubiertos con tela organza y sujetados con una liga hasta la emergencia de las larvas, de esta manera se inició la crianza de S. cf. zygotoma, en laboratorio (Anexo 3).
6 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
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6.
Crianza individual de larvas Las observaciones fueron diarias, por las mañanas, con la finalidad de
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determinar con mayor precisión el tiempo de cada período. Fueron seleccionadas 30 larvas separadas por fecha de oviposición;
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recién emergidas dichas larvas fueron distribuidas individualmente, con la ayuda de un pincel Nº 0, alimentándolas con brotes tiernos de maní, las cuales
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fueron colocadas en depósitos de plástico de 120 mL de capacidad, cuya tapa
A
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se acondicionó con tela organza para facilitar su ventilación y en el fondo de
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estos vasos se colocó papel toalla y algodón húmedo (Anexo 4). El cambio de alimento se realizó diariamente, para lo cual se buscaron las larvas dentro de
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las porciones de sustrato (alimento) con mucho cuidado y se trasladaron con
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un pincel a depósitos de plástico de 120 mL con alimento fresco. Durante este control se buscó las cápsulas cefálicas y se anotó la fecha de la ocurrencia de
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la muda (Anexo 5). Para medir las cápsulas cefálicas y la longitud de las
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larvas se utilizó un estereoscopio Olympus S2, Moldel S22 – ILST y un
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vernier Truper Stainless Stell modelo CALDI – 6MP. Se repitió este
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procedimiento para todos los instars, posteriormente los datos fueron
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registrados. Para el acondicionamiento de pupas (Anexo 6), se siguió el mismo
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procedimiento empleado en la crianza masiva de larvas. Al emerger los adultos, éstos se colocaron en cámaras de crianza, anteriormente mencionados, y se procedió a obtener oviposiciones, completando de esta
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manera el ciclo biológico; y se anotaron los datos de capacidad reproductiva y longevidad de los adultos (Anexo 7). Se tomaron fotografías de los diferentes estados biológicos del insecto
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Determinación del ciclo biológico
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7.
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plaga con una cámara marca Sony de 14,1 megapixeles.
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7.1 Período de incubación
CO
El período de incubación se determinó entre la fecha de
Y
oviposición y la emergencia de la larva. Además, se tomó la medida de
IC
A
longitud y ancho en 30 huevos mediante el ocular micrométrico del
RM ÁT
estereoscopio Olympus.
IN FO
7.2 Período larval
Los instars se determinaron, tomando en cuenta las cápsulas
DE
cefálicas dejadas en cada muda, además con la ayuda del estereoscopio,
AS
se midió el ancho de éstas y la longitud de las larvas, así como la
ST
EM
coloración. Se registró la duración de cada estadio.
Este período se determinó desde que el último instar dejó de
alimentarse y de moverse. 7.4. Período pupal
DI
RE CC IO
N
DE
SI
7.3 Período prepupal
El período pupal se determinó desde que la pupa se tornó en una coloración marrón rojiza a marrón negruzco hasta la emergencia del adulto.
8 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
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La pupa fue medida y sexada con la ayuda del estereoscopio (Anexo 8).
N
7.5 Período de Pre – oviposición
AC IÓ
Se registró el tiempo transcurrido desde que la hembra fue
M UN
IC
fecundada hasta el inicio de la oviposición.
CO
7.6 Período de Oviposición
Y
Se registró desde que la hembra colocó el primer huevo hasta que
7.7 Período de Longevidad
RM ÁT
IC
A
coloque el último.
IN FO
Se consideró el tiempo de duración a los adultos desde la
DE
emergencia hasta su muerte. Durante este periodo se le suministró el
EM
Determinación del comportamiento
ST
8.
AS
alimento necesario.
SI
Se describieron aspectos del comportamiento en cada fase de
DE
desarrollo de Stegasta cf. zygotoma relacionados con la locomoción, tipos de
RE CC IO
N
movimiento en larvas y adultos, posición de las alas en reposo; alimentación, de qué manera mina, raspa las hojas y a cuantos centímetros de profundidad
DI
barrena el tallo; cópula, tiempo de duración; lugar de oviposición en la planta hospedera; período de emergencia, horas de mayor emergencia y comportamiento del adulto al emerger; ubicación de la pupa, vuelo y daño, para lo cual se realizaron observaciones diarias en laboratorio.
9 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
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8.1. Cópula y oviposición Se seleccionaron 10 hembras y 10 machos, los cuales fueron
N
colocados por parejas en cámaras de cópula y oviposición de 1 L de
AC IÓ
capacidad.
M UN
IC
Los brotes tiernos colocados en de la cámara de oviposición fueron cambiados diariamente para determinar el número de huevos
CO
colocados por día, además de colocarles un pedazo de algodón de los mismos.
A
Y
humedecido con agua para evitar la deshidratación
RM ÁT
IC
Además se tomó en cuenta el número de huevos totales.
IN FO
8.2. Proporción de sexos
Se determinó utilizando individuos de la misma generación
DE
obtenidos de la crianza en laboratorio procediendo a sexarlos y
AS
colocarlos en depósitos de plástico de 30 mL de capacidad, finalmente se
Análisis estadísticos
DE
SI
9.
ST
EM
contabilizó el número de machos y hembras.
N
Los datos registrados fueron trabajados con los parámetros
RE CC IO
estadísticos siguientes: media aritmética (x), desviación estándar (SD) y los
DI
valores máximos y mínimos. Se utilizó el programa SPSS versión 12.0
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III.
RESULTADOS
:
Unirramia
Clase
:
Hexapoda
Sub Clase
:
Pterygota
Orden
:
Lepidoptera
Sub Orden
:
Frenatae
Super Familia
:
Familia
:
AS
Género
EM
Especie
ST
Nombre científico
A
IC
RM ÁT
Gelechiinae
:
Stegasta
:
zygotoma
:
Stegasta cf. zygotoma Meyrick, 1917
:
“barrenador de brotes”, del
maní”,
“larva
“cogollero
cuello
rojo”,
N
“perforador de botones”, “minador de
RE CC IO DI
Gelechiidae
:
DE
SI
Nombre común
Gelechioidea
IN FO DE
Sub Familia
IC
Sub Filo
M UN
Arthropoda
CO
:
Y
Filo
AC IÓ
N
1. Ubicación Taxonómica
hojas”.
Nota: la muestra fue revisada y determinada por la Blg. Mg. Sc. Clorinda Vergara Cobián y el Blg. Mg. Sc. Javier Huanca Maldonado, en el Museo de Entomología Klaus Raven Buller – UNALM (Anexo 9).
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2. Ciclo Biológico El estudio del ciclo biológico de Stegasta cf. zygotoma se realizó entre los meses de junio a noviembre 2012.
AC IÓ
N
En la tabla 1, se muestran los promedios de la duración, en días, del ciclo
IC
biológico de Stegasta cf. zygotoma.
M UN
El período de incubación fue de 7,8 días, las larvas presentaron 5 instars,
CO
larva I 6,7; larva II 5,8; larva III 5,1; larva IV 4,5; larva V 3,9 días
Y
respectivamente. La prepupa y la pupa tuvieron una duración de 1,3 y
IC
A
11,6 días respectivamente. La longevidad del adulto hembra fue de 42,5 y
RM ÁT
del macho 35 días promedio con alimento respectivamente y sin alimento
IN FO
es de 3,8 días promedio para ambos sexos.
El ciclo biológico en condiciones de laboratorio presentó una duración
DI
RE CC IO
N
DE
SI
ST
EM
AS
DE
promedio de 81,7 y 89,2 días para el macho y la hembra respectivamente.
12 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
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Tabla 1.
Duración en días del ciclo biológico de Stegasta cf. zygotoma en
AC IÓ
N
laboratorio a 21,95 ºC y 65,9 % H.R. durante los meses de junio a
Mínimo
Máximo
10
7,8
Larva I
4
9
6,7
4
10
5,8
3
8
5,1
3
6
4,5
3
8
3,9
1
2
1,3
8
14
11,6
27
46
35
37
50
42,5
Ciclo biológico del macho
60
113
81,7
Ciclo biológico de la hembra
70
117
89,2
RM ÁT
A
7
Promedio (días)
IC
Huevo
Y
CO
Fase de desarrollo
M UN
IC
noviembre. Trujillo, Perú 2012.
Larva II
IN FO
Larva III
Larva V
DE
Larva IV
EM
AS
Pre pupa
ST
Pupa
SI
Longevidad adulto macho (con alimento)
DI
RE CC IO
N
DE
Longevidad adulto hembra (con alimento)
13 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
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3. Morfología En la tabla 2, se muestra las dimensiones promedio de los diferentes
AC IÓ
N
estados y estadios de desarrollo de Stegasta cf. zygotoma.
IC
En la tabla 3, se presenta las dimensiones de las cápsulas cefálicas de cada
M UN
instar.
CO
3.1. Huevo (Fig. 1)
Y
Es de forma ovalada rugosa, de coloración blanco cremoso recién
IC
A
puesto, posteriormente toman una coloración anaranjado y cuando
RM ÁT
están próximos a la eclosión es de color negruzco; mide 0,34 mm de longitud y 0,26 mm de ancho y eclosionaron al cabo de 7,8 días
IN FO
promedio. Es colocado de forma individual o en pequeños grupos de
DE
7 huevos en promedio en los brotes tiernos de la planta del maní.
AS
3.2. Larva
EM
La larva de Stegasta cf. zygotoma es de tipo eruciforme, presentó tres
ST
pares de patas torácicas, 4 pares de pseudopatas abdominales y un par
SI
de patas anales, realizan cuatro mudas por lo tanto tienen cinco
DI
RE CC IO
N
DE
instars larvales. Al nacer tienen el cuerpo de color blanquecino y conforme va cambiando de instar presenta una coloración rosado pajizo. La larva de S. cf. zygotoma posee una característica morfológica principal que el pronoto y mesotórax son de color rojo vinoso.
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Después de cada muda se observó que la cabeza es de color crema, horas después ésta comienza a pigmentarse hasta tomar su color negro (Anexo 10).
AC IÓ
N
3.2.1. Larva I (Fig. 2)
IC
La larva es de forma alargada, cilíndrica, presentó tres pares de
M UN
patas torácicas, cuatro pares de pseudopatas y un par de patas
CO
anales, es de color blanquecino a crema, la cabeza es de color
Y
negra, la cápsula cefálica mide 0,30 mm de ancho y 0,24 mm
IC
A
de largo.
RM ÁT
En el tórax, el pronoto, presentó un pequeño escudo protorácico de color negro que persiste hasta el estado de pupa, en la región
IN FO
del protórax y mesotórax presentó una débil coloración rosada.
DE
Este instar tiene una duración de 4 a 9 días desde que emerge
AS
hasta la primera muda y presenta una longitud promedio de
EM
0,75 mm.
ST
3.2.2. Larva II (Fig. 3)
DI
RE CC IO
N
DE
SI
En este instar se empezó a observar con más claridad la presencia del escudo protorácico y la coloración rojo vinoso en el protórax y mesotórax; en los últimos segmentos abdominales se pudo observar la presencia de los tubérculos setíferos. Presentó un duración de 4 a 10 días y mide 2,5 mm de longitud promedio. La cápsula cefálica mide 0,4 mm de ancho y 0,3 mm de largo.
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3.2.3. Larva III (Fig. 4) Esta larva presentó las mismas características morfológicas descritas en el instar anterior.
AC IÓ
N
Se observó en plenitud la coloración rojo vinoso del protórax y
IC
mesotórax.
M UN
El tiempo de duración fue 3 a 8 días, presentó una longitud
CO
promedio de 3,9 mm, cuya cápsula cefálica midió 0,5 mm de
Y
ancho y 0,4 mm de largo.
IC
A
3.2.4. Larva IV (Fig. 5)
instar anterior.
RM ÁT
Presentó las mismas características morfológicas descritas en el
IN FO
Tuvo una duración de 3 a 6 días, hasta que realizó la siguiente
DE
muda.
AS
La longitud promedio fue 5,2 mm, donde la cápsula cefálica
EM
llegó a medir 0,6 mm de ancho y 0,5 mm de largo.
ST
3.2.5. Larva V (Fig. 6)
DI
RE CC IO
N
DE
SI
En este instar la larva disminuye su actividad para alimentarse y presentó una tonalidad de rosado pajizo en la región dorsal. El tiempo de duración fue de 3 a 8 días. Las larvas presentaron una longitud promedio de 6,8 mm y la cápsula cefálica llego a medir 0,8 mm de ancho y 0,7 mm de largo.
3.3.Prepupa (Fig. 7 ) La larva de V instar entra en un período en el cual deja de alimentarse y de moverse, además empieza a formar finos hilos de seda. En este
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instar la larva contrae longitudinalmente su cuerpo volviéndose más robusta. Cabeza de color negro, con cuerpo de color crema amarillento, llego a medir en promedio 5, 16 mm.
AC IÓ
N
3.4. Pupa (Fig. 8 )
IC
La pupa es de tipo obtecta, con presencia de dimorfismo sexual que
M UN
estuvo caracterizado por la posición del gonoporo que se encuentra en
CO
el extremo distal del abdomen, para poder identificar la hembra del luego va
Y
macho; la pupa inicialmente es de color marrón claro
IC
A
cambiando a color marrón oscuro antes de emerger el adulto. La pupa
3.5. Adulto
IN FO
3.5.1. Hembra (Fig. 9)
RM ÁT
llegó a medir 4,3 mm de longitud promedio.
DE
Antenas de tipo filiforme, larga y cilíndrica con 62 artejos
AS
aproximadamente que cubren ¾ partes la longitud del cuerpo e
EM
intercalan el color marrón y blanco (Anexo 11). Abdomen
ST
ligeramente ensanchado en la parte central, alas de color negro
DI
RE CC IO
N
DE
SI
con una mancha cremosa con escamas doradas en forma de copa en el dorso y dos pequeñas manchas blancas en cada una de las alas. Los bordes internos, tanto en las alas anteriores como posteriores finalizan en pequeños flecos de color marrón. Tiene un promedio de 9,9 mm de expansión alar.
3.5.2. Macho (Fig. 10) Posee antenas filiformes, abdomen delgado y ahusado; al igual que la hembra presenta alas de color negro con una mancha
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cremosa con escamas doradas en forma de copa en el dorso y dos pequeñas manchas blancas en cada una de las alas. Los bordes internos tanto en las alas anteriores como posteriores
AC IÓ
N
finalizan en pequeños flecos de color marrón
IC
Se observó la genitalia de S. cf. zygotoma y se le diferenció de
M UN
otras especies por la forma curveada del aedeagus (Anexo 12)
CO
Tiene un promedio de 9,6 mm de expansión alar.
Y
4. Comportamiento
IC
A
4.1. Oviposición
RM ÁT
La hembra coloca los huevos en forma individual o en pequeños grupos de 7 en promedio en los brotes tiernos del maní e inclusive en
IN FO
las hojas (Anexos 13 y 14). Cuando recién son ovipositados son de
DE
color blanco cremoso, luego va cambiando a color anaranjado y
AS
finalmente a negro antes de eclosionar, observándose en el
EM
estereoscopio la larva próxima a emerger.
ST
4.2. Larvas
SI
Las larvas son muy activas dispersándose por todo el contorno del
DI
RE CC IO
N
DE
envase de plástico en busca de alimento, éstas prefieren los lugares sombreados entre las hojas, son lucífugas, perforan los brotes tiernos, raspan las hojas, minan las hojas en forma lagunar y raspan tallos hasta perforarlos, una vez que ingresa la larva empieza a alimentarse y llena el interior con excremento negruzco (Anexos 15, 16, 17 y 18). Todo el periodo larval lo desarrollan prácticamente en la planta alimentándose de brotes tiernos, hojas y tallos de maní.
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Las larvas hacen movimientos rápidos cuando se les molesta.
4.3. Prepupa
AC IÓ
N
La larva del V instar empieza a formar capullo con finos hilos de seda.
IC
La larva se vuelve más robusta disminuyendo el movimiento, cambia
CO
cefálica unida al tegumento larval (Anexo 19).
M UN
a un color cremoso y finalmente dentro del cocón dejan su capsula
Y
4.4. Pupa
IC
A
La pupa es de tipo obtecta y en condiciones normales está inactiva mas
RM ÁT
cuando es molestada reacciona mediante pequeños movimientos circulares, realizados por los últimos segmentos abdominales.
IN FO
4.5. Adulto
DE
El futuro imago rompe la parte dorsal del tórax de la capa quitinizada
AS
de la pupa, emergiendo en primer lugar la cabeza luego el tórax para
EM
finalmente sacar el resto del cuerpo. Luego se mantiene quieto
ST
acomoda las alas con pequeños movimientos y comienza a segregar
SI
un líquido marrón, producto del metabolismo. Los adultos al terminar
DI
RE CC IO
N
DE
de emerger juntan sus alas hacia arriba (Anexo 20) y en estado de reposo, colocan sus alas anteriores y posteriores en forma de “techo de dos aguas”. El adulto de Stegasta cf. zygotoma al terminar de emerger, realizó saltos cortos, reconociendo el lugar, para que finalmente realice vuelos largos de 4 metros de distancia aproximadamente.
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4.5.1. Pre cópula Es el tiempo que transcurrió entre los adultos, recién emergidos, colocados en la cámara de cópula y oviposición. La
AC IÓ
N
duración fue de 8,4 horas promedio.
IC
4.5.2. Cópula
M UN
En condiciones de laboratorio, se observó que la cópula se
CO
realiza siempre en horas de la madrugada realizando vuelos
Y
rápidos alrededor del recipiente. La cópula se lleva a cabo entre
IC
A
los extremos distales del abdomen quedando la cabeza del
RM ÁT
macho y la hembra en direcciones opuestas.
4.5.3. Oviposición
IN FO
La cópula duró 3,3 horas promedio.
DE
La hembra empieza a oviponer después de 16 horas promedio
AS
de finalizada la cópula. La hembra coloca los huevos
EM
individualmente o en pequeños grupos de 7 huevos promedio
ST
dentro de los brotes tiernos del maní. Así mismo llegaron a
DI
RE CC IO
N
DE
SI
ovipositar en promedio 11.1 huevos diarios y 185.7 huevos totales.
4.5.4. Proporción de sexos En la tabla 5 se presenta la proporción de sexos, obtenidos en la crianza de laboratorio de un total de 70 individuos de los cuales 32 fueron machos y 38 fueron hembras encontrándose una razón de 1: 1.
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Tabla 2.
Dimensiones promedio en (mm) de los diferentes estados y estadios de desarrollo de Stegasta cf. zygotoma, en laboratorio,
Estado de desarrollo
Mínimo
Máximo
Huevo (ancho)
0,2
CO
IC
Longitud total (mm)
AC IÓ
N
junio a noviembre. Trujillo, Perú 2012.
0,38
0,26
Huevo (largo)
0,3
0,43
0,34
Larva I
0,67
0,84
0,75
Larva II
2,05
3,03
2,53
3,22
4,95
3,92
4,28
5,89
5,23
6,15
7,7
6,88
4,65
6,2
5,16
4
4,94
4,31
8,62
10,52
9,87
8,36
10,15
9,61
RM ÁT
IN FO DE
Larva III
EM
AS
Larva IV Larva V
SI
ST
Prepupa
N
DE
Pupa
Expansión alar adulto hembra
RE CC IO
IC
A
Y
M UN
Promedio
DI
Expansión alar adulto macho
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Medidas promedio (mm) del ancho y largo de las cápsulas cefálicas
CO
Tabla 3.
M UN
IC
AC IÓ
N
Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo
Y
obtenidas después de la muda de cada uno de los instars, en
RM ÁT
IC
A
laboratorio, junio a noviembre. Trujillo, Perú 2012.
Larva I
DE
Larva II
Ancho (mm)
IN FO
Estadio larval
AS
Larva III
EM
Larva IV
0,3
0,2
0,4
0,3
0,5
0,4
0,6
0,5
0,9
0,8
DI
RE CC IO
N
DE
SI
ST
Larva V
Largo (mm)
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Períodos de pre cópula, cópula, post cópula, números de
AC IÓ
N
Tabla 4.
Mínimo
7
Cópula (horas)
2
10
Promedio
8,4
A
Y
Precópula (horas)
Máximo
CO
Actividad
M UN
IC
oviposiciones diarias y totales en laboratorio. Trujillo, Perú 2012.
3,3
12
10,4
22
30
27
2
4
2,8
7
15
11,1
178
192
185,7
RM ÁT
IC
4
Postcópula
8
IN FO
Periodo de pre oviposición (horas)
AS
DE
Periodo de oviposición (días)
EM
Periodo de post oviposición
ST
(días)
SI
Oviposiciones diarias
N
DE
(Nº de huevos / día)
DI
RE CC IO
Oviposiciones totales
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IC
AC IÓ
N
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Proporción de sexos de Stegasta cf. zygotoma. Entre los meses de
Cantidad
RM ÁT
Individuo
IC
A
Y
junio a noviembre. Trujillo, Perú 2012.
CO
Tabla 5.
Macho
32
45.7 %
38
54.3 %
70
100 %
IN FO
Hembra
DE
Total
1: 1
DI
RE CC IO
N
DE
SI
ST
EM
AS
Razón
Proporción
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(b)
(c)
Y
CO
(a)
M UN
IC
AC IÓ
N
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IC
A
Fig. 1. Huevos de Stegasta cf. zygotoma.
DI
RE CC IO
N
DE
SI
ST
EM
AS
DE
IN FO
RM ÁT
(a) Recién puesto (b) A los 3 días (c) Próximos a la emergencia. 40x
Fig. 2. Stegasta cf. zygotoma. Larva I. 40x
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IC
A
Y
CO
M UN
IC
AC IÓ
N
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DI
RE CC IO
N
DE
SI
ST
EM
AS
DE
IN FO
RM ÁT
Fig. 3. Stegasta cf. zygotoma. Larva II. 40x
Fig. 4. Stegasta cf. zygotoma. Larva III. 40x
26 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
IC
A
Y
CO
M UN
IC
AC IÓ
N
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DI
RE CC IO
N
DE
SI
ST
EM
AS
DE
IN FO
RM ÁT
Fig. 5. Stegasta cf. zygotoma. Larva IV. 40x
Fig. 6. Stegasta cf. zygotoma. Larva V. 40x
27 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
CO
M UN
IC
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DI
RE CC IO
N
DE
SI
ST
EM
AS
DE
IN FO
RM ÁT
IC
A
Y
Fig. 7. Stegasta cf. zygotoma. Prepupa. 40x
a)
b) Fig. 8. Stegasta cf. zygotoma. Pupa. 40x a) Vista ventral b) Vista dorsal
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Fig. 9. Stegasta cf. zygotoma, adulto hembra. 40x
Fig. 10. Stegasta cf. zygotoma, adulto macho.40x
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IV.
DISCUSIÓN
En este trabajo referente a la determinación de Stegasta cf. zygotoma, se
AC IÓ
N
creía erróneamente que en Perú, Stegasta bosquella, era plaga del maní, pero por la oportuna determinación de la especie y por la revisión de referencias
M UN
IC
bibliográficas, se determinó como Stegasta zygotoma; las diferencias de ambas especies se pudieron observar en la genitalia del adulto macho, siendo el aedeagus
CO
de forma curveada para la última especie (Schmitz y Landry, 2007).
A
Y
El ciclo biológico de Stegasta cf. zygotoma tuvo una duración promedio de
RM ÁT
IC
85 días en condiciones de laboratorio a 21,95 ºC y 65,9 % H.R. Sin embargo, en Venezuela para Stegasta capitella, se encontró que, el ciclo de vida en
IN FO
“condiciones de laboratorio” fue de 23 a 36 días y tuvo como temperatura media promedio de 29,6ºC (Briceño, 1976). Esta diferencia posiblemente se debe a la
DE
fuerte influencia de temperatura, esto explica el hecho de que el ciclo biológico se
AS
acorta en períodos de calor y se alarga en época de invierno (Ojeda y Bravo,
ST
EM
1982).
SI
El período de incubación de Stegasta cf. zygotoma fue de 7 a 10 días,
DE
coloca huevos, los cuales son rugosos y de color blanco cremoso observados en el
RE CC IO
N
presente trabajo, tal como se indica en el estudio sobre Stegasta bosquella en Colombia, con respecto a su morfología y coloración se dice que las hembras
DI
colocan los huevos sobre los tricomas de las brácteas externas de las inflorescencias, son rugosos, de color blanco cremoso y eclosionan al cabo de los 5 días, a una temperatura de 25 ºC y humedad relativa de 60 % HR (CIAT, 1982; Vergara y Barreto, 1989).
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El periodo larval de Stegasta cf. zygotoma, determinado fue de 17 a 41 días, mientras que en Brasil para Stegasta bosquella, indica que dicho período duró de 8 a 15 días en la mayoría de los casos (Janini y cols, 2011). Sin embargo,
AC IÓ
N
en Colombia para S. bosquella, indica que el estado larval dura aproximadamente
IC
18 días (CIAT, 1982). Dicha diferencia posiblemente se debe a la fuerte influencia
M UN
de temperatura, en las que se realizó la crianza, esto explica el hecho de que el
CO
ciclo biológico se acorta en períodos de calor y se alarga en época de invierno
Y
(Ojeda y Bravo, 1982).
IC
A
En cuanto a la morfología y la coloración de la larva, ésta al emerger es de
RM ÁT
color blanquecino a crema, con el protórax y mesotórax de color rojo vinoso y tiene una longitud promedio de 0,75 mm, en el último instar llega a tener una
IN FO
longitud promedio de 6,88 mm y con una coloración de rosado pajizo, estas
DE
características son similares a los datos informados para Stegasta bosquella en
AS
Colombia, en el que menciona que la larva al eclosionar tiene una coloración
EM
amarillo cremoso con el protórax y mesotórax de color rojo oscuro, por lo que le
ST
dan el nombre de gusano cuello rojo, y tiene una longitud más o menos de 0,5
SI
mm; y en el último instar llega a medir 6 mm y el color de su cuerpo es rosado
DE
(CIAT, 1982).
RE CC IO
N
Stegasta cf. zygotoma, presentó cinco instars larvales con respecto a la
presencia de muda del insecto, este resultado difiere con los encontrados en
DI
Venezuela sobre la morfología y la biología de Stegasta capitella (Fabricius),
donde el autor cita que dicha especie presenta seis instares, referido al cambio morfológico o tamaño de la larva (Briceño, 1976). Con respecto al número de mudas, en una investigación sobre polilla de los citrus se informa que, éstas
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pueden variar según la larva se halle sometida durante el ciclo biológico a diversas condiciones climáticas (luz, temperatura, humedad, y otros), y naturaleza del material vegetal que le sirve de alimento, según sea tejido de flor, fruto o brote
AC IÓ
N
(Ortuño y Hernansaez, 1966).
IC
En cuanto al comportamiento en laboratorio, cuando las larvas de Stegasta
M UN
cf. zygotoma son molestadas realizan movimientos rápidos, prefiriendo lugares
CO
sombreados en los primeros instars, son lucífugas, este resultado coincide con lo
Y
registrado para las larvas de Stegasta bosquella, que realizan movimientos rápidos
IC
A
cuando se les molesta; prefiriendo lugares frescos y sombreados, como entre las
RM ÁT
dos láminas de las hojas del cogollo (Janini y cols, 2011). Las larvas fueron alimentadas con brotes tiernos de maní con las
IN FO
respectivas hojas pequeñas y tallos, los primeros e incluso los últimos instars
DE
esqueletizan las hojas de los brotes, de igual manera barrenan los brotes tiernos
AS
llegando a perforar los tallos de este cultivo donde la larva empieza a alimentarse
EM
y llenar el interior de los órganos afectados de excremento negruzco, retrasando
ST
de esta manera el desarrollo del cultivo. Este comportamiento coinciden con los
SI
descritos en Brasil para S. bosquella, donde señala que los síntomas causados por
DE
el ataque de esta plaga son muy típicos ya que ataca a los foliolos nuevos, viendo
RE CC IO
N
expuestas las lesiones que son de forma simétrica, por lo general rodeado de excremento oscuro producido por la propia larva. Con este ataque, la planta
DI
infestada paraliza su desarrollo y quedan raquíticas evitando así la producción de nuevos brotes (Carrega, 2009). En Brasil, se indica también que las infestaciones
generalizadas pueden causar pérdidas de rendimientos y su ataque puede ocurrir en cualquier período de desarrollo de la planta (Leal y cols, 2011). Por otro lado,
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en Colombia, se encontró que las larvas de Stegasta bosquella provocan mayores daños al penetrar hasta la semilla en formación a través de las brácteas y alimentarse de las mismas. Además, lo más dañino resulta ser que una sola de
AC IÓ
N
ellas consume varias semillas. (CIAT, 1982).
IC
Con relación a la prepupa tiene una duración de 1 a 2 días con un tamaño
M UN
de 5,16 mm; coincide con lo indicado , para S. capitella y S. bosquella, donde los
CO
autores hacen referencia que antes de empupar la larva va al suelo, construye allí
Y
una celda con finos hilos de seda y se transforma en pupa, pasando
IC
A
prematuramente por una fase de prepupa que dura de 1 a 2 días (Briceño, 1976;
RM ÁT
Leal y cols, 2011).
La duración del estado pupal fue de 8 a 14 días, este resultado se encuentra
IN FO
dentro del rango citado en Colombia para S. bosquella, que tiene una duración de
DE
9 a 10 días; sin embargo, es diferente en Brasil, donde se indicó que el periodo
AS
pupal puede durar de 4 a 10 días (CIAT, 1982; Janini y cols, 2011).
EM
El dimorfismo sexual a nivel de pupas estuvo caracterizado por la posición
ST
del gonoporo, en el macho se encuentra en medio del último segmento abdominal
SI
y en la hembra se encuentra al inicio del último segmento abdominal, lo descrito
DE
anteriormente coincide con lo descrito en Brasil para Stegasta bosquella, donde se
RE CC IO
N
indica que la diferenciación de machos y hembras se realizó en la fase de pupa, observando la posición del gonoporo, los machos tienen el gonoporo medio
DI
situado en la porción terminal del abdomen y las hembras tienen el gonoporo a principios de la porción terminal del abdomen (Leal y cols, 2011). El adulto de Stegasta cf. zygotoma es una polilla de 9,74 mm de envergadura; alas de color negro con una mancha crema con escamas doradas en
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forma de copa en el dorso y dos pequeñas manchas blancas en las alas. Los bordes internos tanto en las alas anteriores como posteriores finalizan en pequeños flecos. Para Stegasta bosquella, citan que el tamaño de envergadura es de 6 a 7 mm y que
AC IÓ
N
los adultos son de color negro, con manchas amarillas en el dorso y dos pequeñas
IC
manchas laterales blancas en las alas (CIAT, 1982; Janini y cols, 2011).
M UN
En relación a la oviposición, la hembra coloca los huevos individualmente
CO
o en pequeños grupos de siete huevos dentro de los brotes tiernos del maní,
Y
colocando un promedio de 185,7 huevos totales. En Brasil, describen que las
IC
A
hembras de Stegasta bosquella colocan los huevos en forma aislada o en
RM ÁT
pequeños grupos sobre o debajo de las brácteas de brotes durante la noche, encontraron un promedio de 224,5 huevos totales (Janini y cols, 2011; Leal y cols,
IN FO
2011). La diferencia se debe probablemente, porque, es una especie distinta, a las
DE
condiciones climáticas y al alimento proporcionado a los adultos.
AS
La longevidad de los adultos sin alimento fue en promedio de 4 días, y los
EM
adultos que fueron alimentados con una solución de miel fue de 38,8 días
ST
promedio, esto coincide con el trabajo realizado en Brasil, donde describe que la
SI
longevidad de los adultos de Stegasta bosquella sin alimento fue en promedio de
DE
3,8 días, pero cuando los adultos se alimentaron la longevidad era de más de 20
RE CC IO
N
días. Se puede ver claramente que los adultos alimentados viven más tiempo y por
DI
lo tanto, tienen una oviposición de mayor período (Leal y cols, 2011).
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V.
CONCLUSIONES
En Perú se conocía a Stegasta bosquella como plaga del “maní”, pero
N
actualmente se le determinó como Stegasta cf. zygotoma Meyrick, 1917.
AC IÓ
El ciclo biológico de Stegasta cf. zygotoma en condiciones de laboratorio a
IC
21,95 ºC y 65,9 % H.R. fue de 7,8 días para incubación, periodo larval de
M UN
17 a 41, prepupa de 1 a 2, pupa de 8 a 14 días respectivamente, la
CO
longevidad del adulto hembra es de 42,5 y del macho 35 días promedio.
A IC
macho y la hembra respectivamente.
Y
El ciclo biológico tuvo una duración promedio de 81,7 y 89,2 días para el
RM ÁT
Las larvas de Stegasta cf. zygotoma presentan 5 instars con una longitud mínima de 0,67 mm y longitud máxima de 7,7 mm.
IN FO
Las hembras colocan los huevos en los brotes tiernos o en hojas
DE
principales, individualmente o en pequeños grupos. Las larvas son muy
AS
activas y son lucífugas, perforan los brotes tiernos, minan las hojas en
EM
forma lagunar y barrenan tallos hasta perforarlos, una vez que ingresa la
ST
larva empieza a alimentarse y a llenar el interior de excremento negruzco.
DE
SI
El adulto de Stegasta cf. zygotoma al terminar de emerger, realizó saltos
N
cortos, reconociendo el lugar, para que finalmente realice vuelos largos de
DI
RE CC IO
4 metros de distancia aproximadamente.
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VI.
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DE
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ANEXOS
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Registro de los promedios mensuales de Temperatura (ºC) y
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Anexo 1.
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Humedad Relativa (%) durante el ciclo biológico de Stegasta cf.
22,9
24
Julio
20
23,3
Agosto
20
22,6
Setiembre
20,4
Max.
Promedio
23,4
69
75
72
22,5
57
72
67,4
21,1
64
71
67,9
22,2
21,3
54
71
66,5
20,7
22,5
21,5
54
69
62,9
21,8
23,5
22,5
57
67
62,5
EM
ST
DE
SI
Octubre
Min.
DI
RE CC IO
N
Noviembre
IN FO
Junio
Promedio
DE
Max.
Humedad Relativa (%)
AS
Min.
RM ÁT
Temperatura (ºC)
Mes
IC
A
Y
CO
zygotoma, junio a noviembre. Trujillo, Perú 2012.
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Anexo 2.
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Plántulas de maní, para la alimentación de larvas de Stegasta cf.
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zygotoma.
Anexo 3.
Crianza masiva de larvas de Stegasta cf. zygotoma.
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A
Crianza individual, larvas alimentadas con brotes de maní y hojas
IC
Anexo 4.
Y
CO
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IC
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DI
RE CC IO
N
DE
SI
ST
EM
AS
DE
IN FO
RM ÁT
pequeñas.
Anexo 5.
Cápsulas cefálicas obtenidas después de cada muda
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Acondicionamiento de pupas de Stegasta cf. zygotoma.
DI
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ST
EM
AS
DE
IN FO
RM ÁT
Anexo 6.
Anexo 7.
Cámara de cópula y oviposición.
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(b)
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(a)
Último segmento abdominal de la pupa de Stegasta cf. zygotoma, muestran la diferenciación sexual. (a) Macho y (b) Hembra. (60x).
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Anexo 8.
46 Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis.
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Anexo 9.
Resultados de la determinación de Stegasta cf. zygotoma
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A
Larva de Stegasta cf. zygotoma.
Anexo 11.
Antena de Stegasta cf. zygotoma
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Anexo 10.
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Genitalia del adulto macho de Stegasta cf. zygotoma
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Anexo 12.
Anexo 13.
Huevos en pequeños grupos de Stegasta cf. zygotoma.
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Oviposición en brote tierno de “maní” de Stegasta cf. zygotoma.
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Anexo 14.
Anexo 15.
Daño de Stegasta cf. zygotoma como barrenador de tallos.
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Daño de Stegasta cf. zygotoma como minador de hojas.
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Anexo 16.
Anexo 17.
Daño de Stegasta cf. zygotoma como pegador de hojas.
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Daño de Stegasta cf. zygotoma como raspador de hojas.
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Anexo 18.
Anexo 19.
Cocón, de empupamiento.
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AS
Emergencia del Adulto de Stegasta cf. zygotoma
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Anexo 20.
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